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多肉植物红心莲茎腐病尖孢镰刀菌LAMP快速检测技术的建立

姚锦爱, 黄鹏, 陈汉鑫, 侯翔宇, 余德亿

姚锦爱,黄鹏,陈汉鑫,等. 多肉植物红心莲茎腐病尖孢镰刀菌LAMP快速检测技术的建立 [J]. 福建农业学报,2020,35(8):863−868. DOI: 10.19303/j.issn.1008-0384.2020.08.008
引用本文: 姚锦爱,黄鹏,陈汉鑫,等. 多肉植物红心莲茎腐病尖孢镰刀菌LAMP快速检测技术的建立 [J]. 福建农业学报,2020,35(8):863−868. DOI: 10.19303/j.issn.1008-0384.2020.08.008
YAO J A, HUANG P, CHEN H X, et al. A LAMP Assay for Rapid Detection of Stem Rot Fusarium oxysporum on Succulent Plant, Echeveria Perle von Nürnberg [J]. Fujian Journal of Agricultural Sciences,2020,35(8):863−868. DOI: 10.19303/j.issn.1008-0384.2020.08.008
Citation: YAO J A, HUANG P, CHEN H X, et al. A LAMP Assay for Rapid Detection of Stem Rot Fusarium oxysporum on Succulent Plant, Echeveria Perle von Nürnberg [J]. Fujian Journal of Agricultural Sciences,2020,35(8):863−868. DOI: 10.19303/j.issn.1008-0384.2020.08.008

多肉植物红心莲茎腐病尖孢镰刀菌LAMP快速检测技术的建立

基金项目: 福建省科技计划公益类专项(2018R1025-2);福建省农业科学院项目(STIT2017-2-2、DEC201907)
详细信息
    作者简介:

    姚锦爱(1978−),女,副研究员,主要从事植病生防方面研究(E-mail:yaoja@163.com

    通讯作者:

    余德亿(1972−),男,研究员,主要从事病虫害生物防治方面研究(E-mail:yudy_2004@126.com

  • 中图分类号: S 476

A LAMP Assay for Rapid Detection of Stem Rot Fusarium oxysporum on Succulent Plant, Echeveria Perle von Nürnberg

