Effect of Warm Drinking Water in Winter on Growth and Immunology of Post-Weaning Piglets
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摘要: 冬季低温饮水不利于断奶仔猪的生长发育。本试验设计了在规模化猪场保育猪舍适用的恒温饮水系统,实现饮水的恒温化,比较分析饮用温水的试验组与冷水对照组仔猪在生长性能和免疫水平上的变化。结果显示,与对照组相比,试验组仔猪饮水日均和昼夜水温均稳定于26℃左右(24.5~26.6℃);试验组温水的总菌和大肠杆菌数远低于对照组;试验组仔猪平均日增重较对照组提高4.15%(P < 0.01),日均采食量较对照组提高7.76%(P < 0.05),腹泻率仅为对照组的43%(P < 0.01)。两组仔猪在IgG、IgM和IgA水平,以及猪圆环病毒和猪瘟病毒抗体水平上无明显差异(P>0.05)。上述结果说明,饮用温水对于断奶仔猪的生长性能有明显促进作用,对免疫水平无明显影响。Abstract: Drinking cold water in winter is detrimental to the growth and development of post-weaning piglets.Thus, a system providing the piglets with warm drinking water at 26℃(ranging 24.5-26.6℃) in a scale-up swine farm was installed for the study. Changes on the growth and immunity of the piglets were monitored. The results indicated that the total bacteria and Escherichia coli counts in the warm drinking water for the treatment were significantly lower than those in the cold water for control. The average daily weight gain of the piglets in the treatment group was significantly higher than that of control by 4.15% (P < 0.01). The daily feed intake of the treatment piglets was significantly higher than that of control by 7.76%(P < 0.05). Whereas, the incidents of diarrhea in the treatment piglets were merely 43% of that incontrol group. There were no significant differences observed on the levels of IgG, IgM, IgA, porcine circovirus and classical swine fever virus antibodiesin the piglets between the treatment group and control (P>0.05). It appeared that the consumption of warm drinking water in cold weather could significantly improve the growth, without negatively affecting the immunology, of the post-weaning piglets.
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在猪生产中, 仔猪饲养是整个生产过程中最关键的阶段。断奶对仔猪生理、营养、环境等方面均会造成较大应激[1-2],冬季的低温更会加剧应激作用,从而严重影响仔猪的生长性能和机体健康[3]。因此,在冬季仔猪饲养中,积极有效的保温措施,是提高其成活率的关键因素[4]。福建省位于华东地区,冬季温度多在冰点以上。根据笔者对福建省各猪场长期生产实践和临床腹泻情况的调查,福建省断奶仔猪在冬季多采用冷水直接饮用,加重断奶仔猪的冷应激,造成仔猪腹泻,影响生长发育,给养猪场造成损失。而目前关于低温饮水在生产上的危害未见有详细的研究报道,也未见有关于断奶仔猪冬季进行温水饲养的相关研究。
本文通过设计适用的恒温饮水系统,在规模化猪场保育猪舍实现饮水的恒温化,探讨断奶仔猪在冬季饮用温水后,在生长性能和免疫水平方面的变化情况,为提高福建省养猪的经济效益,解决仔猪断奶的冷应激问题提供数据支持和参考。
1. 材料与方法
1.1 试验场地及恒温饮水设备的构建
