Aromatics in Floral Organs of Malus Brandywine during Different Flowering Stages
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摘要:目的 探索‘白兰地’海棠（M. 'Brandywine'）花香成分释放规律，为海棠芳香花育种和花香调控奠定基础。方法 以香气浓郁的‘白兰地’海棠花朵鲜样为试材，采用固相微萃取与气质联用技术（SPME-GC-MS）分析不同花期和不同花器官的香气成分差异。结果 （1）从大蕾期到盛花期分别检测出23、30、30、32种挥发性成分，其中叶醇、芳樟醇、己酸甲酯、乙酸叶醇酯、甲基庚烯酮和α-法呢烯为‘白兰地’海棠主要挥发性成分。花香总释放量呈现先上升后下降的趋势，在盛花期达到最高。香气成分种类构成主要以萜烯类（14.47 %～37.30 %）和醛酮类（21.64 %～38.78 %）为主，相对含量分别在盛花期和大蕾期达到最高，萜烯类相对含量在花朵开放过程中先上升后下降，而烷烃类和酯类呈现先下降后上升的趋势。对不同时期与挥发性成分之间进行了主成分分析，累计方差贡献率达 87.64 %，芳樟醇和壬醛分别在PC1正、负方向上贡献最大，分别与大蕾期和初花期呈高度正相关。（2）盛花期花朵花瓣、雌蕊（含花萼）和雄蕊中分别检测出28、32、25种挥发性成分。雌蕊总释放量最高，花瓣最低，对不同花器官与挥发性成分之间进行了主成分分析，累计方差贡献率达98.65 %。己酸甲酯、芳樟醇和α-法呢烯在PC1和PC2上的贡献较高，分别是花瓣、雄蕊和雌蕊的主要香气成分。3种花器官均位于不同象限，不同花器官的花香成分存在明显差异。结论 叶醇、芳樟醇、己酸甲酯、乙酸叶醇酯、甲基庚烯酮和α-法呢烯为‘白兰地’海棠主要挥发性成分，盛花期香气成分种类构成主要以萜烯类为主，不同花器官的花香成分存在明显差异，挥发性成分释放的主要花器官是雌蕊。Abstract:Objective Release of aromatics from floral organs of Malus Brandywine was studied for new variety breeding.Method Freshly picked floral organ samples of the strongly fragrant Malus Brandywine in different flowering stages were analyzed for aromatic components by SPME-GC-MS.Result (1) There were 23, 30, 30, and 32 volatiles detected in the floral organs from budding to full bloom stage. They included predominantly (Z)-3-hexen-1-ol, linalool, hexanoic acid-methyl ester, (Z)-3-hexen-1-ol, and 6-methyl-5-hepten-2-one, and α-farnesene. The total fragrance release was in an increasing trend initially to peak at the full bloom stage before decline toward the end. The released aromatics consisted largely of terpenes (14.47-37.30%) and aldehydes and ketones (21.64-38.78 %) with the highest relative contents of terpenes at full bloom, while aldehydes and ketones when large buds appeared. The terpenoids increased at opening of the flowers followed by a decline, while alkanes and esters decreased at first but rose later. A principal component analysis on the volatiles at different flowering stages showed a cumulative variance contribution of 87.64%. On PC1, linalool contributed the most and significantly correlated positively in the large bud stage, whereas nonanal the most and significantly correlated negatively in the initial flowering stage. (2) At full blooming, 28, 32, and 25 volatiles were detected in the petals, pistil (including calyx), and stamens, respectively. The greatest fragrance release in quantity came from the pistil and the least from the petals. A principal component analysis on the compounds in different organs yielded a cumulative variance contribution of 98.65 %. On PC1 and PC2, hexanoic acid-methyl ester, linalool, and α-farnesene contributed more and were the major aromatics in the petals, stamens, and pistils, respectively. The 3 floral organs were in different quadrants and significantly differed in the composition of the aromatics they released.Conclusion (Z)-3-hexen-1-ol, linalool, hexanoic acid-methyl ester, (Z)-3-hexen-1-ol, 6-methyl-5-hepten-2-one, and α-Farnesene were the major volatiles in floral organs of Malus Brandywine. Terpenes were the dominant aromatics released during the full bloom stage. Significantly differences in the aromatic composition of the fragrance discharged from different floral organs. The releases of these volatiles took place mainly in the pistil.
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Keywords:
- Malus /
- flowering period /
- floral organs /
- volatile components /
- floral fragrance release pattern
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0. 引言