  • 摘要:
      目的  建立一种景天科多肉植物红心莲茎腐病菌尖孢镰刀菌(Fusarium oxysporum)快速、简便、灵敏的LAMP可视化检测方法,在茎腐病发生初期实现病原菌的快速准确检测,为病害的早期监测、诊断及防治提供依据。
      方法  以EF-1a(Elongation factor-1α)基因序列为靶序列,设计LAMP(Loopmediated isothermal amplification)特异性引物;以红心莲尖孢镰刀菌DNA为模板,优化反应温度和反应时间,建立LAMP检测反应体系,开展特异性和灵敏度验证及田间病株检测。
      结果  建立的LAMP反应体系可有效检测出多肉植物红心莲茎腐病尖孢镰刀菌,最佳反应温度、反应时间分别为65 ℃,60 min;特异性验证表明红心莲尖孢镰刀菌DNA呈绿色阳性反应,灵敏度验证表明LAMP检测最小质量浓度是10 fg·μL−1,比常规PCR提高了10倍;采用LAMP法对15份疑似红心莲茎腐病田间样本进行快速检测,检出率为100%。
      结论  本研究建立的多肉植物红心莲茎腐病菌LAMP快速检测方法不仅特异性强、灵敏度高,而且检测结果可视、假阳性低,适合田间尖孢镰刀菌引起的红心莲茎腐病的快速检测。
    Abstract:
      Objective   A LAMP (loop-mediated isothermal amplification) assay for rapid, visible and sensitive detection of Fusarium oxysporum on the succulent plant, Echeveria Perle von Nürnberg, was developed for early prevention and control of the disease.
      Method  Based on the elongation factor 1α (EF-1α ) sequence of F. oxysporum , LAMP primers were designed. Template DNA from the infected stems were used to optimize the reaction temperature and time. Specificity and sensitivity of the assay were verified on the detection on infected plants from the field.
      Result   The newly developed LAMP assay at 65 °C for 60 min effectively detected F. oxysporum on Echeveria . The assay gave the positive yellowish green result only on F. oxysporum of Echeveria . It had a detection limit of 10 fg·μL−1 and was 100% positive on detecting F. oxysporum from 15 Echeveria samples showing typical stem rot symptoms.
      Conclusion  The established LAMP assay had high specificity and sensitivity with visual and low false positive results. It was considered suitable for rapid detection of F. oxysporum on Echeveria Perle von Nürnberg in the field.
  • 【研究意义】多肉植物红心莲(Echeveria Perle von Nürnberg)又名紫珍珠,其根、茎、叶肥厚多汁,可储藏大量水分,是景天科(Crassulaceae)石莲花属(Echeveria)的重要商业化品种[1]。近年来,在福建漳州多肉植物种植基地发现红心莲植株出现叶片黄化、红紫、脱落等病症,经调查发现其茎部有褐色病斑,维管束和髓部变色;严重时,茎基部腐烂缩缢,植株倒伏死亡,对多肉植物产业造成威胁。经对发病部位切片镜检发现该病是由尖孢镰刀菌(Fusarium oxysporum)引起的红心莲茎腐病。尖孢镰刀菌是重要的植物土传病原真菌,潜伏期长,侵染初期在植株外观上通常不显症,待表现症状后再采取防控措施,为时已晚[2-3]。为有效防控尖孢镰刀菌引起的红心莲茎腐病为害,生产上迫切需要建立一种快速、准确检测红心莲等景天科多肉植物尖孢镰刀菌的方法。

    【前人研究进展】环介导等温扩增技术(Loop-mediated isothermal amplification, LAMP)是一种简便、快速、精确、经济的检测方法,其检测时间与常规PCR法相比大大缩短(通常1 h内)且特异性更高[4-6],此外LAMP法还可通过添加SYBR Green I、calcein、溴酚蓝等DNA染料,实现检测结果的直观可视化[7]。目前该检测技术已成功应用于炭疽菌属Colletotrichum spp.、镰刀菌属Fusarium spp.、疫霉菌属Phytophthora spp.等植物病原真菌的快速检测[8-10]。其中镰刀菌属LAMP检测涉及的寄主植物包括大豆、黄瓜、水稻、鹰嘴豆、玉米、小麦等[10-15]。【本研究切入点】但未见LAMP应用于多肉植物镰刀菌属病原菌检测的相关报道。【拟解决的关键问题】为了获得特异性和灵敏度更高的适用于红心莲尖孢镰刀菌LAMP检测的特异性引物,选取在镰刀菌种的水平上信息丰富保守基因EF-1a(Elongation factor 1α)为靶点,对红心莲尖孢镰刀菌EF-1a基因和其他镰刀菌序列进行差异性分析,选取6个特定区域,设计了4条特异性的LAMP引物,建立一种LAMP可视化检测方法,以期在多肉植物红心莲茎腐病发生初期实现病原菌的快速准确检测,为该病害的早期防控提供依据。

    供试菌株见表1,包括17株镰刀菌属病原菌(其中10株为尖孢镰刀菌)和10株其他菌属病原菌(其中3株寄主为多肉植物)。病原菌在装有100 mL马铃薯-葡萄糖肉汤(每升蒸馏水中含200 g马铃薯,20 g葡萄糖)的250 mL三角烧瓶中培养,在26 °C恒温摇床150 r·min−1培养5~6 d;真空过滤收集各菌株菌丝,后冻干48 h,用DNA提取试剂盒(天根生物技术有限公司)提取各菌株基因组DNA,DNA浓度使用NanoDrop 2000C分光光度计测定(Thermo Fischer Scientific, USA),DNA作为LAMP检测的模板用无菌双蒸馏水按要求稀释。

