Ammonia-oxidizing Bacteria Community in Rhizosphere Soils of Minjiang Estuary Wetlands
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摘要:目的 研究闽江河口湿地不同植物根际土壤中氨氧化细菌群落多样性及结构组成，为阐明湿地植物根际土壤脱氮功能微生物类群研究提供科学数据。方法 多点混合采样法采集不同季节不同土层闽江河口湿地芦苇、互花米草和红树林根际的土壤样品共24个，通过高通量测序技术测定样品氨单加氧酶编码基因amoA序列，生物信息学方法分析土壤样品氨氧化细菌的群落结构及多样性。结果 24个样品中共检测到300 527条有效序列，2 794个OTU。多样性分析结果表明，芦苇、互花米草和红树林根际土壤样品Chao指数差别不大，Shannon指数平均值表现为红树林＞芦苇＞互花米草；芦苇和红树林根际土壤样品Chao指数和Shannon指数均表现为春季最低；不同土层芦苇、互花米草和红树林根际土壤样品Chao指数和Shannon指数均未呈现出明显的变化趋势。群落结构分析结果表明，闽江河口湿地土壤样品中存在着较多分类地位未确定的氨氧化细菌，而分类地位确定的氨氧化细菌中，优势菌门为变形菌门（Proteobacteria），优势菌属包括亚硝化单胞菌属（Nitrosomonas）、硫杆菌属（Thiobacillus）、Caldimonas属等。结论 闽江河口湿地植物根际土壤中氨氧化细菌的主要优势菌群大多是亚硝化单胞菌属（Nitrosomonas），硫杆菌属（Thiobacillus）和Caldimonas属为个别样品的优势菌群。Abstract:Objective Community and diversity of ammonia-oxidizing bacteria in rhizosphere soils of reeds, smooth cordgrasses, and mangroves on the wetlands at Minjiang estuaries were studied.Method Twenty-four rhizosphere soil specimens in different layers on the wetlands were collected in 4 seasons with the multi-point mixed sampling method. Sequence of amoA gene in the specimens was determined by the high-throughput sequencing technology for a bioinformatic analysis on the ammonia-oxidizing bacteria community at the sites.Result A total of 300 527 final tags and 2 794 OTUs were detected in the collected specimens. The OTU-based diversity analysis showed little difference on the Chao index among the reed, smooth cordgrass, and mangrove rhizosphere soils. The Shannon index of the mangrove soil was higher than that of the reed soil, while that of the smooth cordgrass soil being the lowest. The Chao and Shannon indices of the reed and mangrove soils were lowest in spring. There was no apparent pattern on the Chao or Shannon index of the soils in different depths. The taxonomy of many of the ammonia-oxidizing bacteria could not be clearly classified. The dominant phylum of the microbes identified in the soils was Proteobacteria, and Nitrosomonas, Thiobacillus, and Caldimonas being the predominant genera.Conclusion Nitrosomonas presented in most of the rhizosphere soils at the Minjiang estuary wetlands, but Thiobacillus and Caldimonas were dominant in individual soil specimens.