【研究意义】金线莲（Anoectochilus roxburghii），又名金草、金蚕，天门冬目兰科，单子叶植物，主要分布于我国东南部福建、台湾、浙江、江西等地[1]。其味道甘甜、药性平和，具有降火、祛湿气、祛毒、镇痛止咳、降低血压血糖、抑制肿瘤等功效，具有极高的药用价值，在民间被誉为“药王” “鸟人参”等[2-3]。金线莲对外界环境要求极高，多生长在环境阴凉、土质良好、水气充足、有良好团粒结构且有充足肥力的土壤[4]。近年来由于人类过度开垦、灌溉、施肥等活动，导致土壤板结、水土流失、土壤质量不断恶化，极大地限制了金线莲产量和品质的提升[5]，因此急需寻找一种合适的种植方式。有研究发现通过调控土壤紧实度能改变土壤物理机械结构，进而影响作物产量[6]。土壤紧实度是指土壤抵抗外力的压实和破碎的能力，可通过土壤容重、孔隙度和机械阻力等指标来评价，其中土壤容重是反映土壤紧实度最直接、最常用的指标[7]。土壤容重和土壤紧实度直接相关，土壤容重提高，土壤紧实度也增大[7]。土壤紧实度的大小影响作物根系的穿透能力和矿质元素的转移，进而影响植物生长进程，因此栽培金线莲不仅需要适宜的水肥，还必须有适宜的土壤紧实度[8]。【前人研究进展】多项研究表明，土壤过度疏松或紧实，会影响作物生长，造成作物减产，品质下降。土壤过于松弛，土壤保水持肥能力下降，更容易加快土壤水分和养分的流失。吴晓莲等[9]研究发现，土壤容重过低会影响甘蔗苗期生长，最终导致减产。邹俊等[10]对活血丹设置不同容重处理后发现，土壤容重0.8 g·cm−3处理，活血丹各项生长指标和生物量，以及光合色素、可溶性糖、游离氨基酸含量均显著低于土壤容重1.0 g·cm−3处理。土壤过于紧实，通气性变差，影响根系生长发育及生理代谢。刘永晨等[11]研究发现，土壤紧实胁迫处理抑制甘薯生长，降低块根中干物质分配率和块根产量。Tracy等[12]研究发现，土壤过于紧实，抑制番茄根系生长，降低根系活性，导致番茄产量和品质下降。【本研究切入点】目前，对金线莲生长的研究绝大多数集中在栽培基质材料与配方，而缺乏从栽培基质物理性质-土壤紧实度角度出发，对金线莲生长和品质影响的研究。【拟解决的关键问题】本试验通过改变土壤和珍珠岩用量，设置不同容重处理，研究不同土壤紧实度对金线莲生长和品质的影响，筛选出金线莲生长所需的适宜紧实度，以期为金线莲高产栽培、产量品质提升提供有力的理论支撑。
1. 材料与方法
1.1 试验材料
供试植物为小叶品种金线莲组培苗，取自福建农林大学自然生物资源保育利用福建省高校工程研究中心。
供试土壤为红壤，0～20 cm土壤pH值5.82、有机质25.40 g·kg−1，碱解氮63.54 mg·kg−1，有效磷35.41 mg·kg−1，速效钾109.28 mg·kg−1。
供试珍珠岩购自市场，粒径大小3～6 mm，容重为100～150 kg·cm−3。
试验于2019年1月13日～6月13日在福建农林大学田间实验室（阳光房）内进行，试验地地理坐标为（25°15′～26°39′N，118°08′～120°31′E），属典型亚热带海洋性季风气候区，年平均气温约20.1 ℃，气温适宜，温暖湿润，光照充沛，适宜金线莲生长。
1.2 试验设计
试验采用盆栽试验，花盆为口径20 cm，底径16 cm，高15 cm的PVC盆，花盆底部放置有塑料网，防止土壤冲刷。试验设置5个土壤容重处理，分别为0.7（T1）、0.8（T2）、0.9（T3）、1.0（T4）、1.1 g·cm−3（T5），每个处理设置5个重复。各处理所需土壤与珍珠岩见表1，选用m（N）∶m（P2O5）∶m（K2O）=15∶15∶15的复合肥，每盆施用量为1.2 g，折合大田施用量为444 kg·hm−2。将土壤、肥料与珍珠岩混合均匀后装入花盆，并压至相应的刻度（距盆顶3 cm），缓慢浇水，放置2 d后，选取长势良好、大小一致的金线莲幼苗，用5 %的多菌灵溶液浸泡10 min进行消毒杀菌，晾干后均匀移栽至PVC花盆中，每盆移栽10株，试验期间水肥、光照、病虫害管理按常规进行。
表 1 各处理土壤和珍珠岩质量Table 1. The quality of soil and perlite for each treatment处理
Treatment红壤
Red soil/g珍珠岩
Perlite/g容重
Bulk density/（g·cm−3）T1 1200 120 0.7 T2 1400 80 0.8 T3 1600 40 0.9 T4 1800 20 1.0 T5 2000 0 1.1 1.3 试验方法
1.3.1 样品采集与处理
金线莲栽培管理150 d后，采收所有地上部金线莲样品，将采收金线莲样品分为两部分，一部分植株样品位于4 ℃冰箱进行冷藏处理，用于植物生长、生理指标测定，另一部分植株样品置于105 ℃鼓风干燥箱杀青2 h，65 ℃烘干至恒重，粉碎至粉末状，过0.149 mm筛，装袋编号，用于植物品质指标测定。
1.3.2 生长指标测定
金线莲采收时对植物生长指标进行测定，每个处理选取5株金线莲，用卷尺测定植株株高、叶长、叶宽和根长（株高以地面到植株最高处为准；叶长、叶宽测定选取金线莲中最大的叶片，以长宽最大处为准；根长测定选取金线莲主根系，以地面到根最底端为准），用电子游标卡尺测定植株地径（距离地面1 cm处），用电子天平称量植株鲜重，计算折干率，折干率(%)＝(植株干重/植株鲜重)×100%。
1.3.3 生理指标测定
选用整个植株鲜样进行金线莲生理指标测定，叶绿素a、叶绿素b、类胡萝卜素含量均采用乙醇浸提-分光光度法测定，吸收光波长分别为663、645、470 nm[13]。
1.3.4 品质指标测定
全碳、全氮含量采用全自动微量碳氮元素分析仪（德国ELEMENTAR）测定，全磷含量采用钒钼黄比色法测定，全钾含量采用火焰光度法测定。多糖含量采用苯酚-硫酸法测定，游离氨基酸含量采用茚三酮柱后衍生法测定，Vc含量采用2，6-二氯酚靛酚滴定法测定，总酚含量采用酒石酸亚铁比色法测定，黄酮含量以芦丁为标准品对照，分光光度法测定[13]。
1.4 数据处理与分析
采用Microsoft Excel 2016整理数据与绘图，用SPSS 20.0软件对试验数据进行单因素方差分析和SNK法进行显著性检验（P＜0.05）。
2. 结果与分析
2.1 不同土壤紧实度对金线莲生长的影响
由表2可以看出，土壤紧实度对于金线莲的生长影响显著。金线莲株高和地径都随土壤容重的增加呈先增加后减少的趋势，株高在土壤容重0.9 g·cm−3达到最大值12.40 cm，分别是其他处理的1.25、1.10、1.11、1.15倍，与其他处理均达显著性差异（P＜0.05）；地径在土壤容重0.9 g·cm−3达到最大值2.75 mm，分别是其他处理的1.12、1.01、1.12、1.10倍；表明过高或过低的容重都不利于金线莲株高和地径的增长。金线莲叶片数、叶长、叶宽也受土壤紧实度的影响，叶片数以土壤容重0.9 g·cm−3处理为最大，以土壤容重0.7 g·cm−3处理为最小，两者间相差0.49片；叶长除容重0.7 g·cm−3处理外，其余处理间无显著性差异，都显著大于容重0.7 g·cm−3的处理；各处理叶宽位于1.68～1.77 cm，处理间无显著差异；表明过高过低的容重都不利于金线莲叶片的生长。金线莲根长在土壤容重0.9 g·cm−3达到最大值4.53 cm，分别是其他处理的1.50、1.42、1.06、1.01倍，与土壤容重0.7、0.8 g·cm−3处理间差异较大，表明土壤容重过低会显著影响根系的生长发育。
表 2 不同土壤紧实度对金线莲生长指标的影响Table 2. The effect of different soil compaction on the growth index of Anoectochilus处理
Treatment株高
Plant height/cm地径
Ground path/mm叶数
Number of leaves叶长
Leaf length/cm叶宽
Leaf width/cm根长
Root length/cmT1 9.92±0.32 c 2.46±0.22 b 3.87±0.33 b 2.03±0.19 b 1.74±0.14 a 3.02±0.31 c T2 11.28±0.44 b 2.71±0.20 a 4.34±0.22 a 2.51±0.08 a 1.75±0.07 a 3.20±0.27 c T3 12.40±0.73 a 2.75±0.15 a 4.36±0.37 a 2.63±0.13 a 1.77±0.07 a 4.53±0.34 a T4 11.14±0.51 b 2.45±0.26 b 4.00±0.35 b 2.41±0.13 a 1.71±0.16 a 4.26±0.28 b T5 10.80±0.65 bc 2.50±0.23 b 4.12±0.18 ab 2.41±0.14 a 1.68±0.10 a 4.49±0.45 a 注：表中标注不同小写字母表示在（P＜0.05）水平差异显著，下同。
