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杏鲍菇528深层发酵生物合成麦角硫因的培养基优化

汤葆莎, 吴俐, 翁敏劼, 赖谱富, 李怡彬

汤葆莎,吴俐,翁敏劼,等. 杏鲍菇528深层发酵生物合成麦角硫因的培养基优化 [J]. 福建农业学报,2021,36(6):728−734. DOI: 10.19303/j.issn.1008-0384.2021.06.016
引用本文: 汤葆莎,吴俐,翁敏劼,等. 杏鲍菇528深层发酵生物合成麦角硫因的培养基优化 [J]. 福建农业学报,2021,36(6):728−734. DOI: 10.19303/j.issn.1008-0384.2021.06.016
TANG B S, WU L, WENG M J, et al. Optimization of medium for biosynthesis of ergothioneine by submerged fermentation of Pleurotus eryngii 528 [J]. Fujian Journal of Agricultural Sciences,2021,36(6):728−734. DOI: 10.19303/j.issn.1008-0384.2021.06.016
Citation: TANG B S, WU L, WENG M J, et al. Optimization of medium for biosynthesis of ergothioneine by submerged fermentation of Pleurotus eryngii 528 [J]. Fujian Journal of Agricultural Sciences,2021,36(6):728−734. DOI: 10.19303/j.issn.1008-0384.2021.06.016

杏鲍菇528深层发酵生物合成麦角硫因的培养基优化

基金项目: 国家重点研发计划项目(2018YFD0400200);福建省科技计划公益类专项(2019R1032-11);福建省农业科学院对外合作项目(DEC201821204);福建省农业科学院创新团队建设项目(STIT2017-3-5、STIT2017-1-10)
详细信息
    作者简介:

    汤葆莎(1971−),女,硕士,高级农艺师,研究方向:农产品加工技术及食用菌栽培研究(E-mail:tbsty@126.com

    通讯作者:

    李怡彬(1981−),男,硕士,研究员,研究方向:食品科学与工程(E-mail:lyb9951@163.com

  • 中图分类号: S 646.1+4

Optimization of medium for biosynthesis of ergothioneine by submerged fermentation of Pleurotus eryngii 528