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近年来，福建省许多具有一定研究开发价值的淡水土著品种由于原产地生态环境日益恶化，加上受经济利益驱使的滥捕等竭泽而渔的现象屡禁不止，导致这些土著品种的种群数量和质量严重衰竭。目前福建省在淡水土著特色鱼类品种的保护与开发等方面的研究工作进展缓慢，基础相对薄弱。这些土著品种的人工繁育技术、营养需求及养殖技术等方面的研究尚未突破，野生种质资源存在灭绝的风险。鉴于此，有必要对我省土著品种开展资源保护、苗种扩繁及养殖开发等研究工作，以实现其野生种质资源的恢复与延续，满足市场需求。
半刺厚唇鱼是福建省《南浦溪半刺厚唇鱼国家级水产种质资源保护区》、《松溪河厚唇鱼国家级水产种质资源保护区》的主要保护物种和溪河重要的渔业品种，为闽西北山区常见的食用鱼，因其肉质细腻，营养价值和经济价值较高，深受老百姓喜爱。
有关半刺厚唇鱼的相关研究资料极少，目前仅见有半刺厚唇鱼精子活力研究[1]、肌肉营养成分分析[2]、胚胎及胚后发育观察[3]、饥饿对其早期发育的影响[4]、扁弯口吸虫病的防治[5]、延迟投饵对仔鱼摄食、生长与存活的影响[6]，常用渔药对其幼鱼的急性毒性试验[7]等。刘丽丽等[8]利用驯养的野生半刺厚唇鱼亲本，在2008-2009年开展了其人工繁育试验，雌鱼催产率为54.0%，获得卵25 779粒；经过55~65 d的培育获得全长25~35 mm的鱼苗8 217尾，鱼苗成活率43.8%。本研究采用了新的催产药物配伍，实现了良好的催产效果；在解决生物饵料的供应问题后，形成了稳定的苗种培育技术，为半刺厚唇鱼苗种规模化生产和其种质资源的保护与养殖开发应用奠定了坚实基础。
1. 材料与方法
1.1 试验材料
1.1.1 亲本及来源
项目组于2014-2016年，分别从福建省南平和龙岩地区有关水域收集了平均规格约80 g·尾-1的半刺厚唇鱼野生(后备)亲本合计8 406尾，分别放入土池和水泥池进行培育。
1.1.2 催产药物
催产药物从宁波市第二激素厂购进，分别为促黄体素释放激素类似物(LRH-A2)、马来酸地欧酮(DOM)及绒毛膜促性腺激素(HCG)，药物催产时现配现用。
1.1.3 孵化系统
采用布卵框结合周转箱(流水孵化)或布卵框结合网箱(微流水充气孵化)组成孵化系统。
1.2 试验方法
1.2.1 亲本培育
将采集到的半刺厚唇鱼野生亲本分别放养于1口土池(面积1 996 m2)和2口水泥池(面积65×2 m2)驯化培育，放养密度约2.8尾·m-2，另套养适量鲢鳙鱼以调控水质。水深均维持在1.0~1.3 m，保持微流水。采用鲈鱼人工配合饲料(福建天马科技集团股份有限公司)进行培育，日投喂2~3次，日投喂量为鱼体重的1%~2%。
1.2.2 人工催产、授精与孵化
从驯化养殖的亲鱼中挑选健壮无伤的个体进行人工催产试验。性腺发育成熟的亲鱼外部形态特征为：雄鱼吻部珠星明显，轻压生殖孔有乳白色精液流出；雌鱼腹部膨大有弹性，卵巢轮廓明显，生殖孔微红，胸鳍和腹鳍呈淡黄色。催产激素采用促黄体素释放激素类似物(LRH-A2)+马来酸地欧酮(DOM)+绒毛膜促性腺激素(HCG)混合制剂，2针注射方式，第1针注射：3 mg LRH-A2+4 mg DOM+100 IU HCG；第2针注射：5 mg LRH-A2+5 mg DOM+1000 IU HCG；针距10~12 h，雄鱼不注射第1针，第2针剂量为雌鱼的1/2；在23~27℃水温条件下，效应时间为10~14 h；雌雄比例为(3~5):1。催产用雌鱼体重70~160 g，雄鱼体重55~180 g。
人工授精采用干法授精方式，具体操作为将到效应期的雌鱼腹部水分擦干，轻压其腹部将卵从生殖孔挤入干燥的塑料碗中；同时用吸管从雄鱼生殖孔吸入挤出的精液，用少量0.7%生理盐水(pH 7.0) 稀释后倒入刚挤出的卵中，再用羽毛轻轻搅拌混匀2~3 min后，加入清水将受精卵洗净去粘，然后放入孵化系统中进行孵化。