    表  1  用于LAMP试验的菌株
    Table  1.  Fungal isolates tested by LAMP assay
    菌株
    Species
    寄主
    Host
    菌株数量
    Number of isolates
    采集地
    Locality
    LAMP反应
    LAMP reaction
    Fusarium oxysporum 尖孢镰刀菌Echeveria Perle Von Nürnberg 红心莲5福建 Fujian+
    Fusarium oxysporum 尖孢镰刀菌Echeveria Perle Von Nürnberg 红心莲3云南 Yunnan+
    Fusarium oxysporum 尖孢镰刀菌 Cymbidium ensifolium 建兰1福建 Fujian+
    Fusarium oxysporum 尖孢镰刀菌 Citrullus lanatus 西瓜1福建 Fujian+
    Colletotrichum destructivum 毁灭炭疽菌Echeveria Perle Von Nürnberg 红心莲1福建 Fujian
    Corynespora cassiicola 山扁豆生棒孢Sedum morganianum 玉珠帘1福建 Fujian
    Alternaria alternata 链格孢菌Echeveria spp. 石莲花属1福建 Fujian
    Fusarium sporotrichioides 拟分枝孢镰刀菌 Pisum sativum 豌豆1福建 Fujian
    Fusarium solani 腐皮镰刀菌Solanum lycopersicum 番茄1福建 Fujian
    Fusarium moniliforme 串珠镰刀菌Oryza sativa 水稻1江苏 Jiangsu
    Fusarium nivale 雪腐镰刀菌Triticum aestivum 小麦1江苏 Jiangsu
    Fusarium sambucinum 接骨木镰刀菌Solanum tuberosum 马铃薯1黑龙江 Heilongjiang
    Fusarium acuminatum 锐顶镰刀菌Medicago sativa 苜蓿1甘肃 Gansu
    Fusarium avenaceum 燕麦镰刀菌Avena sativa 燕麦1甘肃 Gansu
    Botryosphaeria rhodina 葡萄座腔菌Psidium guajava 番石榴1福建 Fujian
    Verticillium dahliae 大丽轮枝菌Solanum melongena 茄子 1福建 Fujian
    Colletotrichum gloeosporioides 胶孢炭疽菌Cymbidium ensifolium 建兰1福建 Fujian
    Alternaria kikuchiana 梨黑斑病菌Pyrus pyrifolia1福建 Fujian
    Alternaria alternata 链格孢菌Cymbidium ensifolium 建兰1福建 Fujian
    Phomopsis asparagi 茎枯病菌Asparagus officinalis 芦笋1福建 Fujian
    Magnaporche oryzae 稻瘟病菌Oryza sativa 水稻1福建 Fujian
    注:所有镰刀菌及其他真菌菌株均保存在福建省农业科学院; +表示LAMP反应阳性,− 表示LAMP反应阴性。
    Note: All isolates of F. oxysporum and other fungi were collection of the Fujian Academy of Agricultural Science; positive (+) or negative (−) results were based on presence or absence of a LAMP product of expected size.
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    比对红心莲尖孢镰刀菌和GenBank中的其他7株镰刀菌属病原菌的EF-1a基因序列,利用在线LAMP引物设计软件Primer software Explorer V4(http://primerexplorer.jp/elamp4.0.0/index.html; Eiken Chemical Co., Japan)设计一套红心莲尖孢镰刀菌特异性LAMP引物组,包括1对外侧引物F3/B3和1对内侧引物FIP/BIP组成(图1);利用软件primer 5设计1对PCR引物。LAMP及PCR引物序列见表2,由上海生工生物技术有限公司合成。

