Cloning and Expression of DcbHLH14 from Dendrobium catenatum Lindl.
-
摘要:目的 克隆铁皮石斛转录因子DcbHLH14基因并分析其在非生物胁迫响应中的表达情况，为研究DcbHLH14基因的功能提供理论参考。方法 通过同源克隆从铁皮石斛叶组织中得到DcbHLH14基因，对其编码的蛋白序列特征和组织表达特性进行分析，并采用qRT-PCR对DcbHLH14基因在低温、干旱和ABA处理过程中的表达量进行分析。结果 DcbHLH14基因开放阅读框（Open reading frame, ORF）为1269 bp，与参考序列存在7个碱基差异，仅含有1个外显子且无内含子，编码422个氨基酸。DcbHLH14蛋白的分子式为C2011H3192N586O613S13，理论分子量为45.8 kD，理论等电点（pI）为5.98，含有bHLH家族保守结构域bHLH-MYC-N和HLH，属于bHLH家族，与鼓槌石斛（Dendrobium chrysotoxum）和春兰（Cymbidium goeringii）bHLH蛋白的氨基酸序列同源性较高，分别为97.16%和86.90%。转录组分析结果显示，DcbHLH14基因在云南产地野生铁皮石斛花蕾中的表达量最高，在叶中的表达量最低。进一步qRT-PCR分析结果表明，该基因在广东丹霞铁皮石斛叶中的表达量最高，而在茎中的表达量最低。DcbHLH14基因启动子富含多种与水分胁迫、低温、脱水以及ABA响应等相关的顺式作用元件。DcbHLH14基因明显受到低温、干旱和ABA诱导，低温和ABA处理6 h后DcbHLH14表达量被显著提高并达到峰值，分别是处理前的12.6倍和3.7倍；干旱处理9 h后，DcbHLH14表达量最高，是处理前的6.5倍，达到极显著差异水平。结论 DcbHLH14基因可能在转录水平上通过依赖于ABA信号通路途径响应低温和干旱胁迫，从而调控下游功能基因表达，提高铁皮石斛抗逆性。
-
关键词:
- 铁皮石斛 /
- DcbHLH14基因 /
- 非生物胁迫 /
- 表达分析
Abstract:Objective Functions of DcbHLH14, a basic helix-loop-helix transcription factor of Dendrobium catenatum Lindl., in response to abiotic stresses were studied.Method DcbHLH14 was cloned from D. catenatum leaves using homologous cloning method for a bioinformatic analysis on the gene and expression in tissues. Gene expressions under low temperature, drought, and abscisic acid (ABA) stresses were determined.Result The ORF of DcbHLH14 was 1 269 bp and encoded 422 amino acids. Itcontained one exon, no intron, and 7 bases that were different from the reference sequences. The theoretical molecular weight was 45.8 kD, isoelectric point pH 5.98, and molecular formula C2011H3192N586O613S13. Its conserved domains contained bHLH-MYC-N and HLH proteins that had high similarities with the bHLH proteins in D. chrysotoxum at 97.16% and in Cymbidium goeringii at 86.90%. The transcriptome analysis revealed high expressions in the flower buds and columns but low in the leaves of the wild D. catenatum from Yunnan, whereas the qRT-PCR analysis showed high expressions in the leaves and low in the stems of the sample from Danxia, Guangdong. The promoters of DcbHLH14 contained numerous cis-acting elements associated with the responses to water-depletion, low temperature, dehydration, and ABA stresses, which significantly affected expression of the gene. For instance, DcbHLH14 was upregulated to peak in 6 h after a low temperature or ABA treatment reaching 12.6 or 3.7 times, respectively, as well as by a 9 h drought stress to become as high as 6.5 times of control. Conclusion It was postulated that DcbHLH14 responded to low temperature or drought stress through the ABA signaling pathway at transcription level. Hence, the tolerance of D. catenatum to the abiotic stresses could be manipulated by regulating the expression of the downstream functional gene.-