1.2.3 不同孵化方式试验
采用同一批次的亲鱼，经人工催产、挤卵和授精后，开展了不同孵化方式(静水、流水、充气)对受精卵孵化率的影响试验，孵化用水均为经至少24 h曝气的井水，孵化水温24~26℃。其中，静水孵化采用直径60 cm的塑料盆(面积约0.28 m2)，孵化时盛水30 L，每天早晚各换水1次，每次40%~50%；流水孵化过程中不间断微流水；充气孵化在20 m2水泥池中进行，水深50 cm，孵化过程中每天换水10%~20%。
1.2.4 苗种培育
仔鱼孵出后第4 d点数，并转移至水泥池中培育。仔鱼开口后，利用一种新型浮游动物采集装置[9]从饵料培育池收集浮游动物(主要为轮虫和枝角类无节幼体)，清洗过筛后投喂。10日龄前浮游动物采用80目过筛，10~25日龄则用60目过筛，20日龄开始驯食人工配合饲料，以鳗鱼料和海水鱼开口料(福建天马科技集团有限公司)为主。
1.2.5 生长特性
生长特性(全长与体重)测定自仔鱼开口后第2 d开始，以后每隔5 d从苗种培育池取样1次，每次测10尾以上。取样后立即用游标卡尺测定全长，并用感量0.1 mg的电子分析天平称重。
2. 结果与分析
2.1 人工繁育情况
2015-2016年半刺厚唇鱼人工繁育情况详见表 1。利用收集的野生亲本，经人工驯化培育后挑选性腺发育良好的亲本进行人工催产(共催产11个批次)，合计催产雌鱼679尾，平均催产率达78.9 %；获得卵子35.88万粒、受精卵26.82万粒，平均受精率74.8 %；孵化水花苗19.766万尾，平均孵化率73.7 %。在23~24℃的水温条件下，激素效应时间为12~14 h。
表 1 2015-2016年半刺厚唇鱼人工繁育情况Table 1. Artificial breeding of A. hemispinus (2015-2016)
2.2 不同孵化方式对半刺厚唇鱼受精率和孵化率的影响
结果(表 2)表明，3种孵化方式下卵子的受精率没有差异，孵化方式的不同不会对卵子的受精率产生明显影响；而3种孵化方式下受精卵的孵化率差异明显，孵化率从高到低依次为：流水孵化＞充气孵化＞静水孵化，流水孵化和充气孵化的孵化率均达到80%以上，两者之间没有差异；静水孵化的孵化率仅为40.6%，不及前者的1/2。
表 2 不同孵化方式对半刺厚唇鱼受精率和孵化率的影响Table 2. Effect of incubation on fertilization and hatching rates for A. hemispinus
2.3 苗种培育情况
2015~2016年期间，半刺厚唇鱼苗种培育情况详见表 3。经过39~51 d的培育，共获得平均规格3.25 cm的半刺厚唇鱼夏花苗约14万尾，苗种培育平均存活率达到70.9 %。
表 3 2015-2016年半刺厚唇鱼苗种培育情况Table 3. Cultivation of A. hemispinus from fertilized eggs (2015-2016)
2.4 生长特性
2.4.1 全长生长
对6~30日龄的仔、稚、幼鱼全长生长情况进行了测定，结果如图 1所示。仔、稚、幼鱼全长生长情况经点图分析，全长(YL)与日龄(X)呈指数函数关系，经计算求得YL=1.4605e0.0271x，相关系数R2=0.9982，表明二者相关非常密切。
2.4.2 体重增长
对6~30日龄的仔、稚、幼鱼的体重生长情况进行了测定，结果如图 2所示。仔、稚、幼鱼体重的生长情况经点图分析，体重(YH)与日龄(X)呈指数函数关系，经计算求得YH=0.0217e0.0967x，相关系数R2=0.9876，表明二者相关非常密切。
2.4.3 全长与体重的关系
对6~30日龄的仔、稚、幼鱼的全长与体重生长情况经点图分析，，结果如图 3所示，全长(YL)与体重(YH)呈幂函数关系，经计算求得YL=0.0059YH3.4886，相关系数R2=0.9868，表明二者相关非常密切。