    图  1  红心莲尖孢镰刀菌LAMP引物设计
    Figure  1.  Design of LAMP primers for F. oxysporum in Echeveria
    表  2  红心莲尖孢镰刀菌LAMP及PCR检测引物
    Table  2.  LAMP and PCR primers of F. oxysporum in Echeveria
    引物
    Primer
    序列
    Sequence(5′−3′)
    F3 CACAACCTCAATGAGTGCGT
    B3 GCATGAGCGACAACATACCA
    FIP(F1c+F2) ACCCTTACCGAGCTCAGCGG-CGTCACGTGTCAAGCAGT
    BIP(B1c+B2) TGACAAGCTCAAGGCCGAGC-AGGAGTCTCGAACTTCCAGA
    PCR F-CTCTTGGTTCTGGCATCG
    R-GTTCAGCGGGTATTCCTA
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    参考李华伟等[7]的方法建立红心莲茎腐病菌LAMP(25 μL)反应体系。LAMP反应温度及时间优化:将底物、引物、红心莲尖孢镰刀菌样本DNA依次加入PCR管混匀,无菌双蒸水补至25 μL,分成2组;1组用于最佳温度梯度试验,反应设60、61、62、63、64、65、66 ℃等7个温度梯度,反应时间为60 min;另1组取前1组中最佳反应温度,后设30、45、60、75、90 min等5个时间梯度;2组试验反应最后分别于80 ℃加热10.0 min,最后在冰上终止反应;设3次重复。LAMP扩增结果的判定:反应前在PCR管盖内侧加入2 μL的1000×SYBR Green Ⅰ,反应后瞬时离心将1000×SYBR Green Ⅰ离心至管底与LAMP反应产物混匀,观察LAMP反应产物颜色判定扩增结果。LAMP检测结果可靠性验证:以红心莲尖孢镰刀菌DNA为阳性对照、无菌双蒸水为阴性对照,采用建立的红心莲尖孢镰刀菌LAMP(25 μL)反应体系及琼脂糖凝胶电泳法进行验证。

    特异性验证:对27株供试菌株进行LAMP检测,通过观察LAMP产物颜色判定扩增结果;后从反应菌株中挑选1株从红心莲上分离的F. oxysporum,3株从多肉植物上分离的Colletotrichum destructivumCorynespora cassiicolaAlternaria alternata,3株从其他寄主植物上分离的镰刀菌属菌株F. moniliformeF. solaniF. sporotrichioides,共7株菌株进行琼脂糖凝胶电泳,以无菌双蒸水为阴性对照,通过判定电泳梯形条带的有无验证LAMP检测的特异性。试验设3次重复。

    灵敏度验证:将红心莲尖孢镰刀菌样本DNA按10倍浓度梯度依次稀释为10 ng·μL−1~1 fg·μL−1 8个不同浓度,同时进行LAMP检测和PCR检测,比对2种检测方法的灵敏度差异;试验设3次重复。

    利用建立的LAMP检测方法对采自福建(10份样本)及云南(5份样本)自然感染的红心莲茎腐病发病样本进行检测,同时通过PCR方法和组织分离法进行检测验证。LAMP和PCR检测样本DNA参照Lan等[12]的方法提取;组织分离法参照Yao等[3]的方法进行,略加改动。

    LAMP反应温度及时间优化结果显示,在7个温度梯度中,当反应温度62 ℃时,有梯形条带出现,但条带弱,随着反应温度提高,条带变亮,当反应温度达65 、66 ℃时,条带扩增效果较好且无明显差异(图2-a),确定最佳反应温度为65 ℃。在5个时间梯度中,反应时间45 min时,出现梯形条带,但条带弱,随着反应时间延长,条带变亮,在60、75、90 min时扩增效果好,但效果差异不明显(图2-b),为提高LAMP检测效率,确定最佳反应时间为60 min。依此建立红心莲尖孢镰刀菌LAMP(25 μL)最优反应体系:底物为20 mmol·L−1Tris-HCl、10 mmol·L−1(NH42SO4、6.0 mmol·L−1 MgSO4、50 mmol·L−1 KCl、0.8 mmol·L−1甜菜碱、1.4 mmol·L−1 dNTPs和8 U Bst DNA聚合酶,引物为0.2 μmol·L−1外侧引物F3/B3和1.6 μmol·L−1内侧引物FIP/BIP,1 μL样本DNA(50 ng),无菌双蒸水补足25 μL;LAMP反应温度及时间分别为65 ℃和60 min;后置于80 ℃加热10.0 min,最后在冰上终止反应。反应前在PCR管盖内侧加入2 μL的1000×SYBR Green Ⅰ,反应后瞬时离心,观察产物颜色,阳性呈绿色,阴性呈黄绿色。