Keywords:
- Dendrobium catenatum /
- DcbHLH14 /
- abiotic stress /
- expression analysis
-
0. 引言
【研究意义】蓝莓（Vaccinium spp.）为杜鹃花科越橘属落叶或常绿多年生灌木状果树，其浆果酸甜可口、果肉细腻，富含维生素、花青素、黄酮、多酚等多种天然抗氧化物，具有明目、延缓衰老等独特功效，在食品加工方向具有广阔的研究和开发前景[1-3]。蓝莓品种丰富[4]，主要分为矮丛蓝莓、半高丛蓝莓、高丛蓝莓和兔眼蓝莓4个类型[5]，各类型的品种间果实品质差异显著，其中兔眼蓝莓果实与其他品种比较单果质量、硬度和糖酸相对较高，但是种籽含量最高，严重影响了口感[6]。对于种籽含量较高的水果，对其进行去籽加工是一道增加生产成本的工序[7]，而无籽果实的研究将会大大改善此类问题。植物通常利用内源激素的分泌与转运调节自身生长发育控制相应器官生长[8]，高浓度的生长素会促进珠心细胞降解[9]，从而导致胚珠败育形成无籽果实。生长素酰胺水解酶（IAA-Leucine Resistant 1-like Hydrolase，ILL）基因所编码的酶类能够催化生长素氨基酸结合态释放出游离态的生长素[10]，在诱导蓝莓胚胎败育从而产生无籽果实方面具有可能性。【前人研究进展】ILL基因最早在拟南芥中发现，其蛋白家族有7个成员，分别为AtILR1、AtIAR3和5个ILR1-like蛋白（AtILL1、AtILL2、AtILL3、AtILL5和AtILL6）[11]。ILL蛋白家族已被鉴别证明参与植物果实发育[12]、花器官生长[13]以及对环境因子的响应[14]等。花生AhILL5被证明通过调节激素水平影响种子的大小和质量[15]；番茄SlILL1、SlILL5和SlILL6通过改变生长素含量以及影响PIN基因的表达介导番茄花梗脱落[16]；萝卜miR172通过介导RsILL5对萝卜主根增厚产生影响[17]；番茄SlIAR3基因的沉默表达可以增强植株对黄萎病的基础防御[18]。ILL家族蛋白能够增加植物体内游离的生长素积累，进而促进植物的营养生长，也可能促进珠心细胞降解造成果实胚珠的败育。【本研究切入点】目前关于ILL家族基因在蓝莓胚胎败育方面的研究还鲜有报道。【拟解决的关键问题】课题组前期研究中发现赤霉素处理可导致蓝莓果实胚胎败育进而出现无籽果实，从赤霉素处理后的蓝莓果实转录组数据分析中筛选出了差异表达的生长素酰胺酶（IAA-leucine resistant 1， ILR1 ）基因VcILR1[19]。本研究克隆了蓝莓生长素酰胺酶基因VcILR1，并对其进行生物信息学分析及时空表达分析，探究其功能，为进一步探究蓝莓胚胎败育的分子机制提供理论基础。
1. 材料与方法
1.1 试验材料
试验所使用的材料为蓝莓品种Baldwin，植株无病虫害和机械损伤，栽植于南京市溧水区江苏省中科院植物研究所蓝莓试验基地（119°03′E，31°35′N），于生长期取花、叶片、茎、果和根，用液氮速冻带回实验室于−80 ℃超低温冰箱保存备用。花后10 d使用质量浓度为100 mg·L−1的赤霉素（GA3）浸蘸果穗5 s，之后收集青果（花后60 d）和成熟果（花后100 d），用液氮速冻带回实验室于−80 ℃超低温冰箱保存，用于目的基因的相对表达量分析。
1.2 试验方法
1.2.1 RNA的提取和cDNA的合成
使用TaKaRa RNA提取试剂盒提取蓝莓花、果、茎、叶和根的RNA。使用5×Prime Script RT Master Mis试剂与提取的RNA，按照体积比1∶4配制20 μL体系合成cDNA。
1.2.2 VcILR1基因的克隆
根据蓝莓Baldwin的转录组测序数据（SRA数据库登录号：PRJNA831576），利用Bioxm2.7软件设计引物（表1）。cDNA扩增反应体系：Prime star Max Premix (2×)20 μL、cDNA模板1.5 μL、上下游引物各1.2 μL、ddH2O 21.1 μL。扩增反应程序：预变性98 ℃ 3 min；变性98 ℃ 10 s，退火55 ℃ 5 s，延伸72 ℃ 15 s，循环35次；终延伸72 ℃ 3 min，8 ℃保持。制备1%琼脂糖凝胶对PCR产物进行电泳鉴定，条带大小验证正确后再进行回收纯化，之后进行TA克隆，转化大肠杆菌，进行菌液验证，选取阳性克隆进行测序。
表 1 VcILR1基因扩增引物信息Table 1. VcILR1 primer information引物名称Primer name 引物序列（5′-3′）primer sequence（5′-3′） VcILR1-F ATGGATGCTTTGCCCATTCAGGA VcILR1-R AGAATAAGAAATGGGGTTTCTTCC qRT-VcILR1-F GAGGAACAAGGCCAAGGTGCAA qRT-VcILR1-R CCTGGCCTTGCTGCAACAGT Actin-F AGGCTAACCGTGAGAAGATGAC Actin-R AGAGTCCAGCACGATTCCAG 1.2.3 生物信息学分析