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图 3 半刺厚唇鱼幼鱼全长与体重回归曲线Figure 3. Regression function on body length and weight of A. hemispinus larvae3. 讨论
实践证明，野生半刺厚唇鱼在水泥池和土池经过一段时间的驯养后，均可完全摄食人工配合饲料，通过强化培育，性腺均可发育成熟。但是，通过水泥池和土池的对比培育，土池亲本培育效果更好，主要表现在亲本体质更好、性腺发育同步性更高，而水泥池会出现少量亲本体质消瘦、性腺发育滞后的现象，其原因可能是野生亲本生性胆小，在水泥池驯化时应激反应更强烈，部分个体上台摄食成功率较低，导致其驯化效果相对较差；也可能与土池培育水体更大、水质更稳定、生物饵料和有机碎屑较丰富有关。
本研究采用了全新的催产药物配伍，催产成功率达78.9%，与以往的报道(54.0%)相比，催产率得到了大幅提高；此外，针对名贵淡水鱼品种苗种培育过程中常常遇见的生物饵料供应不足的难题，研制出一种新型浮游动物采集装置[9]应用于半刺厚唇鱼的育苗生产(主要采集生物饵料为淡水轮虫和枝角类无节幼体)，确保了生物饵料的稳定、充足供给，使苗种培育成活率达到70.9%。
在不同孵化方式试验中，静水孵化的孵化率偏低可能主要与孵化用水的水质指标变化太大、太快相关。分析认为，虽然在孵化过程中均有换水，但每天2次、每次40%~50%的换水量不足以抵消水质指标变化程度对受精卵发育进程的阻碍和抑制作用。此外，静水孵化所采用的小水体，水温变化幅度较流水和充气孵化方式的明显要大，这可能也会对受精卵的孵化率产生一定影响。因此，在半刺厚唇鱼人工育苗生产中，受精卵适宜的孵化方式为流水孵化和充气孵化，或流水结合充气孵化，而静水孵化是不可取的。
光唇鱼属鱼类的人工繁殖已有相关报道[10-12]，但半刺厚唇鱼的人工繁育除本文报道外，仅见有刘丽丽等[8]利用驯养的野生半刺厚唇鱼亲本，于2008-2009年开展了其人工繁育试验，获得了少量苗种。光唇鱼既可通过注射催产激素进行人工催产[10]，又可采用微流水刺激诱导产卵措施促使亲鱼产卵[12]；而刘丽丽等[8]的研究结果和本研究均表明：半刺厚唇鱼在人工催产后，即使加大水流刺激，亲鱼也未能自然产卵和受精。其原因固然与种类不同致使人工繁育难易程度不同相关，但是在自然界中，半刺厚唇鱼均是在激流浅滩中产卵这一习性，预示着该鱼无须人工注射催产激素亦可自然产卵受精。因此，半刺厚唇鱼人工繁育技术下一步需要攻克的技术难题在于找准其仿生态繁育条件，囤积足量的亲本，即可实现其苗种规模化繁育的目标。
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图 1 闽江河口湿地植物根际土壤氨氧化细菌OTUs Venn图
注：样品名称中的LW代表芦苇，HHMC代表互花米草，HSL代表红树林；数字1、2、3、4分别代表春、夏、秋、冬4个季节。
Figure 1. OTUs Venn diagrams of ammonia-oxidizing bacteria in rhizosphere soils of Minjiang estuary wetlands
Note: LW, HHMC, and HSL are soil specimens collected from rhizosphere of reeds, smooth cordgrasses, and mangroves, respectively. Numbers 1, 2, 3, and 4 represent spring, summer, autumn, and winter, respectively.