    图  2  LAMP反应最佳温度及时间筛选
    Figure  2.  Optimal reaction temperature and time for LAMP assay

    LAMP检测结果可靠性验证表明,阳性对照呈绿色,对应的琼脂糖凝胶电泳扩增出梯形条带;阴性对照呈现黄绿色,琼脂糖凝胶电泳无梯形条带(图3)。表明建立的LAMP检测方法可行,能可靠检测到红心莲尖孢镰刀菌F. oxysporum

    图  3  LAMP检测红心莲尖孢镰刀菌Fusarium oxysporum
    注:a: LAMP产物凝胶电泳;b: LAMP产物颜色反应。1:Fusarium oxysporum, 2:CK阴性对照。
    Figure  3.  Detection of F. oxysporum on Echeveria by LAMP assay
    Note: a: agarose gel electrophoresis analysis of LAMP products; b: visual result of LAMP test. Lane 1: F. oxysporum; Lane 2: CK, negative control.

    特异性检测结果显示,27株供试菌株(表1)中仅有尖孢镰刀菌菌株的LAMP反应管呈阳性反应,其他菌株LAMP反应管均呈阴性反应;进行琼脂糖凝胶电泳的7株菌株,仅红心莲尖孢镰刀菌产生电脉梯形条带,其他6株菌株和阴性对照均没有产生条带(图4)。说明本研究建立的LAMP检测方法具特异性,仅能检出红心莲尖孢镰刀菌F. oxysporum

    图  4  LAMP检测特异性验证
    注:a: LAMP产物2.0%凝胶电泳特异性检测;M:marker DL2000, 1:Fusarium oxysporum, 2:Fusarium moniliforme, 3:Colletotrichum destructivum, 4:Corynespora cassiicola, 5:Alternaria alternate, 6: Fusarium sporotrichioides, 7:Fusarium solani, 8:CK阴性对照。 b: LAMP产物特异性颜色反应。1~8试管病原菌样品顺序同(a).
    Figure  4.  Specificity of LAMP assay
    Note: a: specificity of LAMP for F. oxysporum and other pathogens determined by 2.0% agarose gel electrophoresis. Lane M: marker DL2000; Lane 1: F. oxysporum; Lane 2: F. moniliforme; Lane 3: Colletotrichum destructivum; Lane 4: Corynespora cassiicola; Lane 5: Alternaria alternate; Lane 6: F. sporotrichioides; Lane 7: F. solani; Lane 8: CK, negative control. b: specificity of LAMP for F. oxysporum determined by visual results. 1–8 codes for pathogens in test tubes as shown under Note a.

    灵敏度验证结果显示,当红心莲尖孢镰刀菌F. oxysporum样本DNA质量浓度为10 fg·μL−1时,LAMP产物呈绿色(图5),发生阳性反应,对应的琼脂糖凝胶电泳扩增出梯形条带(图5);而PCR检测在DNA质量浓度为100 fg·μL−1时条带开始变弱,DNA质量浓度为10 fg·μL−1时已观察不到条带(图5)。说明本研究建立的LAMP检测方法具更高的灵敏性,其灵敏度是PCR检测的10倍。