  • 摘要:
      目的  为提高杏鲍菇528发酵物的麦角硫因含量,筛选杏鲍菇528培养的营养配方,以期为开发高含量的麦角硫因杏鲍菇深层液体发酵物提供理论基础。
      方法  以固体培养菌丝生长速度和菌丝形态探讨杏鲍菇528菌丝生长的适宜碳氮源;采用单因素试验,以发酵物干重、沉淀物情况和初始pH值为指标,研究杏鲍菇528液体深层发酵菌丝生长的营养配方,探究不同氨基酸对深层液体培养发酵物麦角硫因含量的影响;最后通过L9(34)正交试验分析提高杏鲍菇528发酵物麦角硫因含量的深层发酵培养基配方。
      结果  杏鲍菇528固体培养菌丝生长的适宜碳、氮源分别为玉米糁粉和蛋白胨;在杏鲍菇528液体发酵培养中,玉米糁粉2.0%和蛋白胨2.0%组合碳氮源培养基液体培养的发酵物干重值达33.30±0.81 g·L−1,显著高于其他浓度比例的碳氮源组合,且沉淀物情况和初始pH更适宜杏鲍菇528液体培养;天冬氨酸、半胱氨酸、组氨酸、精氨酸、谷氨酸这5种氨基酸均可明显提高杏鲍菇528发酵物麦角硫因产率,其中组氨酸诱导培养的杏鲍菇液体发酵物中麦角硫因含量最高,是对照组的3.73倍,且明显高于其他氨基酸。
      结论  杏鲍菇528深层发酵生物合成麦角硫因的最佳培养基配方为:玉米糁粉2.0%、蛋白胨1.5%、组氨酸0.15%、麦麸细粉1.0%、KH2PO4 0.1%、MgSO4 0.1%、谷氨酸0.1%和维生素B6 0.1%,在此条件下,杏鲍菇发酵物麦角硫因含量达20.50±1.80 mg·L−1
    Abstract:
      Objective  In order to increase the ergothioneine content of Pleurotus eryngii 528 fermented products, the nutritional formula of Pleurotus eryngii 528 was screened to provide a theoretical basis for the development of high content of ergothioneine in submerged fermentation of Pleurotus eryngii .
      Method  The suitable carbon and nitrogen sources for Pleurotus eryngii 528 mycelium growth were discussed based on the solid culture mycelium growth rate and mycelium morphology. A single factor test was conducted to study the nutritional formula of mycelium growth in Pleurotus eryngii 528 submerged fermentation, with the indexes of the dry weight of the fermented product, the sedimentation and the initial pH value of the medium. The effects of different amino acids on ergothioneine content in submerged fermentation broth were investigated. Finally, L9(34) orthogonal test was used to analyze the formula of submerged fermentation medium for increasing ergothioneine content in Pleurotus eryngii 528.
      Result  Corn grits and peptone were the suitable carbon and nitrogen sources for the growth of Pleurotus eryngii 528. In the liquid fermentation of Pleurotus eryngii 528, the dry weight of the fermentation product in the liquid culture medium of corn grits powder 2.0% and peptone 2.0% reached 33.30±0.81 g·L−1 , which was significantly higher than that of other carbon and nitrogen source combinations, and the sediment condition and initial pH value were more suitable for Pleurotus eryngii 528 liquid culture. Aspartic acid, cysteine, histidine, arginine and glutamic acid improved significantly the ergothioneine yield of Pleurotus eryngii 528 fermented product. The content of ergothioneine in the liquid fermentation of Pleurotus eryngii induced by histidine was the highest, which was 3.73 times of the control group, and was significantly higher than other amino acids.
      Conclusion  The optimum medium formula of ergothioneine biosynthesis by submerged fermentation of Pleurotus eryngii 528 was as follows: corn grits 2.0%, peptone 1.5%, histidine 0.15%, wheat bran powder 1.0%, KH2PO4 0.1%, MgSO4 0.1%, glutamic acid 0.1% and vitamin B6 0.1%. Under these conditions, the content of ergothioneine in Pleurotus eryngii fermentation reached 20.50±1.80 mg·L−1.
  • 【研究意义】麦角硫因(L-Ergothioneine, EGT)是自然界存在的一种小分子含硫化合物,也是一种结构及功能独特的天然稀有手性氨基酸。该化合物最初在麦角菌(Claviceps purpurea)中被发现,作为细胞生理保护剂在人体内对细胞有高度保护作用,有清除自由基、解毒、维持DNA生物合成和细胞正常生长等多种生理功能[1-3],在食品、医药和化妆品等行业具有广泛的应用前景。利用食用菌液体深层发酵生产麦角硫因,具有生产成本低、易于工业化连续生产、产品安全等优点,是生物合成麦角硫因的发展方向。【前人研究进展】食用菌中含有EGT且可用不同制备方法获取已被学者证实。BAO H N D等[4]从金针菇(Flammulina velutipes)子实体中提取到EGT,NANCY J D[5]从固态发酵培养的双孢蘑菇(Agaricus bisporus)菌丝体中提取到EGT,TEPWONG P等[6]从液体发酵培养的香菇(Lentinus edodes)菌丝体中提取到EGT。STAMPFLI A R等[7]、刘琦等[8]和VALACHOVÁ K等[9]通过对EGT不同制备方法比较后指出,生物发酵合成是低成本、规模化生产EGT的主要模式,利用食用菌菌丝体液体发酵制备EGT是种较好的产业化生产方式,但仍有必要进一步研究如何提高食用菌菌丝体深层发酵液中的EGT含量。为此,众多学者尝试通过对食用菌深层发酵过程中的营养代谢调控研究来提高其发酵物EGT产率。TEPWONG P等[10]研究了香菇菌丝体深层发酵液中添加不同碳源对菌丝体EGT含量的影响,结果表明果糖可显著提高其菌丝体中的EGT含量;LEE W Y等[11]研究了紫黑灵芝(Ganoderma neo-japonicum)菌丝体深层发酵液中添加不同氨基酸对菌丝体EGT含量的影响,结果表明蛋氨酸(Met)或半胱氨酸(Cys)可显著提高其菌丝体EGT含量。研究证实,人们可以通过调控食用菌菌丝体深层发酵液中的碳氮源、氨基酸种类来影响微生物发酵过程中的EGT含量。杏鲍菇(Pleurotus eryngii)是集食用、药用于一体的食用菌,研究证实通过深层发酵培养获得的菌丝体,其营养价值与室内菌袋层架栽培的子实体相当[12-13],但其中的EGT含量仍处在较低水平[10]。为有效提高杏鲍菇深层发酵液中的EGT含量,有必要通过碳氮源、氨基酸等营养控制手段来调控微生物发酵过程以提高EGT产量。近年来,LIN S D等[14]在研究杏鲍菇菌丝体深层发酵液的品质特性时发现,杏鲍菇菌丝体及发酵液中均含有一定量的EGT,进而提出需进行发酵产物全利用以提高杏鲍菇深层发酵EGT产率。【本研究切入点】但基于提高杏鲍菇深层发酵液中EGT产率的培养配方鲜见报道。【拟解决的关键问题】因此,本文以提高杏鲍菇528深层发酵物中EGT含量为指标,研究不同碳氮源对杏鲍菇528固体培养平皿菌丝生长的影响,探讨玉米糁粉和蛋白胨对杏鲍菇528深层发酵菌丝生长的影响,再比较分析不同氨基酸对杏鲍菇528液体培养发酵物麦角硫因含量的影响,最后依据EGT含量来设计提高杏鲍菇528发酵物麦角硫因含量的深层发酵营养配方,以解决目前杏鲍菇深层发酵菌丝体EGT含量偏低的问题。