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图 2 门水平氨氧化细菌群落的相对丰度
Figure 2. Relative abundance of ammonia-oxidizing bacteria community at phylum level
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图 3 属水平Top 20优势氨氧化细菌群落的相对丰度
Figure 3. Relative abundance of top 20 ammonia-oxidizing bacteria community at genus level
表 1 高通量测序有效数据统计
Table 1 Filtered valid data from high-throughput sequencing
样品名称
Samples原始序列
Raw tags/条优质序列
Clean tags/条最终序列
Final tags/条OTUs/
个LW1a 23 148 6 290 5 446 163 LW1b 41257 26130 24864 315 LW2a 32053 14607 12276 539 LW2b 36627 17348 15295 556 LW3a 40246 17897 15598 474 LW3b 41435 10144 8707 406 LW4a 38718 19722 17352 524 LW4b 36911 12376 10754 499 HHMC1a 40228 17800 15776 429 HHMC1b 35002 13091 11649 404 HHMC2a 36520 10868 9459 470 HHMC2b 38414 16536 14322 536 HHMC3a 39430 11740 10271 468 HHMC3b 37391 12534 11365 362 HHMC4a 44997 43330 40818 90 HHMC4b 37943 12801 11441 535 HSL1a 36184 11429 10253 115 HSL1b 32530 11192 9682 289 HSL2a 33604 8413 4422 454 HSL2b 34211 13402 11695 328 HSL3a 26488 3697 2282 259 HSL3b 33368 11522 10244 498 HSL4a 34230 8480 7061 460 HSL4b 36005 10866 9495 481 注：下机数据去除barcode和primer并拼接后得到原始序列，再经进一步去除嵌合体、短序列后得到优质序列；最终序列指OTU表中每个样本对应的序列数目；OTUs为每个样本最终得到的OTU数目。表中，LW代表芦苇，HHMC代表互花米草，HSL代表红树林；数字1、2、3、4分别代表春、夏、秋、冬四个季节；字母a和b分别代表0～20 cm土层和20～40 cm土层。表2同。
Note: Raw tags are results after filtering low-quality fastq data and splicing; clean tags, after further removing chimeric and short sequences; final tags, sequence corresponding to OTUs of individual sample; and, OTUs, final OTUs of individual sample. LW, HHMC, and HSL are soil specimens collected from rhizosphere of reeds, smooth cordgrasses, and mangroves, respectively. Numbers 1, 2, 3, and 4 represent spring, summer, autumn, and winter, respectively. “a” after name of specimen indicates soil sampled at depth from 0 to 20cm; and, “b” from 20 to 40cm. Same for below.
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表 2 土壤样品氨氧化细菌的Alpha多样性指数
Table 2 Alpha diversity indices of ammonia-oxidizing bacteria in soil specimens
样品名称
Samples观测到的OTU数
Observed species覆盖率
Coverage/%Chao Shannon LW1a 113 97.61 171.27 3.20 LW1b 108 97.39 193.64 3.04 LW2a 247 94.23 416.68 5.71 LW2b 275 93.74 449.41 5.89 LW3a 251 94.70 379.34 5.66 LW3b 243 95.15 352.09 5.77 LW4a 257 94.15 411.49 5.83 LW4b 290 94.06 418.03 6.15 HHMC1a 219 95.74 327.27 5.64 HHMC1b 206 95.48 330.74 4.77 HHMC2a 267 93.71 446.53 5.50 HHMC2b 233 93.99 422.84 4.93 HHMC3a 256 94.05 419.28 5.36 HHMC3b 222 96.04 301.32 5.79 HHMC4a 20 99.52 31.96 0.31 HHMC4b 271 93.48 459.07 5.74 HSL1a 68 99.02 104.45 4.24 HSL1b 191 96.43 269.71 4.88 HSL2a 380 94.49 477.93 7.42 HSL2b 200 96.35 276.89 5.36 HSL3a 251 95.99 329.87 5.53 HSL3b 263 94.02 428.09 5.78 HSL4a 323 93.90 452.82 6.50 HSL4b 287 94.33 417.08 5.98
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[1] 惠丽华, 赵吉, 武琳慧, 等. 辉腾锡勒草原干涸湖泊中氨氧化微生物群落结构分析 [J]. 微生物学报, 2012, 52(1):104−113. HUI L H, ZHAO J, WU L H, et al. Community structure of ammonia-oxidizing prokaryotes at the dry-up lake in Huitengxile Grassland [J]. Acta Microbiologica Sinica, 2012, 52(1): 104−113.(in Chinese)
[2] MYERS N, MITTERMEIER R A, MITTERMEIER C G, et al. Biodiversity hotspots for conservation priorities [J]. Nature, 2000, 403(6772): 853−858. DOI: 10.1038/35002501