本次试验在福建省古田县某规模化养猪场进行。小型恒温循环水系统由本实验室自行设计安装,设置于保育猪舍外,详细结构如图 1所示, 整个系统包括保温蓄水器、热循环系统、水循环系统和控制器。保温蓄水器内设置有温度传感器,热循环系统包括空气能热水器和热循环泵。保温蓄水器和热循环系统由输水管道连通形成热循环回路;水循环系统则是通过输水管道连通循环水泵和保温蓄水器形成水循环回路,并连通猪舍内的仔猪饮水器;控制器与温度传感器、空气能热水器、热循环泵以及循环水泵连接。在仔猪饮水器和保温蓄水器之间设置紫外消毒器,对循环水体进行不间断消毒。
1.2 试验动物及分组
试验用断奶仔猪品种为外三元(杜长大),平均日龄(21.0±2.6)d,体重为(6.08±0.24)kg,共100头。按性别比例、体重相近原则,随机分成2个处理组(温水试验组与冷水对照组),每组设5个重复,每个重复10头仔猪,在同一栋保育猪舍内进行,试验时间为30 d。
1.3 仔猪饲养管理
仔猪保育采用高床,地板为铸铁漏缝地板,试验组猪栏安装恒温饮水设备。仔猪进舍前将猪舍进行彻底消毒,并清洗仔猪料槽,卫生、消毒、免疫、保健工作均按猪场操作规程实施。所有仔猪均自由采食、自由饮水,饲喂日粮均为采购自福建省华龙饲料有限公司的断奶仔猪配合饲料(猪宝宝100A),其日粮水平见表 1。试验时间为2017年12月21日至2018年1月19日,为期30 d。
表 1 饲料基础日粮组成与营养水平Table 1. Composition and nutrients of feed for piglets日粮成分 含量/% 营养成分 含量/% 玉米 53.00 消化能/(MJ·kg-1) 14.12 膨化大豆 8.00 粗蛋白质 20.2 鱼粉 4.00 钙 0.71 血浆蛋白粉 3.00 总磷 0.63 去皮豆粕 16.00 有效磷 0.48 低蛋白乳清粉 10.00 赖氨酸 1.36 大豆油 2.00 蛋氨酸 0.41 预混料* 4.00 半胱氨酸 0.78 合计 100.00 注:*预混料为每千克饲粮提供:维生素A 11 000 IU; 维生素D3 2 000 IU; 维生素E 55 mg; 维生素K3 1.1 mg; 维生素B1 2.2 mg; 维生素B2 3.5 mg; 维生素B6 3.2 mg; 维生素B12 0.05 mg; 烟酸26 mg; 泛酸12 mg; 生物素0.12 mg; 叶酸1.1 mg; 胆碱600 mg; Cu 150 mg; Fe 120 mg; Zn 110 mg; Mn 15 mg; I 0.15 mg; Se 0.3 mg。 1.4 仔猪饮用水微生物状况
在仔猪饮水器的出水口采集水样,冰上放置,送回实验室检测总菌数和大肠杆菌数,采样时间分别为第7、14、21 d,每份样品取3个重复。检测方法参考国标《无公害食品畜禽饮用水水质》(NY5027-2001)和《生活饮用水标准检测方法微生物指标》(GB/T 5750.12-2006)。
1.5 生长性能指标
每小时记录水温参数(试验组与对照组饮水温度),以个体为单位记录仔猪初始重和末重,并计算总增重,以重复为单位记录采食量,以此计算日均采食量、平均日增重和腹泻率。
平均日增重/g=总增重/(试验天数×试验猪头数)
日均采食量/g=采食量/(试验天数×试验猪头数)
饲料转换率=日均采食量/平均日增重
腹泻率/%=[(试验期内仔猪总腹泻头数×次数)/(饲喂天数×试验猪头数)]×100%
1.6 仔猪免疫水平分析
试验仔猪在30 d后,每重复随机选择3头仔猪进行前腔静脉采血。血清分离后用于IgG、IgM和IgA的测定,测定采用猪免疫球蛋白ELISA试剂盒(江苏科晶生物科技有限公司)。因仔猪在保育期内有注射圆环病毒和猪瘟病毒疫苗,故上述血清送福建省农业科学院畜禽水产诊疗中心,检测其仔猪圆环病毒和猪瘟病毒的抗体水平变化情况。
1.7 数据处理
数据进行处理后, 采用SPSS 20.0软件进行分析,平均日增重、日均采食量、饲料转换率均以平均数±标准差表示,腹泻率以百分比表示,处理间的差异显著性分析采用t检验。
2. 结果与分析
2.1 饮用水水温变化
试验组与对照组饮水温度均采用RC-4自动水温记录仪(杭州联测自动化技术有限公司)测定,每隔0.5 h自动记录1次,将全天水温进行平均后,其变化详见图 2。试验期内对照组饮水温度在8~18℃间浮动,说明在外界环境影响下,对照组仔猪饮水水温日均变化和昼夜变化幅度均较大;相反,试验组饮水温度基本稳定在24.5~26.6℃,表明试验组仔猪饮水日均和昼夜水温均较为稳定。
2.2 饮用水微生物含量
如图 3所示,因采用了水体紫外灭菌装置,试验组温水的总菌和大肠杆菌数目均远低于对照组,两组总菌水平和大肠杆菌水平均差异极显著(P < 0.01)。
2.3 冬季饮用恒温水对断奶仔猪生长性能的影响
如表 2所示,试验组平均日增重为(277.36±15.68)g,较对照组提高4.15%(11.05 g),差异极显著(P < 0.01),日均采食量试验组较对照组提高7.76%(24 g),差异显著(P < 0.05),说明饮用恒温水对断奶仔猪的采食量和增重效果明显。两组饲料转换率差异不显著(P>0.05)。试验组的腹泻率仅为对照组的43%,差异极显著(P < 0.01),说明饮用温水对于断奶仔猪的腹泻有明显改善作用。