    杏鲍菇528菌种为福建省农业科学院食用菌研究所提供。试验所需的碳氮源、氨基酸以及其他试剂均购于试剂公司,化学试剂均为分析纯。

    采用真空冷冻干燥法,设置干燥流程为:−20 ℃ 1 h、−5 ℃ 2 h、20 ℃ 2 h、60 ℃至样品完成干燥。具体操作方法为:将试验结束后的样品-发酵物倒于可供冷冻干燥的器皿中,置于−40 ℃冰箱中预冷5~10 h后,于真空冷冻干燥机(SCIENTZ-30ND,宁波新芝生物科技股份有限公司)中冷冻干燥24 h,取出已干燥的发酵物置于干燥皿中,使用电子天平称量并记录后,分装于样品袋内。

    参考姜文侠[15]的方法进行检测,检测仪器为Waters e2695型高效液相色谱仪。

    色谱分析条件:Sunfire C18 150×4.6 mm 3.5 μm液相色谱柱;流动相为乙腈-水(3∶97);流速1.0 mL·min−1;柱温30 ℃;检测波长254 nm;进样量10 μL。

    标准品溶液配制:配制不同浓度(0.1 μg·mL−1、1.0 μg·mL−1、5.0 μg·mL−1、10.0 μg·mL−1、15.0 μg·mL−1和20.0 μg·mL−1)的标准品稀释液,用0.45 μm微孔滤膜过滤,取滤液进样检测并绘制标准曲线。

    供试品溶液配制:称取粉碎后的冻干杏鲍菇528发酵物样品0.5 g,加入甲醇10 mL,搅拌均匀后用数控超声波清洗器(KQ-600DV,昆山市超声仪器有限公司)超声处理20 min,中性滤纸过滤后用针筒吸取上清液1 mL,再用0.45 μm微孔滤膜过滤,滤液即为供试品溶液。上机检测麦角硫因含量。