    图  5  LAMP灵敏度检测验证
    注: a: LAMP产物琼脂溏凝胶电泳,M:marker DL2000,泳道1~8:DNA质量浓度分别为10 ng·μL−1、1 ng·μL−1、100 pg·μL−1、10 pg·μL−1、1 pg·μL−1、100 fg·μL−1、10 fg·μL−1、1 fg·μL−1; b: LAMP产物灵敏度颜色反应,1~8 PCR管DNA浓度顺序同(a);c:PCR产物琼脂糖凝胶电泳。
    Figure  5.  Sensitivity of LAMP and PCR
    Note: a: LAMP assay determined by 2.0% agarose gel electrophoresis. Lane M: marker DL 2 000 DNA; Lanes 1–8: amplified products of LAMP reaction using DNA at concentrations of 10 ng·μL−1, 1 ng·μL−1, 100 pg·μL−1, 10 pg·μL−1, 1 pg·μL−1, 100 fg·μL−1, 10 fg·μL−1, 1 fg·μL−1. b: visual results of LAMP reactions from diluted genomic DNA. Concentrations of 1–8 pathogens correspond to Note a. c: agarose gel electrophoresis analysis on PCR products.

    选取15份自然感染茎腐病菌红心莲茎腐病茎部组织样本,其中8份茎部有明显褐色病斑;5份症状不明显,茎部有零星褐色小点;2份无发病症状。经LAMP检测、PCR检测和组织分离法分别检测结果表明,田间红心莲茎腐病原菌-尖孢镰刀菌的检出率均为100%,3种方法的检测符合率100%,说明本研究建立的LAMP检测法可用于由尖孢镰刀菌引起红心莲茎腐病的田间快速检测。

    LAMP检测技术是新兴的基因扩增技术,被广泛用于植物病原菌的快速检测,与PCR检测相比,其可在更短时间内简便地扩增到靶标病原菌[16]。本研究根据红心莲尖孢镰刀菌的靶标基因序列EF-1α的6~8区域设计特异性LAMP引物组,通过LAMP体系优化,建立了红心莲尖孢镰刀菌LAMP快速检测方法,其对红心莲茎腐病发病样本的检测结果与PCR及组织分离法检测的结果一致,可用于由尖孢镰刀菌引起红心莲茎腐病的田间快速检测。

    特异性是LAMP检测技术的一个重要指标,国内外学者在尖孢镰刀菌及相关种的LAMP检测中利用不同靶标基因序列设计特异性引物[12, 17-18],并根据这些特异性引物建立相应的LAMP检测体系。EF-1a基因序列信息丰富,有研究表明EF-1a基因在镰刀菌种间具有一定的保守性,与rDNA-ITS、RAPD、β-tubulin等基因相比更具特异性[19],此外Ghosh等[14]报道了以EF-1a基因为靶标设计LAMP引物检测F. oxysporum f. sp. Ciceris,说明EF-1a基因序列适用于尖孢镰刀菌LAMP引物的设计。本研究选择红心莲尖孢镰刀菌EF-1α作为靶标基因序列设计LAMP特异性引物有效扩增到了所有的尖孢镰刀菌分离株,未能扩增所有其他菌株,包括一些密切相关的多肉植物上分离的Colletotrichum destructivumCorynespora cassiicolaAlternaria alternata,以及F. sporotrichioidesF. moniliformeF. sambucinumF. solaniF. nivaleF. acuminatumF. avenaceum等镰刀菌属真菌,表现出很高的特异性。

    灵敏度是LAMP检测技术的另一个重要指标,众多研究表明LAMP检测灵敏度一般高于相应的PCR检测[4, 18, 20]。本研究建立的LAMP方法DNA检测最小质量浓度为10 fg·μL−1,而PCR检测为100 fg·μL−1,LAMP法检测灵敏度提高了10倍;其灵敏度均高于以其他基因为靶点建立的LAMP方法[17-18]。Ghosh等[14]报道了以EF-1a基因为靶点设计LAMP引物检测F. oxysporum f. sp. ciceris,其灵敏度与本研究设计的特异性引物一致。但随着灵敏度的提高,易导致开盖形成气溶胶污染,造成假阳性;本研究以SYBR GreenⅠ作显色剂,反应前直接滴于PCR管盖内侧,降低了假阳性出现。