[3] 贺惠, 陈阳阳, 王勋功, 等. 海洋沉积物氨氧化菌群落结构的测序分析 [J]. 海洋科学, 2018, 42(8):22−29. DOI: 10.11759/hykx20171215002 HE H, CHEN Y Y, WANG X G, et al. Analysis of ammonia-oxidizing bacteria community structure in marine sediments using different sequencing technologies [J]. Marine Sciences, 2018, 42(8): 22−29.(in Chinese) DOI: 10.11759/hykx20171215002
[4] 王翠华, 武菲, 胡文革, 等. 艾比湖湿地三种植物根际土壤氨氧化细菌群落的多样性 [J]. 微生物学报, 2015, 55(9):1190−1200. WANG C H, WU F, HU W G, et al. Community diversity of ammonia-oxidizing bacteria of three plants rhizosphere in Ebinur Lake wetland [J]. Acta Microbiologica Sinica, 2015, 55(9): 1190−1200.(in Chinese)
[5] 陈伟, 季秀玲, 李建凯, 等. 纳帕海高原湿地氨氧化微生物群落结构及多样性研究 [J]. 昆明理工大学学报(自然科学版), 2019, 44(1):74−84. CHEN W, JI X L, LI J K, et al. Community and diversity of ammonia oxidation microbial in Napahai plateau wetland [J]. Journal of Kunming University of Science and Technology (Natural Science), 2019, 44(1): 74−84.(in Chinese)
[6] MING H X, ZHANG H Z, CHEN Q R, et al. Abundance and community structure of ammonium monooxygenase (AmoA) genes in the wet season of Liaohe estuary sediments [J]. Continental Shelf Research, 2020, 209: 104253. DOI: 10.1016/j.csr.2020.104253
[7] 郝永俊, 吴松维, 吴伟祥, 等. 好氧氨氧化菌的种群生态学研究进展 [J]. 生态学报, 2007, 27(4):1573−1582. DOI: 10.3321/j.issn:1000-0933.2007.04.038 HAO Y J, WU S W, WU W X, et al. Research progress on the microbial ecology of aerobic ammonia-oxidizing bacteria [J]. Acta Ecologica Sinica, 2007, 27(4): 1573−1582.(in Chinese) DOI: 10.3321/j.issn:1000-0933.2007.04.038
[8] CHANG Y K, FAN J F, SU J, et al. Spatial abundance, diversity, and activity of ammonia-oxidizing bacteria in coastal sediments of the Liaohe estuary [J]. Current Microbiology, 2017, 74(5): 632−640. DOI: 10.1007/s00284-017-1226-x
[9] 唐修峰, 秦华, 匡璐, 等. 基于宏基因组学的酸性森林土壤氨氧化微生物群落特征研究 [J]. 土壤学报, 2020. DOI: 10.11766/trxb202002020040 TANG X F, QIN H, KUANG L, et al. Metagenomics based study on community characteristics of ammonia-oxidizing microorganisms in acid forest soil [J]. Acta Pedologica Sinica, 2020.(in Chinese) DOI: 10.11766/trxb202002020040
[10] 王蓉, 朱杰, 金涛, 等. 稻虾共作模式下稻田土壤氨氧化微生物丰度和群落结构的特征 [J]. 植物营养与肥料学报, 2019, 25(11):1887−1899. DOI: 10.11674/zwyf.18414 WANG R, ZHU J, JIN T, et al. Characteristics of ammonia oxidation microbial abundance and community structure in paddy soils of rice-crayfish symbiosis farming system [J]. Journal of Plant Nutrition and Fertilizers, 2019, 25(11): 1887−1899.(in Chinese) DOI: 10.11674/zwyf.18414
[11] ISLAM G M, VI P, GILBRIDE K A. Functional relationship between ammonia-oxidizing bacteria and ammonia-oxidizing Archaea populations in the secondary treatment system of a full-scale municipal wastewater treatment plant [J]. Journal of Environmental Sciences, 2019, 86: 120−130. DOI: 10.1016/j.jes.2019.04.031
[12] 郑洁, 刘金福, 吴则焰, 等. 闽江河口红树林土壤微生物群落对互花米草入侵的响应 [J]. 生态学报, 2017, 37(21):7293−7303. ZHENG J, LIU J F, WU Z Y, et al. Soil microbial community of mangrove forests and its responses to the invasion of Spartina alterniflora in the Minjiang River Estuary [J]. Acta Ecologica Sinica, 2017, 37(21): 7293−7303.(in Chinese)