Note: Different lowercase letters in the table indicate significant differences at（P＜0.05）, the same below.由图1可知，土壤紧实度对金线莲产量有着显著的影响。金线莲鲜重和折干率均随土壤容重的增加呈现先增加后减少的趋势。鲜重在土壤容重0.9 g·cm−3达到最大值1.35 g，相比其他处理显著增加68.51%、18.04%、16.61%、24.13%（P＜0.05），在土壤容重0.7 g·cm−3达到最小值0.80 g，与其他各处理间均达显著性差异。折干率在土壤容重0.8 g·cm−3达到最大值14.18%，相比其他处理显著增加47.71%、26.72%、57.73%、51.17%，在土壤容重1.0 g·cm−3达到最小值8.99%，而土壤容重0.7、1.0、1.1 g·cm−3处理下折干率之间无显著差异。表明过高或过低的土壤紧实度均不利于金线莲产量提升和体内干物质的合成与积累。
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图 1 不同土壤紧实度对金线莲产量指标的影响Figure 1. The effect of different soil compaction on the yield index of Anoectochilus2.2 不同土壤紧实度对金线莲生理的影响
由表3可知，土壤紧实度对金线莲叶绿素和类胡萝卜素合成有着显著的影响。金线莲叶片中叶绿素及类胡萝卜素随土壤容重总体上均呈现先增加后减少的趋势，叶绿素a含量在土壤容重0.9 g·cm−3达到最大值1.99 mg·g−1，分别是其他处理的1.08、1.02、1.07、1.09倍，土壤容重0.8、0.9 g·cm−3处理间无明显差异。各处理叶绿素b含量平均为0.45 mg·g−1，各处理间差异不显著。各处理类胡萝卜素含量平均为0.56 mg·g−1，在土壤容重0.9 g·cm−3达到最大值0.63 mg·g−1，分别是其他处理的1.24、1.15、1.07、1.19倍，在土壤容重0.7 g·cm−3达到最小值0.51 mg·g−1，与最大值间存在显著性差异（P＜0.05），但与其他处理间无显著差异。表明适宜的土壤紧实度会促进金线莲叶绿素和类胡萝卜素的合成，影响植物光合作用。
表 3 不同土壤紧实度对金线莲叶绿素与类胡萝卜素的影响Table 3. The effect of different soil compaction on physiological index of Anoectochilus处理
Treatment叶绿素a
Chlorophyll a/
（mg·g−1）叶绿素b
Chlorophyll b/
（mg·g−1）类胡萝卜素
Carotenoids/
（mg·g−1）T1 1.84±0.12 b 0.43±0.05 a 0.51±0.09 b T2 1.96±0.15 a 0.43±0.02 a 0.55±0.04 b T3 1.99±0.08 a 0.46±0.06 a 0.63±0.05 a T4 1.86±0.17 b 0.47±0.03 a 0.59±0.03 ab T5 1.83±0.13 b 0.46±0.07 a 0.53±0.08 b 2.3 不同土壤紧实度对金线莲养分、品质的影响
各处理间金线莲植株碳、氮、磷、钾养分含量变化趋势相同（见表4），均随土壤容重的增加呈先增加后减少的趋势。金线莲中碳素的含量最多，平均达到348.59 mg·g−1，其次是氮元素，磷元素含量最少，平均为1.15 mg·g−1。碳素含量在土壤容重1.0 g·cm−3达到最大值357.92 mg·g−1，相比其他处理分别增加了18.34、16.37、2.59、9.34 mg·g−1，在土壤容重0.7 g·cm−3达到最小值339.58 mg·g−1，高土壤容重（大于0.9 g·cm−3）处理的金线莲碳素积累量显著大于低土壤容重。氮素含量位于25.79～28.71 mg·g−1，除土壤容重1.1 g·cm−3处理金线莲氮素积累量最低外，其余处理间无显著性差异。磷素含量在土壤容重0.9 g·cm−3达到最大值1.27 mg·g−1，分别是其他处理的1.23、1.10、1.09、1.13倍，与其他处理均达显著差异（P＜0.05）。钾素含量也以土壤容重0.9 g·cm−3处理为最大，以土壤容重1.1 g·cm−3处理为最小，两处理间钾素含量差距达到1.80 mg·g−1，达到显著差异。表明适宜的土壤容重可以促进金线莲植株养分积累，对碳、磷、钾素促进作用较为明显，而对氮素促进作用不明显。
表 4 不同土壤紧实度对金线莲养分含量的影响Table 4. The effect of different soil compaction on nutrient content of Anoectochilus处理
Treatment养分含量 Nutrient content/（mg·g−1） C N P K T1 339.58±10.47 b 28.15±1.27 a 1.03±0.04 c 19.27±1.05 b T2 341.55±12.54 b 28.35±1.31 a 1.15±0.08 b 20.62±1.30 a T3 355.33±9.92 a 28.71±0.52 a 1.27±0.07 a 20.77±1.52 a T4 357.92±17.43 a 28.21±1.39 a 1.16±0.12 b 19.13±0.99 b T5 348.58±8.04 a 25.79±0.93 b 1.12±0.09 b 18.97±1.41 b 由表5可知，土壤紧实度显著影响金线莲的品质。多糖含量在土壤容重0.9 g·cm−3达到最大值143.07 mg·g−1，相比其他处理显著增加了30.65%、70.81%、24.83%、29.00%（P＜0.05），而在土壤容重0.8 g·cm−3时含量最低。氨基酸含量位于1.44～2.57 mg·g−1，在土壤容重0.9 g·cm−3达到最大值，相比其他处理显著增加了25.37%、29.80%、44.38%、78.47%，在高容重下氨基酸含量下降明显。黄酮含量位于8.65～13.98 mg·g−1，以土壤容重0.9 g·cm−3处理为最大，以土壤容重0.8 g·cm−3处理为最小。总酚和Vc含量均随土壤容重的增加呈先增加后减少的趋势，总酚在土壤容重0.9 g·cm−3达到最大值34.37 mg·g−1，相比其他处理显著增加了27.39%、24.80%、14.68%、26.92%，除土壤容重0.9 g·cm−3处理外，其余处理间无显著差异。Vc含量位于21.77～27.57 mg·g−1，以土壤容重0.9 g·cm−3处理为最大，以土壤容重1.1 g·cm−3处理为最小，两处理间Vc含量差距为5.80 mg·g−1，达到显著性差异。表明中等土壤紧实度的土壤最适于金线莲多糖、氨基酸、Vc等的合成和积累，促进品质提升。
表 5 不同土壤紧实度对金线莲品质指标的影响Table 5. The effect of different soil compaction on the quality index of Anoectochilus处理
Treatment多糖
Polysaccharide/（mg·g−1）氨基酸
Amino acid/（mg·g−1）总酚
Total phenols/（mg·g−1）黄酮
Flavonoids/（mg·g−1）Vc