表 2 两组断奶仔猪生长性能变化情况Table 2. Changes on growth performance of piglets in treatment and control groups项目 试验组 对照组 初始重/kg 6.07±0.26a 6.09±0.22a 末重/kg 14.39±0.42A 14.08±0.52B 平均日增重/g 277.36±15.68 A 266.31±15.97 B 日均采食量/g 333.3±10.19a 309.3±15.74b 饲料转换率 1.2±0.06a 1.16±0.09a 腹泻率/% 2.07±0.19A 4.8±0.36B 注:同行数据后不同大、小写字母表示差异极显著(P < 0.01)或差异显著(P < 0.05)。 2.4 冬季饮用恒温水对断奶仔猪血液免疫水平的影响
如图 4所示,试验组与对照组在IgG、IgM和IgA的水平上差异不显著(P>0.05), 证明饮用温水对于仔猪的免疫水平并无影响。
2.5 冬季饮用恒温水对断奶仔猪血液圆环和猪瘟抗体水平的影响
如图 5所示,试验组与对照组仔猪在猪圆环病毒和猪瘟病毒抗体水平上差异不显著(P>0.05), 说明饮用温水对仔猪上述两种病毒抗体水平并无影响。
3. 讨论
造成仔猪早期断奶综合征的因素比较复杂,往往是多种因素相互作用的结果。因此,防控仔猪早期断奶综合征应该是多种技术的集成。目前在饲料营养和日粮调控、药物饲料添加剂、肠道微生态制剂等功能性饲料添加剂及环境保温方面的研究较多,也取得良好的效果。
水对仔猪养殖具有重要意义。但在实际生产中,许多生产者甚至管理者,却常常忽略饮水管理方面的一些细节。福建省猪场水源主要有自来水、地下水和山泉水等,水温随季节更替而变化。脱离母乳,饮水尤其冬春季寒冷季节对断奶仔猪是一种较强的应激。而温水饮用装置在早期断奶仔猪保育中的应用研究鲜见报道。
在本试验中,课题组针对仔猪保育舍,独立设计安装了一套小型恒温循环水系统。该系统设计的目的旨在通过温度传感和控制,实现饮用水的自动加温;通过紫外灭菌,提高饮用水水质;通过管道保温,结合热循环和水循环回路,减少能量消耗,提高系统适用性和经济性。结果显示,该恒温饮水系统既保证了试验组仔猪饮水温度不受外界环境的影响而保持稳定,也有效控制了温水中的微生物含量,保证了饮用水的水质。
母乳约含80%水分,而断奶后仔猪的采食由母乳变成了固体饲料,使得仔猪不得不通过直接饮水获得足够的水分,因此断奶后提供合适的饮水对于仔猪的生长至关重要[5]。而冬季低温环境下,低水温可能导致仔猪腹泻和增重下降[6-7],进而影响其生长和发育。本试验中,仔猪生长性能的分析表明,采用该恒温饮水的试验组,在采食量和日增重上均较对照组有显著提高,而腹泻率则大幅下降,从而很好地解决了上述问题,而该结果也与之前类似的研究基本一致[8-10]。
有报道指出,在相对的冷环境下,断奶仔猪的免疫系统不会受到影响[7]。在本文中,仔猪免疫水平和两种病毒抗体水平的检测结果显示,饮用温水和冷水对于仔猪的免疫系统并无显著影响,这与上述报道的结果相一致。因此,饮用温水对于仔猪肠道等消化系统的改善作用,很可能体现在对于小肠供血量和供氧量方面。因冷水容易导致小肠内供血和供氧量不足,使得水分和营养物质的吸收受阻[11-12],影响消化吸收,并进而流入大肠,造成大肠菌群和内容物等发生变化,引发腹泻,影响仔猪的增重。而采用温水能够很好地改善上述状况,进而影响仔猪的腹泻和日增重情况。
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表 1 饲料基础日粮组成与营养水平
Table 1 Composition and nutrients of feed for piglets
日粮成分 含量/% 营养成分 含量/% 玉米 53.00 消化能/(MJ·kg-1) 14.12 膨化大豆 8.00 粗蛋白质 20.2 鱼粉 4.00 钙 0.71 血浆蛋白粉 3.00 总磷 0.63 去皮豆粕 16.00 有效磷 0.48 低蛋白乳清粉 10.00 赖氨酸 1.36 大豆油 2.00 蛋氨酸 0.41 预混料* 4.00 半胱氨酸 0.78 合计 100.00 注:*预混料为每千克饲粮提供:维生素A 11 000 IU; 维生素D3 2 000 IU; 维生素E 55 mg; 维生素K3 1.1 mg; 维生素B1 2.2 mg; 维生素B2 3.5 mg; 维生素B6 3.2 mg; 维生素B12 0.05 mg; 烟酸26 mg; 泛酸12 mg; 生物素0.12 mg; 叶酸1.1 mg; 胆碱600 mg; Cu 150 mg; Fe 120 mg; Zn 110 mg; Mn 15 mg; I 0.15 mg; Se 0.3 mg。 表 2 两组断奶仔猪生长性能变化情况
Table 2 Changes on growth performance of piglets in treatment and control groups
项目 试验组 对照组 初始重/kg 6.07±0.26a 6.09±0.22a 末重/kg 14.39±0.42A 14.08±0.52B 平均日增重/g 277.36±15.68 A 266.31±15.97 B 日均采食量/g 333.3±10.19a 309.3±15.74b 饲料转换率 1.2±0.06a 1.16±0.09a 腹泻率/% 2.07±0.19A 4.8±0.36B 注:同行数据后不同大、小写字母表示差异极显著(P < 0.01)或差异显著(P < 0.05)。 -