    为了解杏鲍菇528菌丝生长习性,试验以固体平皿培养的方式来进行菌丝生长的适宜碳氮源筛选。固体平皿培养的基础培养基为:马铃薯20%、葡萄糖2%、琼脂2%(PDA培养基),选取:葡萄糖、麦芽糖、蔗糖、乳糖和玉米糁粉作为待筛选碳源,玉米浆、蛋白胨、酵母粉、牛肉膏作为待筛选氮源,培养基中各筛选碳氮源的比例皆为2%。培养基配制好后,于121 ℃高压灭菌20 min,待培养基冷却至50 ℃左右,将培养基倒入90 mm平皿中,每个处理设计3次重复。培养基冷却凝固后接入直径4~5 mm的杏鲍菇528菌块,置于25 ℃培养箱内遮光培养9 d。菌丝萌发2 d后,开始观察菌丝生长情况,采用十字交叉法,每天测量菌落直径,以菌丝长满平皿的时间和菌丝形态来综合判断杏鲍菇528固体培养菌丝生长的适宜碳氮源。

    根据1.3.1确定的最佳碳氮源,来设计杏鲍菇528深层发酵培养配方,碳氮源的比例均定为1.0%、2.0%、3.0%,配方其他成分为:麦麸细粉1.0%、KH2PO4 0.1%、MgSO4 0.1%、谷氨酸0.1%和维生素B6 0.1%,每处理设置3次重复。配制后培养液于烧杯中观察沉淀物情况,沉淀物情况以“+”表示(“+” 越多表示沉淀物情况越严重),再检测初始pH值;将培养液分装于250 mL三角瓶中(100 mL/瓶,加玻璃珠5粒/瓶),121 ℃灭菌20 min后待培养基冷却至常温,每个三角瓶接入5片直径为8 mm的杏鲍菇528菌块,置于25 ℃、180 rpm恒温振荡培养箱中遮光培养7 d停止试验,取出气生菌丝和玻璃珠,按1.2.1方法检测其发酵物干重。最终根据发酵物干重、沉淀物情况和初始pH值,来筛选适宜杏鲍菇528深层发酵培养的初始配方。

    在1.3.2确定的深层发酵培养初始配方中分别添加0.15%浓度的待筛选氨基酸:天冬氨酸、半胱氨酸、组氨酸、精氨酸、谷氨酸,每个处理3次重复。将培养液分装于250 mL三角瓶中(100 mL/瓶,加玻璃珠5粒/瓶),121 ℃灭菌20 min后待培养基冷却至常温,每瓶接入10 mL的杏鲍菇528液体母种,置于25 ℃、180 rpm恒温振荡培养箱中遮光培养7 d停止试验,取出气生菌丝和玻璃珠,将发酵物按1.2.1方法真空冷冻干燥,冻干后按1.2.2方法检测每个处理重复的混合样本中的麦角硫因含量,根据发酵物干重和检测出的麦角硫因含量来筛选有助于提高杏鲍菇发酵物麦角硫因含量的氨基酸。

    根据固体培养的碳氮源及液体培养的氨基酸筛选试验结果,提高杏鲍菇528发酵物麦角硫因含量的发酵配方设计采用三因素三水平的正交试验,以麦角硫因含量作为考察指标,按照L9(34)正交表安排试验,因素水平如表1所示。250 mL三角瓶装液量为100 mL,加玻璃珠5粒/瓶,121 ℃灭菌20 min后待培养基冷却至常温。每瓶接入杏鲍菇528液体母种10 mL,置于25 ℃、180 rpm恒温振荡培养箱中遮光培养7 d停止试验,取出气生菌丝和玻璃珠,按1.2.1方法将发酵物真空冷冻干燥,冻干后将每个处理重复样本混匀并按1.2.2方法检测其麦角硫因含量。采用正交设计助手LATIN 3.1对L9(34)正交试验结果进行分析,以确定提高杏鲍菇发酵物麦角硫因含量的发酵配方。