Vitamin C/（mg·g−1）T1 109.51±3.55 b 2.05±0.13 b 26.98±1.64 b 12.01±0.84 ab 23.36±1.23 b T2 83.76±1.29 c 1.98±0.15 b 27.54±1.47 b 8.65±0.52 c 27.28±2.04 a T3 143.07±4.97 a 2.57±0.21 a 34.37±2.06 a 13.98±1.11 a 27.57±1.84 a T4 114.61±4.25 b 1.78±0.08 bc 29.97±2.34 b 13.74±0.95 a 24.67±1.81 b T5 110.91±3.88 b 1.44±0.17 c 27.08±1.82 b 10.66±0.69 b 21.77±2.45 c 3. 讨论
3.1 不同土壤紧实度对金线莲生长的影响
土壤紧实度作为反映土壤松紧状况的指标，通过影响土壤水分、养分、通气状况、热量以及微生物，进而影响植物的生长[14]。本试验结果表明，通过珍珠岩调控，土壤物理性质发生变化，金线莲株高、地径、叶片数、根长、鲜重等随着土壤容重增加，都呈先增加后减少的趋势。在红壤与珍珠岩配比为40∶1，即土壤容重0.9 g·cm−3时达到最大。表明适宜的土壤容重会促进金线莲的生长，提高作物产量，而过高或过低的土壤容重会影响金线莲生长发育进程。这些与前人的研究结果相似。
刘宪辉[15]研究发现珍珠岩施入蔬菜大棚土壤中能有效改良土壤，增加作物产量。这是因为一方面珍珠岩具有较高的吸附容量和离子交换能力，可有效起到保水保肥、抗渗漏、提高养分生物有效性作用，另一方面它自身含有一定量的钾、磷、钛、锰、硅、铁、钙等植物不可缺少的中微量元素，为农作物提高了良好的生长条件。徐海等[16]研究发现，玉米地上部生长受土壤容重影响显著，土壤过松或过紧均不利于作物的生长。刘兆娜等[17]对花生设置不同容重处理，发现适宜土壤容重在整个生育期都有利于花生各器官干物质积累，有利于增加结果数和荚果饱满度，提高荚果和籽仁产量。土壤紧实度过高，土壤孔隙度降低，土壤板结程度增加，土壤通气透水能力变差，土壤内空气缺乏，进而抑制微生物活动和养分转化进程，根系对水和养分的吸收能力降低；而土壤紧实度过低，土壤孔隙度大，土壤内部空气浓度变高，土壤热量扩散速度加快，植物根系与土壤接触面积变小，土壤对植物根系的支持能力减弱，土壤保水持肥能力下降，养分易随降水或灌溉水流失。因此，只有适宜的土壤紧密度，才能保证土壤水分、养分供应充足、通气状况良好，有助于金线莲的正常生长[18]。
3.2 不同土壤紧实度对金线莲生理的影响
叶绿素和类胡萝卜素作为表征植物光合作用能力的指标，其含量的高低会影响植物光合作用，进而影响植物物质的合成与转运[19]。本试验结果表明，在红壤与珍珠岩配比为40∶1，即土壤容重0.9 g·cm−3时金线莲叶绿素a和类胡萝卜素含量最高，叶绿素b含量无显著差异，表明土壤紧实度会影响金线莲的生理，影响叶绿素和类胡萝卜素的合成，过高或者过低的土壤紧实度均不利于金线莲叶绿素和类胡萝卜素的合成与积累。尚庆文等[20]研究表明，土壤紧实度增加，生姜叶片活性降低，叶绿素含量下降，光合速率下降，光合作用减弱。田树飞等[21]研究表明适宜的土壤紧实度有利于花生叶片光合色素的合成与积累。这些都与本研究结果一致。适宜的土壤紧实度会提高植株中叶绿素和类胡萝卜素含量，促进光合作用。这可能与土壤环境改善、水肥气热环境适宜、植株生长发育良好、植株各项生理活性提高有关[22]。
3.3 不同土壤紧实度对金线莲养分和品质的影响
C、N、P、K含量是间接反映植物生长及物质合成的指标，通过影响植物体内物质转化进程，进而影响物质的合成与积累[23]。多糖、总酚、氨基酸、黄酮、Vc等物质，是反映金线莲营养及药用价值的重要指标，其含量高低能够反映金线莲活性物质含量的高低[24]。
本试验结果表明，金线莲N、P、K含量均在0.9 g·cm−3处理达到最大值，C含量在1.0 g·cm−3处理达到最大值，在0.9 g·cm−3处理与1.0 g·cm−3处理间两者仅相差2.59 mg·g−1，可以得知金线莲生长在红壤与珍珠岩配比为40∶1，即容重为0.9 g·cm−3的土壤中，其养分含量最高。金线莲多糖、氨基酸、总酚、黄酮、Vc含量随土壤容重的增加总体呈先增加后减少的趋势，也均在0.9 g·cm−3处理达到最大值，多糖、氨基酸、总酚含量与其他处理均达显著差异，表明过高过低的土壤紧实度均不利于金线莲品质的提升。张亚如等[25]研究发现，土壤过高或者过低的紧实度都会抑制花生结荚期氮、磷、钾等元素的吸收，影响植株品质。张向东等[26]对桔梗设置不同紧实度处理，发现土壤紧实胁迫下，桔梗根系活力下降，叶绿素含量降低，可溶性蛋白含量减少，植株品质降低。综合分析原因，过高过低的土壤紧实度，会导致金线莲根系对于土壤中营养元素的供给和吸收能力降低，从而使体内物质循环和转化途径效率降低[27]。过高的土壤紧实度，其土壤结构紧实黏重，土层氧气浓度低，土壤胶体对养分和水分的吸附作用强烈，土壤酶活性低，微生物活动弱，根系难以下扎，从而根系难以吸收水分和养分；过低的土壤紧实度，土壤结构松碎易散，土壤保水保肥能力低，土壤水分易通过土面蒸腾而损失，土壤养分易流失，土壤养分和水分供应不足，进而导致金线莲养分积累量降低、品质下降等[28]。
4. 结论
适宜的土壤紧实度会促进金线莲生长和产量提升，对金线莲根、茎、叶生长及物质合成与积累有显著影响，在红壤与珍珠岩配比达到40∶1，土壤容重为0.9 g·cm−3时效果最佳，而土壤紧实度对金线莲叶长和叶宽的增长没有显著影响。
土壤紧实度的高低会影响金线莲的生理，适宜的土壤紧实度促进金线莲叶片中叶绿素a和类胡萝卜素的合成，但对叶绿素b含量没有显著影响。
适宜的土壤紧实度增加金线莲体内C、N、P、K养分含量，提高植株中多糖、氨基酸、总酚、黄酮和Vc含量，在红壤与珍珠岩配比达到40∶1，土壤容重为0.9 g·cm−3时效果最佳，土壤容重过高或者过低均不利于金线莲养分合成积累和品质提升。
综上，土壤紧实度对于金线莲的生长和品质有显著影响。在红壤与珍珠岩配比达到40∶1，即土壤容重为0.9 g·cm−3时金线莲各项生长、品质指标优于其他处理，总体效果最佳，对金线莲科学种植具有一定的指导意义。
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图 1 ‘白兰地’不同花期挥发性成分的峰面积图
Figure 1. Peak areas of Malus Brandywine volatiles at different flowering stages
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图 2 不同花期挥发性成分种类的相对含量比较
Figure 2. Relative contents of volatiles in floral organs at different flowering stages
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图 3 ‘白兰地’不同花器官挥发性成分的峰面积图
Figure 3. Peak areas of Malus Brandywine volatiles in floral organs
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图 5 挥发性成分的主成分分析
①A：花期；B：花器官。②图中数字1：己酸甲酯；2：甲基庚烯酮；3：乙酸叶醇酯；4：芳樟醇；5：壬醛；6：(E)-4,8-二甲基-1,3,7-壬三烯；7：正十二烷；8：2-十三烷酮；9：α-法呢烯；10：4-辛烯酸甲酯；11：辛酸甲酯；12：苯乙醇；13：4-亚甲基异佛尔酮。
Figure 5. Principal component analysis based on volatiles
①A: flowering stages; B: floral organs. ②1: Hexanoic acid-methyl ester; 2: 6-methyl-5-hepten-2-one; 3: (Z)-3-hexen-1-ol, acetate,; 4: linalool; 5: nonanal; 6: (E)-4,8-dimethylnona-1,3,7-triene; 7: dodecane; 8: 2-tridecanone; 9: α-farnesene; 10: 4-octenoic acid, methyl ester; 11: octanoic acid, methyl ester; 12: phenylethyl alcohol; 13: 4-methyleneisophorone.