    本研究建立的红心莲尖孢镰刀菌LAMP快速检测技术体系,不仅特异性强、灵敏度高,而且检测结果可视、假阳性低,在田间能快速检测出由尖孢镰刀菌引起的红心莲茎腐病,具有很好的应用推广前景。今后,可对各种尖孢镰刀菌专化型的靶标基因序列进行探究,建立更加特异、灵敏的尖孢镰刀菌专化型LAMP快速检测技术体系。

  • 图  1   红心莲尖孢镰刀菌LAMP引物设计

    Figure  1.   Design of LAMP primers for F. oxysporum in Echeveria

    图  2   LAMP反应最佳温度及时间筛选

    Figure  2.   Optimal reaction temperature and time for LAMP assay

    图  3   LAMP检测红心莲尖孢镰刀菌Fusarium oxysporum

    注:a: LAMP产物凝胶电泳;b: LAMP产物颜色反应。1:Fusarium oxysporum, 2:CK阴性对照。

    Figure  3.   Detection of F. oxysporum on Echeveria by LAMP assay

    Note: a: agarose gel electrophoresis analysis of LAMP products; b: visual result of LAMP test. Lane 1: F. oxysporum; Lane 2: CK, negative control.

    图  4   LAMP检测特异性验证

    注:a: LAMP产物2.0%凝胶电泳特异性检测;M:marker DL2000, 1:Fusarium oxysporum, 2:Fusarium moniliforme, 3:Colletotrichum destructivum, 4:Corynespora cassiicola, 5:Alternaria alternate, 6: Fusarium sporotrichioides, 7:Fusarium solani, 8:CK阴性对照。 b: LAMP产物特异性颜色反应。1~8试管病原菌样品顺序同(a).

    Figure  4.   Specificity of LAMP assay

    Note: a: specificity of LAMP for F. oxysporum and other pathogens determined by 2.0% agarose gel electrophoresis. Lane M: marker DL2000; Lane 1: F. oxysporum; Lane 2: F. moniliforme; Lane 3: Colletotrichum destructivum; Lane 4: Corynespora cassiicola; Lane 5: Alternaria alternate; Lane 6: F. sporotrichioides; Lane 7: F. solani; Lane 8: CK, negative control. b: specificity of LAMP for F. oxysporum determined by visual results. 1–8 codes for pathogens in test tubes as shown under Note a.

    图  5   LAMP灵敏度检测验证

    注: a: LAMP产物琼脂溏凝胶电泳,M:marker DL2000,泳道1~8:DNA质量浓度分别为10 ng·μL−1、1 ng·μL−1、100 pg·μL−1、10 pg·μL−1、1 pg·μL−1、100 fg·μL−1、10 fg·μL−1、1 fg·μL−1; b: LAMP产物灵敏度颜色反应,1~8 PCR管DNA浓度顺序同(a);c:PCR产物琼脂糖凝胶电泳。

    Figure  5.   Sensitivity of LAMP and PCR

    Note: a: LAMP assay determined by 2.0% agarose gel electrophoresis. Lane M: marker DL 2 000 DNA; Lanes 1–8: amplified products of LAMP reaction using DNA at concentrations of 10 ng·μL−1, 1 ng·μL−1, 100 pg·μL−1, 10 pg·μL−1, 1 pg·μL−1, 100 fg·μL−1, 10 fg·μL−1, 1 fg·μL−1. b: visual results of LAMP reactions from diluted genomic DNA. Concentrations of 1–8 pathogens correspond to Note a. c: agarose gel electrophoresis analysis on PCR products.