    表  1  正交试验设计因素及水平
    Table  1.  Factors and levels of orthogonal experimental design
    水平
    Level
    因素 Factor%
    玉米糁粉
    Corngrits A
    蛋白胨
    Peptone B
    组氨酸
    Histidine C
    11.51.50.10
    22.02.00.15
    32.52.50.20
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    图1菌丝生长态势和图2-A菌丝生长速率变化可以看出,杏鲍菇528菌丝在葡萄糖、麦芽糖、蔗糖、乳糖和玉米糁粉这5种碳源制作的PDA平板培养基都可以生长,但菌丝生长情况存在差异,这表明杏鲍菇528菌种对碳源的利用有选择性。试验结果表明,在25 ℃培养箱内遮光培养且其他培养条件不变时,玉米糁粉培养基中杏鲍菇菌丝生长态势最强,生长速率最快,菌丝整齐均匀、洁白浓密,到第9 d菌丝基本达满皿水平;蔗糖培养基次之,菌丝长满平皿的80%(7.2 cm);麦芽糖和葡萄糖培养基的菌丝也较洁白浓密,菌丝达满皿的70%~80%;乳糖培养基的菌丝虽浓白,但生长态势最弱,生长速度最慢,到第9 d菌丝才达其他处理组一半的水平。因此,其他培养条件不变时,适宜杏鲍菇528菌丝生长的碳源为玉米糁粉。

    图  1  不同碳、氮源培养基对杏鲍菇528菌丝生长的影响(第9 d,左为碳源,右为氮源)
    Figure  1.  Effects of different carbon and nitrogen source culture media on mycelial growth of Pleurotus eryngii 528 (At 9th day, left as carbon sources, right as nitrogen sources)
    图  2  不同碳、氮源培养基杏鲍菇528菌丝生长速率变化(A为碳源,B为氮源)
    Figure  2.  Variation of mycelial growth rate of Pleurotus eryngii 528 with different carbon and nitrogen sources (A is carbon sources, B is nitrogen sources)

    图1图2-B可知,杏鲍菇528菌丝在添加不同添加氮源的PDA平板培养基上也均能生长,但长势存在差异,按菌丝总体生长态势由好到差排序为:蛋白胨>牛肉膏 ≈ 酵母粉>玉米浆。蛋白胨培养基上的杏鲍菇菌丝生长最快,且旺盛、整齐均匀,到第9 d菌丝接近满皿水平;牛肉膏和酵母粉培养基次之,菌丝达满皿的70%~80%;而玉米浆培养基的菌丝也可生长,且浓白,但生长最慢,长势才达其他处理组一半左右的水平,明显不如其他氮源的培养基。试验结果表明,蛋白胨为杏鲍菇528菌丝生长的适宜氮源。此研究结果与晏爱芬等[16]和马璐[17]研究的杏鲍菇菌丝适宜碳氮源结果存在差异,这可能是杏鲍菇菌株不同导致其营养条件需求不一样。

    在其他培养基成分不变的条件下,不同比例玉米糁粉和蛋白胨对杏鲍菇528深层发酵培养发酵物干重的影响结果见表2。试验发现,玉米糁粉比例的加大,会使培养基沉淀物增多,这可能是由于玉米糁粉在蒸煮过程中淀粉糊化,释放于培养液中,导致培养液中存在或多或少的沉淀物,这些淀粉沉淀的溶出增加了培养液的碳源浓度。当玉米糁粉比例为2%时,发酵物干重显著高于1%比例(P<0.05),但与3%比例没有明显变化。从表2可知,蛋白胨可在一定范围内调节培养液的初始pH值,当蛋白胨添加量≤1.0%浓度时,培养液初始pH值<5.00,这不利于杏鲍菇528深层发酵培养,其发酵物干重显著低于其他添加量处理组。不同玉米糁粉和蛋白胨浓度对杏鲍菇528液体深层发酵的菌丝生长有显著影响,在其它培养条件不变下,2.0%玉米糁粉和2.0%蛋白胨培养液制备的杏鲍菇发酵物干重最多,达33.30±0.81 g·L−1,显著高于其他碳氮源配比组合。因此,杏鲍菇528深层发酵培养适宜配方确定为:玉米糁粉2.0%、蛋白胨2.0%、麦麸细粉1.0%、KH2PO4 0.1%、MgSO4 0.1%、谷氨酸0.1%和维生素B6 0.1%。