表 1 ‘白兰地’海棠不同花期的挥发性成分鉴定
Table 1 Identification of volatiles in different flowering stages of Malus Brandywine
化合物
Compound保留时间
Retention time/s相对含量 Relative content/% 大蕾期
Bud初花期
Initial flowering盛花期
Flowering末花期
End flowering萜烯类 Terpenes 芳樟醇 Linalool 9.92 — 25.19±5.27 a 14.75±0.63 b 13.05±1.99 b 壬醛 Nonanal 9.96 18.48±0.25 — — — (E)-4,8-二甲基-1,3,7-壬三烯 (E)-4,8-Dimethylnona-1,3,7-triene 10.17 — — 9.74±2.54 a 5.71±0.59 b β-紫罗兰酮 3-Buten-2-one,4-(2,6,6-trimethyl-1-cyclohexen-1-yl)- 15.54 — — 0.71±0.25 b 2.42±0.63 a 香叶基丙酮 5,9-Undecadien-2-one, 6,10-dimethyl- 17.68 — 1.12±0.09 b 4.70±0.33 a 4.83±0.33 a 二氢-Β-紫罗兰酮 2-Butanone,4-(2,6,6-trimethyl-1-cyclohexen-1-yl)- 17.92 — 0.05±0.01 b 0.36±0.16 b 2.46±0.85 a α-法呢烯 à-Farnesene 19.55 14.47±4.67 a 6.94±2.44 b 7.04±3.26 b 7.28±1.39 b 酯类 Esters 己酸甲酯 Hexanoic acid, methyl ester 6.57 1.26±1.51 c 11.67±1.24 a 7.12±2.85 b 7.31±0.82 b 乙酸叶醇酯 3-Hexen-1-ol, acetate, (Z)- 8.01 9.37±2.77 a 3.93±0.74 b 0.82±0.04 c 0.70±0.61 c 5-庚烯酸甲酯 5-Heptenoic acid, methyl ester 8.29 — — — 0.01±0.01 2-乙基己酸甲酯 Hexanoic acid, 2-ethyl-, methyl ester 8.62 — — 0.42±0.20 a 0.34±0.12 b 丙酸芳樟酯 1,6-Octadien-3-ol, 3,7-dimethyl-, propanoate 8.82 1.30±0.12 — — — 4-辛烯酸甲酯 4-Octenoic acid, methyl ester 10.19 — 2.54±0.29 — — 辛酸甲酯 Octanoic acid, methyl ester 10.37 0.32±0.12 b 2.98±0.46 a 2.00±0.73 a 2.49±0.35 a 异戊酸香叶酯 Geranyl isovalerate 10.85 0.34±0.14 a 0.06±0.01 b — — 顺-3-己烯基丁酸酯 Butanoic acid, 3-hexenyl ester, (Z)- 11.72 — 1.17±0.31 a 0.38±0.03 b 0.75±0.24 b (10E)-10-十七烯-8-炔酸甲酯 10-Heptadecen-8-ynoic acid, methyl ester, (E)- 12.59 — — — 0.20±0.15 顺式-3-己烯醇 2-甲基丁酸酯 cis-3-Hexenyl-à-methylbutyrate 12.86 2.36±0.47 a 1.66±0.16 b — — 3-甲基-2-丁烯酸-2-苯乙酯 2-Butenoic acid, 3-methyl-, 2-phenylethyl ester 15.04 — — — 1.14±0.44 (Z,Z)-3-己烯基2-甲基-2-丁烯酸酯 (Z)-(Z)-Hex-3-en-1-yl 2-methylbut-2-enoate 15.09 — 0.87±0.14 — — 顺式-3-己烯醇苯甲酸酯 3-Hexen-1-ol, benzoate, (Z)- 21.83 — — 0.08±0.07 — 肉豆蔻酸甲酯 Methyl tetradecanoate 25.90 — — 0.11±0.04 a 0.16±0.06 a 醇类 Alcohols 叶醇 3-Hexen-1-ol, (Z)- 5.82 9.00±0.50 a 7.71±1.25 ab 5.57±1.18 ab 4.40±0.45 b 3-甲基-4-戊醇 4-Penten-1-ol, 3-methyl- 6.22 — 0.12±0.04 a 0.04±0.01 ab 0.11±0.05 a 苯乙醇 Phenylethyl Alcohol 10.51 — — 2.35±0.73 b 4.82±0.61 4-甲氧基苯乙醇 2-(4-Methoxyphenyl)ethanol 17.07 — — 0.25±0.10 a 0.19±0.06 a 醛酮类 Aldehydes and ketones 4-羟基查耳酮 4-Hydroxychalcone 5.20 1.35±0.23 a 0.44±0.09 ab 0.56±0.19 ab 1.18±1.00 a 甲基庚烯酮 5-Hepten-2-one, 6-methyl- 7.67 14.98±1.29 a 10.39±2.10 b 6.49±0.49 c 7.56±0.12 c 4-氧代异佛尔酮 2,6,6-Trimethyl-2-cyclohexene-1,4-dione 10.95 — 1.76±0.16 a 2.01±1.10 a — 2,2,6-三甲基-1,4-环己二酮 1,4-Cyclohexanedione,2,2,6-trimethyl- 11.51 — 0.57±0.22 ab 0.90±0.14 a — 癸醛 Decanal 12.25 2.93±0.58 a 1.83±0.29 b — 1.06±0.07 c 4-亚甲基异佛尔酮 4-Methyleneisophorone 12.78 1.04±0.18 d 3.28±0.95 c 6.51±0.83 b 8.56±0.30 a 2-十三烷酮 2-Tridecanone 19.24 — 2.15±0.89 bc 11.44±5.66 a 7.00±2.12 ab 2-十五烷酮 2-Pentadecanone 25.34 — 1.22±0.61 bc 5.67±2.24 a 3.17±1.10 a 烷烃类 Alkanes 癸烷 Decane 7.87 0.14±0.01 a 0.11±0.00 a — — 正十一烷 Undecane 9.78 2.11±0.41 a 1.25±0.32 b — — 3-甲基十一烷 Undecane, 3-methyl- 11.33 1.97±0.24 — — — 正十二烷 Dodecane 11.99 10.46±1.50 a 6.60±0.64 2.31±0.39 c 3.76±0.53 c 正十三烷 Tridecane 14.35 1.11±0.30 a 0.87±0.14 a 1.18±0.03 a 1.20±0.12 a 7-甲基十七烷 Heptadecane, 7-methyl- 15.20 0.54±0.03 a 0.40±0.04 a — — 9-甲基十九烷 Nonadecane, 9-methyl- 15.30 — 0.15±0.05 — — 10-甲基二十烷 Eicosane, 10-methyl- 15.49 0.35±0.06 — — — 3-甲基十三烷 Tridecane, 3-methyl- 16.05 2.19±0.31 a 1.29±0.24 b 0.52±0.03 c — 3-亚甲基十三烷 Tridecane, 3-methylene- 16.43 1.15±0.05 — — — 正十四烷 Tetradecane 16.76 2.79±0.44 b 1.76±0.20 c 2.51±0.28 b 4.14±0.35 a 正十六烷 Hexadecane 22.40 — — — 0.36±0.03 正二十一烷 Heneicosane 28.45 — — — 0.82±0.49 酚类 Phenols 对甲苯甲醚 Benzene, 1-methoxy-4-methyl- 8.43 — — 3.36±1.78 a 1.69±0.68 b 甲基苯乙基醚 Benzene, (2-methoxyethyl)- 9.61 — — — 1.12±0.07 2,6-二叔丁基对甲酚 Butylated Hydroxytoluene 19.82 — — 0.09±0.03 — “—”表示该数据未被检索到或者未被检测出；同一行中不同的小写字母表示在 0.05 水平上差异显著 。表2同。
"—" indicates that the data have not been reported by other studies or the compound has not been detected. Different lowercases in the same line indicate the significant difference at 0.05 level．The same as table 2.