[13] 赵紫檀, 郑洁, 吴则焰, 等. 互花米草入侵下红树林土壤微生物群落特征 [J]. 森林与环境学报, 2017, 37(2):169−173. ZHAO Z T, ZHENG J, WU Z Y, et al. Features of Mangrove soil microbial community with Spartina alterniflora invaded [J]. Journal of Forest and Environment, 2017, 37(2): 169−173.(in Chinese)
[14] 佘晨兴, 仝川. 闽江口芦苇沼泽湿地土壤产甲烷菌群落结构的垂直分布 [J]. 生态学报, 2012, 32(17):5299−5308. DOI: 10.5846/stxb201203050299 SHE C X, TONG C. Vertical distribution of methanogen community structures in Phragmites australis marsh soil in the Min River estuary [J]. Acta Ecologica Sinica, 2012, 32(17): 5299−5308.(in Chinese) DOI: 10.5846/stxb201203050299
[15] 曾志华, 杨民和, 佘晨兴, 等. 闽江河口区淡水和半咸水潮汐沼泽湿地土壤产甲烷菌多样性 [J]. 生态学报, 2014, 34(10):2764−2681. ZENG Z H, YANG M H, SHE J X, et al. Diversity of methanogen communities in tidal freshwater and brackish marsh soil in the Min River estuary [J]. Acta Ecologica Sinica, 2014, 34(10): 2764−2681.(in Chinese)
[16] 陈丽华, 吕新, 刘兰英, 等. 闽江河口湿地土壤硝化-反硝化细菌数量的时空分布特征 [J]. 福建农业学报, 2018, 33(10):1078−1083. CHEN L H, LYU X, LIU L Y, et al. Spatiotemporal distributions of nitrifying and denitrifying bacteria in soil of Minjiang estuary wetland [J]. Fujian Journal of Agricultural Sciences, 2018, 33(10): 1078−1083.(in Chinese)
[17] ROTTHAUWE J H, WITZEL K P, LIESACK W. The ammonia monooxygenase structural gene AmoA as a functional marker: Molecular fine-scale analysis of natural ammonia-oxidizing populations [J]. Applied and Environmental Microbiology, 1997, 63(12): 4704−4712. DOI: 10.1128/AEM.63.12.4704-4712.1997
[18] SURA-DE JONG M, REYNOLDS R J, RICHTEROVA K, et al. Selenium hyperaccumulators harbor a diverse endophytic bacterial community characterized by high selenium resistance and plant growth promoting properties [J]. Frontiers in Plant Science, 2015, 6: 113.
[19] 张爱娣, 郑仰雄, 吴碧珊, 等. 滨海湿地土壤微生物群落多样性及其影响因素 [J]. 水土保持研究, 2020, 27(3):8−14, 22. ZHANG A D, ZHENG Y X, WU B S, et al. Soil microbial community diversity and its influencing factors in coastal wetland [J]. Research of Soil and Water Conservation, 2020, 27(3): 8−14, 22.(in Chinese)
[20] CHAPARRO J M, BADRI D V, BAKKER M G, et al. Root exudation of phytochemicals in Arabidopsis follows specific patterns that are developmentally programmed and correlate with soil microbial functions [J]. PLoS One, 2013, 8(2): e55731. DOI: 10.1371/journal.pone.0055731
[21] CHAPARRO J M, BADRI D V, VIVANCO J M. Rhizosphere microbiome assemblage is affected by plant development [J]. The ISME Journal, 2014, 8(4): 790−803. DOI: 10.1038/ismej.2013.196
[22] 李振灵, 丁彦礼, 白少元, 等. 潜流人工湿地基质结构与微生物群落特征的相关性 [J]. 环境科学, 2017, 38(9):3713−3720. LI Z L, DING Y L, BAI S Y, et al. Correlations Between Substrate Structure and Microbial Community in Subsurface Flow Constructed Wetlands [J]. Environmental Science, 2017, 38(9): 3713−3720.(in Chinese)
[23] LIU J, YI N K, WANG S, et al. Impact of plant species on spatial distribution of metabolic potential and functional diversity of microbial communities in a constructed wetland treating aquaculture wastewater [J]. Ecological Engineering, 2016, 94: 564−573. DOI: 10.1016/j.ecoleng.2016.06.106
[24] VYMAZAL J. Removal of enteric bacteria in constructed treatment wetlands with emergent macrophytes: A review [J]. Journal of Environmental Science and Health, Part A, 2005, 40(6/7): 1355−1367.