    表  2  不同比例玉米糁粉和蛋白胨对杏鲍菇528深层发酵培养液的沉淀物情况、初始pH及发酵物干重影响
    Table  2.  Effects of different proportions of corn grits and peptone on the sediment condition, initial pH in culture medium and dry weight of fermentation products of Pleurotus eryngii 528 submerged fermentation
    配方
    Formula
    玉米糁粉
    Corn
    grits/%
    蛋白胨
    Peptone/%
    麦麸细粉
    Wheat bran
    powder/%
    谷氨酸
    Glutamic
    acid/%
    维生素B6
    Vitamin
    B6/%
    KH2PO4/%MgSO4/%沉淀物情况
    Sediment
    condition
    pH发酵物干重
    Dry weight of fermentation/
    (g·L−1)
    A1.01.01.00.10.10.10.1+4.9624.60±0.17 D
    B1.02.01.00.10.10.10.1+5.1031.20 ±0.99 C
    C1.03.01.00.10.10.10.1+5.1131.50 ±1.19 C
    D2.01.01.00.10.10.10.1++4.9624.70±0.11 D
    E2.02.01.00.10.10.10.1++5.1033.30±0.81 A
    F2.03.01.00.10.10.10.1++5.1132.90±1.10 B
    G3.01.01.00.10.10.10.1+++++4.9524.90±0.25 D
    H3.02.01.00.10.10.10.1+++++5.1133.10±0.70 AB
    I3.03.01.00.10.10.10.1+++++5.1232.80±0.64 B
    注:字母不同表示差异显著(P<0.05);+表示沉淀程度:+为沉淀少,++为沉淀较多,+++++沉淀多。
    Note: Different letters indicate significant differences (P<0.05); + indicates the degree of precipitation, + means less precipitation, ++ means more precipitation, +++++means the most precipitation.
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    在2.2确定的杏鲍菇528深层发酵基础培养基上添加天冬氨酸、半胱氨酸、组氨酸、精氨酸、谷氨酸,考察这5种氨基酸对杏鲍菇528液体培养菌丝体合成麦角硫因的影响,结果见图3

    图  3  不同氨基酸对发酵物麦角硫因含量的影响
    Figure  3.  Effects of different amino acids on the content of ergothioneine in fermentation product

    试验发现,外源氨基酸对杏鲍菇528液体培养发酵物干重没有显著影响,但图3可知,天冬氨酸、半胱氨酸、组氨酸、精氨酸、谷氨酸这5种氨基酸均可不同程度提高杏鲍菇528液体培养发酵物麦角硫因含量。其中,组氨酸的效果最明显,其发酵物麦角硫因含量为10.86 mg·L−1,分别是对照组(CK)的3.73倍、天冬氨酸组的2.96倍、精氨酸组的2.47倍、半胱胺酸组的2.18倍和谷氨酸组的1.66倍。试验结果表明,组氨酸的添加有效促进了杏鲍菇528菌丝体发酵过程中麦角硫因的合成积累,杏鲍菇528菌丝体麦角硫因含量比对照组增加了2.73倍,推测组氨酸可能是杏鲍菇528生物合成麦角硫因的前体,因此,选择组氨酸为提高杏鲍菇528液体培养发酵物麦角硫因含量的外源氨基酸。不同真菌生物合成麦角硫因的前体不一样。MELVILLE D B [18]等采用同位素示踪法证明了粗糙链孢霉合成麦角硫因的前体为组氨酸、蛋氨酸和半胱氨酸;梅保良[19]研究表明蛋氨酸和半胱氨酸可提高糙皮侧耳CGMCC 6232深层发酵菌丝体麦角硫因含量。本研究发现组氨酸可促进杏鲍菇528菌丝体生物合成麦角硫因,但具体生物合成途径有待进一步研究。