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表 2 ‘白兰地’海棠不同花器官的挥发性成分鉴定
Table 2 Identification of Malus Brandywine volatiles in floral organs
化合物
Compound保留时间
Retention time/s相对含量 Relative content/% 花瓣
Petals雌蕊
Pistil雄蕊
Stamens萜烯类 Terpenes 芳樟醇 Linalool 9.92 10.01±2.00 b — 23.59±4.01 a (E)-4,8-二甲基-1,3,7-壬三烯 (E)-4,8-Dimethylnona-1,3,7-triene 10.15 — 6.03±0.60 — β-紫罗兰酮 3-Buten-2-one, 4-(2,6,6-trimethyl-1-cyclohexen-1-yl)- 15.53 — 1.81±0.34 — 香叶基丙酮 5,9-Undecadien-2-one, 6,10-dimethyl- 17.66 2.29±0.59 b 2.63±0.01 ab 3.85±0.72 a 二氢-Β-紫罗兰酮 2-Butanone, 4-(2,6,6-trimethyl-1-cyclohexen-1-yl)- 17.90 — 3.05±0.48 a 0.91±0.28 b α-法呢烯 à-Farnesene 19.55 3.33±1.14 b 34.12±2.90 a 3.74±2.57 b 酯类 Esters 己酸甲酯 Hexanoic acid, methyl ester 6.54 35.41±2.72 a 2.87±0.67 b — 乙酸叶醇酯 3-Hexen-1-ol, acetate, (Z)- 7.98 0.59±0.18 b 20.47±0.39 a — 5-庚烯酸甲酯 5-Heptenoic acid, methyl ester 8.25 — 0.03±0.01 — 庚酸甲酯 Heptanoic acid, methyl ester 8.29 1.11±0.38 a — 0.40±0.37 b 2-乙基己酸甲酯 Hexanoic acid, 2-ethyl-, methyl ester 8.62 0.17±0.01 — — 4-辛烯酸甲酯 4-Octenoic acid, methyl ester 10.17 5.91±1.06 b — 12.33±1.70 a 辛酸甲酯 Octanoic acid, methyl ester 10.32 13.60±5.33 a 2.60±0.12 b 4.89±0.06 aab 3-丁酸己烯酯 Butanoic acid, 3-hexenyl ester, (E)- 10.71 — 0.91±0.09 — 顺-3-己烯基丁酸酯 Butanoic acid, 3-hexenyl ester, (Z)- 11.68 — 4.99±0.55 — 2-甲基丁酸己酯 Butanoic acid, 2-methyl-, hexyl ester 12.84 — 3.00±0.49 a 0.53±0.03 b 己酸异戊酯 Isopentyl hexanoate 13.16 — — 0.20±0.05 3-壬酸甲酯 3-Nonenoic acid, methyl ester 14.60 — 0.26±0.01 — (Z,Z)-3-己烯基2-甲基-2-丁烯酸酯 (Z)-(Z)-Hex-3-en-1-yl 2-methylbut-2-enoate 15.01 — 2.39±0.00 — 己酸叶醇酯 Hexanoic acid, 3-hexenyl ester, (Z)- 16.35 0.51±0.09 b 2.44±0.05 a — 己酸己酯 Hexanoic acid, hexyl ester 16.44 0.25±0.02 b 0.85±0.04 a — 顺式-3-己烯醇苯甲酸酯 3-Hexen-1-ol, benzoate, (Z)- 21.81 — 0.45±0.06 a 0.22±0.02 a 肉豆蔻酸甲酯 Methyl tetradecanoate 25.90 0.31±0.15 — — 醇类 Alcohols 叶醇 3-Hexen-1-ol, (Z)- 5.78 4.45±0.90 a 5.84±1.31 a — 3-甲基-1,5-戊二醇 1,5-Pentanediol, 3-methyl- 5.93 — 0.04±0.00 — 6-甲基-5-庚烯-2-醇 5-Hepten-2-ol, 6-methyl- 7.78 — 0.84±0.16 a 1.15±1.62 a 苯乙醇 Phenylethyl Alcohol 10.48 — — 11.04±1.59 醛酮类 Aldehydes and ketones 4-羟基查耳酮 4-Hydroxychalcone 5.20 0.35±0.02 a 0.07±0.02 a 0.16±0.01 a 苯甲醛 Benzaldehyde 7.43 — 0.11±0.02 — 甲基庚烯酮 5-Hepten-2-one, 6-methyl- 7.66 5.64±0.65 a 0.57±0.17 b 7.75±1.86 a 癸醛 Decanal 12.20 0.55±0.09 b 0.73±0.04 b 2.28±0.29 a 4-亚甲基异佛尔酮 4-Methyleneisophorone 12.76 1.91±0.23 b — 12.06±1.82 a 3,5-庚二烯醛 3,5-Heptadienal, 2-ethylidene-6-methyl- 13.22 — 0.02±0.00 — 2-十三烷酮 2-Tridecanone 19.24 6.62±3.78 a — 2.58±0.17 b 2-十五烷酮 2-Pentadecanone 25.34 2.78±1.29 a 0.17±0.00 b 0.85±0.12 ab 烷烃类 Alkanes 正十一烷 Undecane 9.77 1.19±0.10 b 0.59±0.03 c 1.73±0.10 a 3-甲基十一烷 Undecane, 3-methyl- 11.33 0.37±0.08 — — 正十二烷 Dodecane 11.97 0.75±0.06 b 0.31±0.08 c 1.45±0.01 a 正十三烷 Tridecane 14.35 0.41±0.06 a 0.22±0.04 a 0.49±0.05 a 3-甲基十三烷 Tridecane, 3-methyl- 16.05 0.14±0.01 — — 正十四烷 Tetradecane 16.75 0.38±0.02 b 0.31±0.06 b 0.91±0.29 a 正十六烷 Hexadecane 22.39 0.17±0.02 b 0.06±0.00 c 0.42±0.05 a 酚类 Phenols 对甲苯甲醚 Benzene, 1-methoxy-4-methyl- 8.43 — 1.21±0.34 b 2.81±0.02 a 甲基苯乙基醚 Benzene, (2-methoxyethyl)- 9.61 0.73±0.16 b — 3.64±0.14 a 2,6-二叔丁基对甲酚 Butylated Hydroxytoluene 19.80 0.05±0.04 — —