[25] STOTTMEISTER U, WIEßNER A, KUSCHK P, et al. Effects of plants and microorganisms in constructed wetlands for wastewater treatment [J]. Biotechnology Advances, 2003, 22(1/2): 93−117.
[26] 沈琦, 郝雅荞, 徐潇航, 等. 基于高通量测序技术的盐地碱蓬根际细菌群落多样性分析 [J]. 浙江理工大学学报(自然科学版), 2020, 43(5):671−677. SHEN Q, HAO Y Q, XU X H, et al. Analysis of rhizosphere bacterial diversity in Suaeda glauca Bunge based on high-throughput sequencing [J]. Journal of Zhejiang Sci-Tech University (Natural Sciences Edition), 2020, 43(5): 671−677.(in Chinese)
[27] KE X B, LU Y H. Adaptation of ammonia-oxidizing microorganisms to environment shift of paddy field soil [J]. FEMS Microbiology Ecology, 2012, 80(1): 87−97. DOI: 10.1111/j.1574-6941.2011.01271.x
[28] 贺纪正, 沈菊培, 张丽梅. 土壤硝化作用的新机理-氨氧化古菌在酸性土壤氨氧化中的主导作用 [J]. 科学观察, 2012, 7(6):58−60. HE J Z, SHEN J P, ZHANG L M. A new mechanism of soil nitrification-the leading role of ammonia oxidizing archaea in acid soil ammonia oxidation [J]. Science Focus, 2012, 7(6): 58−60.(in Chinese)
[29] DAIMS H, LEBEDEVA E V, PJEVAC P, et al. Complete nitrification by Nitrospira bacteria [J]. Nature, 2015, 528(7583): 504−509. DOI: 10.1038/nature16461
[30] VAN KESSEL M A H J, SPETH D R, ALBERTSEN M, et al. Complete nitrification by a single microorganism [J]. Nature, 2015, 528(7583): 555−559. DOI: 10.1038/nature16459
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期刊类型引用(6)
1. 林而舒. 不同解冻方式对半刺厚唇鱼风味物质的影响. 水产养殖. 2023(07): 1-5+17 . 
百度学术
2. 林而舒，胡振禧. 不同养殖密度对半刺厚唇鱼幼鱼生长特性的影响. 水产养殖. 2022(04): 34-37 . 百度学术
3. 蔡荔萱. 福建淡水土著鱼类养殖开发利用现状及发展建议. 福建畜牧兽医. 2021(04): 15-18 . 百度学术
4. 秦志清，林建斌，梁萍，章兆兴，邱曼丽，李学贵. 半刺厚唇鱼肌肉脂肪酸组成分析. 安徽农业科学. 2020(21): 192-194 . 百度学术
5. 秦志清，樊海平，林建斌，梁萍，叶小军，陈斌. 土池主养半刺厚唇鱼关键技术及效果研究. 福建农业科技. 2019(08): 46-48 . 百度学术
6. 梁萍，秦志清，林建斌，吴根飞，朱庆国，邱曼丽. 饲料中不同蛋白质水平对半刺厚唇鱼幼鱼生长性能及消化酶活性的影响. 中国农学通报. 2018(02): 136-140 . 百度学术
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