[1] 徐奇友.早期隔离断奶技术的研究进展[J].黑龙江畜牧兽医, 2006(12):19-21. DOI: 10.3969/j.issn.1004-7034.2006.12.007 [2] FUNDERBURKE D W, SEERLEY R W. The effects of postweaning stressors on pig weight change, blood, liver and digestive tract characteristics[J]. Journal of Animal Science, 1990, 68(1):155. DOI: 10.2527/1990.681155x
[3] 胡晓光, 胡晓丽.物理疗法诊治仔猪冬季冷应激性腹泻的几点体会[J].农业开发与装备, 2013(2):112. http://www.cnki.com.cn/Article/CJFDTOTAL-NJJY201302094.htm [4] 娜日娜, 李峰, 赵剑平, 等.寒冷冬季提高仔猪成活率的措施和方法[J].当代畜禽养殖业, 2012(4):17. http://www.cqvip.com/QK/91811A/201204/41825044.html [5] DONG G Z, PLUSKE J R. The low feed intake in newly-weaned pigs:Problems and possible solutions[J]. Asian Australasian Journal of Animal Sciences, 2007, 20(3):440-452. DOI: 10.5713/ajas.2007.440
[6] ARMSTRONG W D, CLINE T R. Effects of various nutrient levels and enviromental temperatures on the incidence of colibacillary diarrhea in pigs:Intestinal fistulation and titration studies[J]. Journal of Animal Science, 1977, 45(5):1042. DOI: 10.2527/jas1977.4551042x
[7] LE D J, HERPIN P, ROSARIO-LUDOVINO R M. Utilization of colostral energy by the newborn pig[J]. Journal of Animal Science, 1994, 72(8):2082. DOI: 10.2527/1994.7282082x
[8] HICKS T A, MCGLONE J J, WHISNANT C S, et al. Behavioral, endocrine, immune, and performance measures for pigs exposed to acute stress[J].Journal of Animal Science, 1998, 76(2):474-483. DOI: 10.2527/1998.762474x
[9] NIENABER J A, HAHN G L. Effects of water flow restriction and environmental factors on performance of nursery-age pigs[J]. Joutuan of Animal Science, 1984, 59(6):1423. DOI: 10.2527/jas1984.5961423x
[10] 谭磊, 顾宪红.饮水温度和环境富集对断奶仔猪生产性能及营养素利用的影响[J].动物营养学报, 2009, 21(5):640-644. http://cdmd.cnki.com.cn/Article/CDMD-10635-2009105178.htm [11] MAYFIELD S R, STONESTREET B S, BRUBAKK A M, et al. Regional blood flow in newborn piglets during environmental cold stress[J]. American Journal of Physiology, 1986, 251(3):308-313. https://www.researchgate.net/publication/19410182_Regional_blood_flow_in_newborn_piglets_during_environmental_cold_stress
[12] MAYFIELD S R, OH W, PIVA D L, et al. Postprandial gastrointestinal blood flow and oxygen consumption during environmental cold stress[J]. American Journal of Physiology, 1989, 256(2):364-368.
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1. 青亚林,侯炳豪,张宇航,曾珊珊,高婷,叶乃兴. 茶树GATA基因家族的全基因组鉴定及表达分析. 江苏农业科学. 2024(09): 42-50 . 百度学术
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