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[1] 陈秀中, 王琪. 中华民族传统赏花理论探微 [J]. 北京林业大学学报, 2001, 23(S1):16−21. DOI: 10.13332/j.1000-1522.2001.s1.006 CHEN X Z, WANG Q. Studies on Chinese principles in appreciating traditional flowers [J]. Journal of Beijing Forestry University, 2001, 23(S1): 16−21.(in Chinese) DOI: 10.13332/j.1000-1522.2001.s1.006
[2] 王文静, 吕思佳, 汪庆昊, 等. 植物花香物质代谢与调控研究进展[J/OL]. 分子植物育种, 2020: 1-7. (2020-09-16). https://kns.cnki.net/kcms/detail/46.1068.S.20200915.1803.006.html. WANG W J, LÜ S J, WANG Q H, et al. Research advance on the metabolism and regulation of plant floral fragrance[J/OL]. Molecular Plant Breeding, 2020: 1-7. (2020-09-16). https://kns.cnki.net/kcms/detail/46.1068.S.20200915.1803.006.html. (in Chinese)
[3] SEXTON R, STOPFORD A P, MOODIE W T, et al. Aroma production from cut sweet pea flowers (Lathyrus odoratus): The role of ethylene [J]. Physiologia Plantarum, 2005, 124(3): 381−389. DOI: 10.1111/j.1399-3054.2005.00498.x
[4] DUDAREVA N, PICHERSKY E. Biology of Floral Scent[M]. CRC Press, 2006.
[5] 施婷婷, 杨秀莲, 王良桂. ‘波叶金桂’花香成分的释放规律 [J]. 南京林业大学学报(自然科学版), 2018, 42(2):97−104. SHI T T, YANG X L, WANG L G. Study on the aroma component emission pattern of Osmanthus fragrans ‘Boye Jingui’ [J]. Journal of Nanjing Forestry University (Natural Sciences Edition), 2018, 42(2): 97−104.(in Chinese)
[6] 钱正, 张四杰, 金有权, 等. 柳叶蜡梅叶和花转录组测序及香气合成差异基因的筛选和表达 [J]. 农业生物技术学报, 2019, 27(5):844−855. QIAN Z, ZHANG S J, JIN Y Q, et al. Transcriptome sequencing of leaves and flowers and screening and expression of differential genes in aroma synthesis in Chimonanthus salicifolius [J]. Journal of Agricultural Biotechnology, 2019, 27(5): 844−855.(in Chinese)
[7] 张莹, 王雁, 田敏, 等. 不同种兰花香气成分分析 [J]. 分析科学学报, 2012, 28(4):502−506. ZHANG Y, WANG Y, TIAN M, et al. Analysis of aroma components in different orchid varieties [J]. Journal of Analytical Science, 2012, 28(4): 502−506.(in Chinese)
[8] 孙亚如, 陈丹凌, 翟玉珍, 等. ‘单县玫瑰’不同开放阶段花香特性分析 [J]. 山东农业大学学报(自然科学版), 2018, 49(6):958−964. SUN Y R, CHEN D L, ZHAI Y Z, et al. Analysis on aroma peculiarity of Rosa rugosa ‘Shanxian Meigui’ during different opening stages [J]. Journal of Shandong Agricultural University (Natural Science Edition), 2018, 49(6): 958−964.(in Chinese)
[9] 黎贵卿, 李区宁, 宋业昌, 等. 茉莉花香气、茉莉花精油及净油挥发性成分的HS-SPME-GC-MS和GC-MS比较分析 [J]. 广西林业科学, 2020, 49(1):139−144. DOI: 10.3969/j.issn.1006-1126.2020.01.027 LI G Q, LI Q N, SONG Y C, et al. Analysis on volatile components of jasmine aroma, jasmine essential oil and absolute oil by HS-SPME-GC-MS, GC-MS [J]. Guangxi Forestry Science, 2020, 49(1): 139−144.(in Chinese) DOI: 10.3969/j.issn.1006-1126.2020.01.027
[10] RUÍZ-RAMÓN F, ÁGUILA D J, EGEA-CORTINES M, et al. Optimization of fragrance extraction: Daytime and flower age affect scent emission in simple and double narcissi [J]. Industrial Crops and Products, 2014, 52: 671−678. DOI: 10.1016/j.indcrop.2013.11.034
[11] BAEK Y S, RAMYA M, AN H R, et al. Volatiles profile of the floral organs of a new hybrid Cymbidium, ‘sunny bell’ using headspace solid-phase microextraction gas chromatography-mass spectrometry analysis [J]. Plants (Basel, Switzerland), 2019, 8(8): 251.