    正交试验对杏鲍菇528发酵物麦角硫因含量的数据分析结果见表3表4。由表3极差分析可知,各因素的影响的主次顺序为:C>A>B,即组氨酸>玉米糁粉>蛋白胨。方差分析结果显示,只有组氨酸呈显著水平(P<0.05),其余各因素对发酵物麦角硫因含量的影响均不显著。在9个序列组合中,序列4组合的麦角硫因含量最高,达19.48 mg·L−1。因此,确定提高杏鲍菇528发酵物麦角硫因产率的最佳发酵培养基配方为:玉米糁粉2.0%、蛋白胨1.5%、组氨酸0.15%、麦麸细粉1.0%、KH2PO4 0.1%、MgSO4 0.1%、谷氨酸0.1%和维生素B6 0.1%。

    表  3  L9(34)正交试验结果
    Table  3.  The results of L9(34)orthogonal test
    序列号
    Serial
    number
    因素 Factor/%麦角硫因含量
    Ergothioneine
    content/
    (mg·L −1)
    玉米糁粉
    Corn grits
    A
    蛋白胨
    Peptone
    B
    组氨酸
    Histidine
    C
    空列
    Null column
    D
    11.51.50.10110.39
    21.52.00.15213.60
    31.52.50.20316.41
    42.01.50.15319.48
    52.02.00.20118.49
    62.02.50.10211.91
    72.51.50.20219.41
    82.52.00.1039.98
    92.52.50.15116.92
    ˉK113.4716.4310.7615.27
    ˉK216.6314.0316.6714.97
    ˉK315.4415.0818.1115.29
    R3.162.407.350.32
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    表  4  正交试验方差分析
    Table  4.  Variance analysis of orthogonal experiment
    变异来源
    Source of
    variation
    偏差平方和
    Deviation
    sum of
    squares
    自由度
    Degrees of
    freedom
    F
    F value
    显著性
    Significance
    A15.2921.90
    B8.6721.08
    C90.95211.30*
    空列
    Null column
    0.1920.02
    误差
    Error
    24.166
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    对正交试验结果筛选的配方进行验证试验,重复6次,检测出的麦角硫因平均含量为20.50±1.80 mg·L−1,验证试验结果与正交试验方案结果相符合,说明该配方能有效提高杏鲍菇发酵物中麦角硫因的含量。

    适宜杏鲍菇528菌丝生长的碳氮源分别为玉米糁粉和蛋白胨;组氨酸可有效促进杏鲍菇528菌丝体深层发酵过程中麦角硫因的合成积累,添加组氨酸组的菌丝体麦角硫因含量比对照组增加了2.73倍,推测组氨酸可能是杏鲍菇528生物合成麦角硫因的前体;杏鲍菇528深层发酵生物合成麦角硫因的最佳培养基配方为:玉米糁粉2.0%、蛋白胨1.5%、组氨酸0.15%、麦麸细粉1.0%、KH2PO4 0.1%、MgSO4 0.1%、谷氨酸0.1%和维生素B6 0.1%,在此条件下,杏鲍菇发酵物麦角硫因含量达20.50±1.80 mg·L−1

    本文试验表明,通过碳氮源、氨基酸等营养控制手段来调控杏鲍菇528深层发酵物中的EGT含量是可行且有效的,该方法操作简单,生产成本低,适宜规模化生产,可为开发富含EGT的功能食品研发提供安全原料,应用前景大。

    杏鲍菇528深层发酵不仅与培养液营养因子密切相关,还与培养温度、通气量、搅拌速度等发酵条件密切相关[20-22]。本研究仅基于营养调控手段来研究提高杏鲍菇528发酵物EGT含量的方法,后续仍需优化提高发酵物EGT含量的杏鲍菇528深层发酵的培养条件,进一步探究EGT生物合成途径和机理。

  • 图  1   不同碳、氮源培养基对杏鲍菇528菌丝生长的影响(第9 d,左为碳源,右为氮源)

    Figure  1.   Effects of different carbon and nitrogen source culture media on mycelial growth of Pleurotus eryngii 528 (At 9th day, left as carbon sources, right as nitrogen sources)