    表  1   用于LAMP试验的菌株

    Table  1   Fungal isolates tested by LAMP assay

    菌株
    Species
    寄主
    Host
    菌株数量
    Number of isolates
    采集地
    Locality
    LAMP反应
    LAMP reaction
    Fusarium oxysporum 尖孢镰刀菌Echeveria Perle Von Nürnberg 红心莲5福建 Fujian+
    Fusarium oxysporum 尖孢镰刀菌Echeveria Perle Von Nürnberg 红心莲3云南 Yunnan+
    Fusarium oxysporum 尖孢镰刀菌 Cymbidium ensifolium 建兰1福建 Fujian+
    Fusarium oxysporum 尖孢镰刀菌 Citrullus lanatus 西瓜1福建 Fujian+
    Colletotrichum destructivum 毁灭炭疽菌Echeveria Perle Von Nürnberg 红心莲1福建 Fujian
    Corynespora cassiicola 山扁豆生棒孢Sedum morganianum 玉珠帘1福建 Fujian
    Alternaria alternata 链格孢菌Echeveria spp. 石莲花属1福建 Fujian
    Fusarium sporotrichioides 拟分枝孢镰刀菌 Pisum sativum 豌豆1福建 Fujian
    Fusarium solani 腐皮镰刀菌Solanum lycopersicum 番茄1福建 Fujian
    Fusarium moniliforme 串珠镰刀菌Oryza sativa 水稻1江苏 Jiangsu
    Fusarium nivale 雪腐镰刀菌Triticum aestivum 小麦1江苏 Jiangsu
    Fusarium sambucinum 接骨木镰刀菌Solanum tuberosum 马铃薯1黑龙江 Heilongjiang
    Fusarium acuminatum 锐顶镰刀菌Medicago sativa 苜蓿1甘肃 Gansu
    Fusarium avenaceum 燕麦镰刀菌Avena sativa 燕麦1甘肃 Gansu
    Botryosphaeria rhodina 葡萄座腔菌Psidium guajava 番石榴1福建 Fujian
    Verticillium dahliae 大丽轮枝菌Solanum melongena 茄子 1福建 Fujian
    Colletotrichum gloeosporioides 胶孢炭疽菌Cymbidium ensifolium 建兰1福建 Fujian
    Alternaria kikuchiana 梨黑斑病菌Pyrus pyrifolia1福建 Fujian
    Alternaria alternata 链格孢菌Cymbidium ensifolium 建兰1福建 Fujian
    Phomopsis asparagi 茎枯病菌Asparagus officinalis 芦笋1福建 Fujian
    Magnaporche oryzae 稻瘟病菌Oryza sativa 水稻1福建 Fujian
    注:所有镰刀菌及其他真菌菌株均保存在福建省农业科学院; +表示LAMP反应阳性,− 表示LAMP反应阴性。
    Note: All isolates of F. oxysporum and other fungi were collection of the Fujian Academy of Agricultural Science; positive (+) or negative (−) results were based on presence or absence of a LAMP product of expected size.
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    表  2   红心莲尖孢镰刀菌LAMP及PCR检测引物

    Table  2   LAMP and PCR primers of F. oxysporum in Echeveria

    引物
    Primer
    序列
    Sequence(5′−3′)
    F3 CACAACCTCAATGAGTGCGT
    B3 GCATGAGCGACAACATACCA
    FIP(F1c+F2) ACCCTTACCGAGCTCAGCGG-CGTCACGTGTCAAGCAGT
    BIP(B1c+B2) TGACAAGCTCAAGGCCGAGC-AGGAGTCTCGAACTTCCAGA
    PCR F-CTCTTGGTTCTGGCATCG
    R-GTTCAGCGGGTATTCCTA
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出版历程
  • 收稿日期:  2020-01-16
  • 修回日期:  2020-04-14
  • 刊出日期:  2020-08-18

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