[12] FRATERNALE D, FLAMINI G, RICCI D, et al. Flowers volatile profile of a rare red apple tree from Marche region (Italy) [J]. Journal of Oleo Science, 2014, 63(11): 1195−1201. DOI: 10.5650/jos.ess14088
[13] 章辰飞, 谢晓鸿, 汪庆昊, 等. 云锦杜鹃不同花期挥发性成分的HS-SPME-GC-MS检测与主成分分析 [J]. 广西植物, 2020, 40(7):1033−1045. DOI: 10.11931/guihaia.gxzw201905030 ZHANG C F, XIE X H, WANG Q H, et al. Analysis of volatile components of Rhododendron fortunei at different flowering stages by HS-SPME-GC-MS and PCA [J]. Guihaia, 2020, 40(7): 1033−1045.(in Chinese) DOI: 10.11931/guihaia.gxzw201905030
[14] 王洁, 李辛雷, 殷恒福, 等. 茶梅冬星不同花期及花器官挥发性成分 [J]. 云南农业大学学报(自然科学), 2018, 33(5):904−910. WANG J, LI X L, YIN H F, et al. Volatile components in different floral organs and flowering stages of Camellia sasanqua ‘Dongxing' [J]. Journal of Yunnan Agricultural University (Natural Science), 2018, 33(5): 904−910.(in Chinese)
[15] 曹媛媛, 贾斐斐, 吴岐奎, 等. 野茉莉属6个树种不同时期花香成分分析 [J]. 南京林业大学学报(自然科学版), 2019, 43(4):48−56. CAO Y Y, JIA F F, WU Q K, et al. Analysis of volatile components in different flowering stages in six species of Styrax spp [J]. Journal of Nanjing Forestry University (Natural Sciences Edition), 2019, 43(4): 48−56.(in Chinese)
[16] ZHAO J, WANG R, HUANG C X, et al. Taxonomic analysis of volatiles emitted by ornamental crabapple flowers [J]. Acta Ecologica Sinica, 2014, 34(4): 213−218. DOI: 10.1016/j.chnaes.2014.01.003
[17] 楚爱香, 汤庚国. 河南垂丝海棠品种的调查与分类 [J]. 江西农业大学学报, 2008, 30(6):1090−1096. DOI: 10.3969/j.issn.1000-2286.2008.06.030 CHU A X, TANG G G. Cultivar investigation and classification of Malus halliana koehne in Henan Province [J]. Acta Agriculturae Universitatis Jiangxiensis, 2008, 30(6): 1090−1096.(in Chinese) DOI: 10.3969/j.issn.1000-2286.2008.06.030
[18] MUZHER B M, YOUNIS R A A, EL-HATABI O, et al. Genetic identification of some Syrian local apple (Malus sp. ) cultivars using molecular markers [J]. Res. J. Agric. Biol. Sci., 2007, 3: 704−713.
[19] ULUKAN H. The evolution of cultivated plant species: Classical plant breeding versus genetic engineering [J]. Plant Systematics and Evolution, 2009, 280(3): 133−142.
[20] 李晓磊. 观赏海棠(Malus sp.)花粉特性及花果香气研究[D]. 泰安: 山东农业大学, 2008. LI X L. Analysis of pollen characteristics of ornamental crabapple (Malus sp.) and its flower, fruit aroma[D]. Taian: Shandong Agricultural University, 2008. (in Chinese)
[21] OMATA A, YOMOGIDA K, NAKAMURA S, et al. Volatile components of apple flowers [J]. Flavour and Fragrance Journal, 1990, 5(1): 19−22. DOI: 10.1002/ffj.2730050103
[22] 张红磊. 牡丹花期、花色及花香的变异研究[D]. 泰安: 山东农业大学, 2011. ZHANG H L. Study on variation of flowering period, flower color and fragrance of peony[D]. Taian: Shandong Agricultural University, 2011. (in Chinese)
[23] PRIYA P, YADAV A, CHAND J, et al. Terzyme: A tool for identification and analysis of the plant terpenome [J]. Plant Methods, 2018, 14: 4. DOI: 10.1186/s13007-017-0269-0
[24] SCHIESTL F P. The evolution of floral scent and insect chemical communication [J]. Ecology Letters, 2010, 13(5): 643−656. DOI: 10.1111/j.1461-0248.2010.01451.x
[25] 邹晶晶, 蔡璇, 曾祥玲, 等. 桂花不同品种开花过程中香气活性物质的变化 [J]. 园艺学报, 2017, 44(8):1517−1534. ZOU J J, CAI X, ZENG X L, et al. Changes of aroma-active compounds in different cultivars of Osmanthus fragrans during flowering [J]. Acta Horticulturae Sinica, 2017, 44(8): 1517−1534.(in Chinese)
[26] 章辰飞, 鲁昌鑫, 汪庆昊, 等. 两种杜鹃不同花期的挥发性成分分析 [J]. 分子植物育种, 2020, 18(11):3724−3735. ZHANG C F, LU C X, WANG Q H, et al. Analysis of volatile compounds in different flowering stages of two kinds of Rhododendron [J]. Molecular Plant Breeding, 2020, 18(11): 3724−3735.(in Chinese)
[27] 徐瑾, 李莹莹, 郑成淑, 等. 菊花不同花期及花序不同部位香气成分和挥发研究 [J]. 西北植物学报, 2012, 32(4):722−730. DOI: 10.3969/j.issn.1000-4025.2012.04.014 XU J, LI Y Y, ZHENG C S, et al. Studies of aroma compounds in Chrysanthemum in different florescence and inflorescence parts and aroma releasing [J]. Acta Botanica Boreali-Occidentalia Sinica, 2012, 32(4): 722−730.(in Chinese) DOI: 10.3969/j.issn.1000-4025.2012.04.014
[28] 陈艺荃, 林兵, 钟淮钦, 等. 不同杂交兰品种花朵挥发性成分分析 [J]. 中国细胞生物学学报, 2019, 41(10):1901−1908. CHEN Y Q, LIN B, ZHONG H Q, et al. Studies on the volatile constituents from different cultivars of Cymbidium hybrid [J]. Chinese Journal of Cell Biology, 2019, 41(10): 1901−1908.(in Chinese)
[29] 程劼, 谢建春, 孙宝国. 国产玫瑰精油的化学成分及香气特征 [J]. 中国食品添加剂, 2007(5):66−70. DOI: 10.3969/j.issn.1006-2513.2007.05.012 CHENG J, XIE J C, SUN B G. Composition and aromatic characteristics of rose essential oil produced in China [J]. China Food Additives, 2007(5): 66−70.(in Chinese) DOI: 10.3969/j.issn.1006-2513.2007.05.012
[30] 周围, 周小平, 赵国宏, 等. 中国苦水玫瑰油香气成分的研究 [J]. 色谱, 2002, 20(6):560−564. DOI: 10.3321/j.issn:1000-8713.2002.06.018 ZHOU W, ZHOU X P, ZHAO G H, et al. Studies of aroma components on essential oil of Chinese kushui rose [J]. Chinese Journal of Chromatography, 2002, 20(6): 560−564.(in Chinese) DOI: 10.3321/j.issn:1000-8713.2002.06.018
[31] DUDAREVA N, PICHERSKY E, GERSHENZON J. Biochemistry of plant volatiles [J]. Plant Physiology, 2004, 135(4): 1893−1902. DOI: 10.1104/pp.104.049981
[32] 向林, 陈龙清. 花香的基因工程研究进展 [J]. 中国农业科学, 2009, 42(6):2076−2084. DOI: 10.3864/j.issn.0578-1752.2009.06.025 XIANG L, CHEN L Q. Adavances in genetic engineering of floral scent [J]. Scientia Agricultura Sinica, 2009, 42(6): 2076−2084.(in Chinese) DOI: 10.3864/j.issn.0578-1752.2009.06.025
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期刊类型引用(2)
1. 朱兴龙，张佳旭，陈晓妍，黄旭龙，周涛，吴清华，裴瑾. 遂宁川白芷产地变迁过程中土壤质地对药材质量的影响. 世界中医药. 2024(18): 2725-2733 . 
百度学术
2. 潘可可，王克磊，李斌奇，张曦文，陈发兴. 不同比例红蓝光及光照强度对金线莲生理及叶绿素荧光特性的影响. 热带作物学报. 2022(08): 1628-1635 . 百度学术
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