    图  2   不同碳、氮源培养基杏鲍菇528菌丝生长速率变化(A为碳源,B为氮源)

    Figure  2.   Variation of mycelial growth rate of Pleurotus eryngii 528 with different carbon and nitrogen sources (A is carbon sources, B is nitrogen sources)

    图  3   不同氨基酸对发酵物麦角硫因含量的影响

    Figure  3.   Effects of different amino acids on the content of ergothioneine in fermentation product

    表  1   正交试验设计因素及水平

    Table  1   Factors and levels of orthogonal experimental design

    水平
    Level
    因素 Factor%
    玉米糁粉
    Corngrits A
    蛋白胨
    Peptone B
    组氨酸
    Histidine C
    11.51.50.10
    22.02.00.15
    32.52.50.20
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    表  2   不同比例玉米糁粉和蛋白胨对杏鲍菇528深层发酵培养液的沉淀物情况、初始pH及发酵物干重影响

    Table  2   Effects of different proportions of corn grits and peptone on the sediment condition, initial pH in culture medium and dry weight of fermentation products of Pleurotus eryngii 528 submerged fermentation

    配方
    Formula
    玉米糁粉
    Corn
    grits/%
    蛋白胨
    Peptone/%
    麦麸细粉
    Wheat bran
    powder/%
    谷氨酸
    Glutamic
    acid/%
    维生素B6
    Vitamin
    B6/%
    KH2PO4/%MgSO4/%沉淀物情况
    Sediment
    condition
    pH发酵物干重
    Dry weight of fermentation/
    (g·L−1)
    A1.01.01.00.10.10.10.1+4.9624.60±0.17 D
    B1.02.01.00.10.10.10.1+5.1031.20 ±0.99 C
    C1.03.01.00.10.10.10.1+5.1131.50 ±1.19 C
    D2.01.01.00.10.10.10.1++4.9624.70±0.11 D
    E2.02.01.00.10.10.10.1++5.1033.30±0.81 A
    F2.03.01.00.10.10.10.1++5.1132.90±1.10 B
    G3.01.01.00.10.10.10.1+++++4.9524.90±0.25 D
    H3.02.01.00.10.10.10.1+++++5.1133.10±0.70 AB
    I3.03.01.00.10.10.10.1+++++5.1232.80±0.64 B
    注:字母不同表示差异显著(P<0.05);+表示沉淀程度:+为沉淀少,++为沉淀较多,+++++沉淀多。
    Note: Different letters indicate significant differences (P<0.05); + indicates the degree of precipitation, + means less precipitation, ++ means more precipitation, +++++means the most precipitation.
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    表  3   L9(34)正交试验结果

    Table  3   The results of L9(34)orthogonal test

    序列号
    Serial
    number
    因素 Factor/%麦角硫因含量
    Ergothioneine
    content/
    (mg·L −1)
    玉米糁粉
    Corn grits
    A
    蛋白胨
    Peptone
    B
    组氨酸
    Histidine
    C
    空列
    Null column
    D
    11.51.50.10110.39
    21.52.00.15213.60
    31.52.50.20316.41
    42.01.50.15319.48
    52.02.00.20118.49
    62.02.50.10211.91
    72.51.50.20219.41
    82.52.00.1039.98
    92.52.50.15116.92
    ˉK113.4716.4310.7615.27
    ˉK216.6314.0316.6714.97
    ˉK315.4415.0818.1115.29
    R3.162.407.350.32
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    表  4   正交试验方差分析

    Table  4   Variance analysis of orthogonal experiment

    变异来源
    Source of
    variation
    偏差平方和
    Deviation
    sum of
    squares
    自由度
    Degrees of
    freedom
    F
    F value
    显著性
    Significance
    A15.2921.90
    B8.6721.08
    C90.95211.30*
    空列
    Null column
    0.1920.02
    误差
    Error
    24.166
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出版历程
  • 收稿日期:  2020-05-19
  • 修回日期:  2021-06-22
  • 刊出日期:  2021-06-27

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