采用在线工具ProtParam（https://web.expasy.org/protparam/）分析VcILR1基因编码蛋白质的分子量、理论等电点、氨基酸组成成分、脂肪系数等理化性质；利用WoLF-PSORT II 在线软件（https://www.genscript.com/wolf-psort.html?src=leftbar）预测VcILR1蛋白的亚细胞定位；利用DeepTMHMM在线软件（https://dtu.biolib.com/DeepTMHMM）预测VcILR1蛋白跨膜结构；利用 SignalP 6.0 Server 在线软件（https://services.healthtech.dtu.dk/service.php?SignalP）预测信号肽；利用NetPhos 3.1 Server在线软件（https://services.healthtech.dtu.dk/service.php?NetPhos-3.1）分析蛋白磷酸化位点；利用 ExPasy-ProtScale （https://web.expasy.org/protscale/）分析VcILR1蛋白亲水/疏水性；利用SOPM在线软件（https://npsa-prabi.ibcp.fr/cgi-bin/npsa_automat.pl?page=npsa_sopma.html）预测VcILR1蛋白的二级结构，利用 Swiss-Model在线软件预测VcILR1蛋白的三级结构。
1.2.4 基因表达模式分析
利用Primer Premier 6设计特异引物qRT-VcILR1-F、qRT-VcILR1-R（表1）进行荧光定量PCR分析，选取内参基因Actin对蓝莓花、叶片、茎、果实和根样本进行qRT-PCR检测。
1.3 数据分析
利用SPSS 26对荧光定量结果进行差异显著性分析，用Origin 2021作表达分析图。
2. 结果与分析
2.1 蓝莓VcILR1基因的克隆
以蓝莓Baldwin果实的cDNA为模板进行PCR扩增，得到大小为976 bp的清晰条带（图1），表明蓝莓VcILR1基因克隆成功。
![]()
图 1 VcILR1基因PCR扩增结果M：Marker DL2000；1–2：无效条带；3–4：目的条带ILR1。Figure 1. PCR amplification of VcILR1M: Marker DL2000; 1-2: Invalid strips; 3-4: Target strip ILR1.2.2 VcILR1基因的生物信息学分析
2.2.1 理化性质分析
对蓝莓VcILR1基因编码蛋白的理化性质分析结果表明，VcILR1编码蛋白氨的基酸数量为325个，分子质量为35364.20 kDa，分子式为C1577H2460N430O471S12，理论等电点为5.67。VcILR蛋白的氨基酸组成分析显示，该蛋白中的丙氨酸（Ala）含量最高，为10.5%，含量最低的是色氨酸（Trp），仅为0.3%。该结构中负电荷残基（Asp+Glu）数量为38个，而正电荷残基（Arg+Lys）数量为27个。不稳定系数为43.57，推断其属于不稳定蛋白。脂肪系数为88.55，亲水性总平均值（GRAVY）为−0.054，推测该蛋白为亲水性蛋白。
2.2.2 蛋白结构域分析
利用NCBI中的Concserved Domain搜索，结果显示蓝莓吲哚-3-乙酸（IAA）-氨基酸水解酶（IAA-amino acid hydrolase，ILR1）蛋白质特定匹配（Specific hits）在M20_IAA_Hyd（由第1～314个氨基酸编码），其属于Zinc_peptidase_like超家族。蛋白质分类分析显示，ILR1是一种M20家族金属肽酶，可以将吲哚-3-乙酰-N-天冬氨酸水解为吲哚-3-乙酸的植物氨基酰化酶-1，即吲哚-3-乙酸-L-天冬氨酸水解酶（IAA-Asp）（图2）。而IAA-Asp在植物中作为IAA储存形式起作用，ILR1/ILL可将其转化为游离态IAA。
2.2.3 亚细胞定位及跨膜区结构域和信号肽预测
对蓝莓VcILR1蛋白的亚细胞定位分析结果显示，该蛋白定位于细胞骨架（K值为11）、细胞质（K值为3），说明该蛋白最可能定位于细胞骨架；跨膜结构域预测发现VcILR1蛋白无跨膜结构域；信号肽预测发现VcILR1蛋白是非分泌性蛋白，不含信号肽；VcILR1蛋白的磷酸化位点数量为23个，其中丝氨酸（S）15个、苏氨酸（T）5个、酪氨酸（Y）3个（图3A）。VcILR1蛋白的亲水/疏水性分析结果显示（图3B），整条肽链的氨基酸预测值大部分均为负值，判断该蛋白具有亲水性蛋白的特征，该判断与蛋白质的理化性质的推断结果相一致。
![]()
图 3 VcILR1蛋白磷酸化位点预测（A）和蛋白亲水/疏水性预测（B）Figure 3. Predicted phosphorylation sites of VcILR1 protein (A) and protein hydrophilicity/hydrophobicity (B)2.2.4 VcILR1蛋白的二级、三级结构预测
VcILR1蛋白的二级结构预测结果显示，α-螺旋（Hh）占比为37.23%，延伸链（Ee）占比为7.44%，β-转角（Tt）占比为6.15%，无规则卷曲（C）占比为39.47%（图4A）。VcILR1蛋白的三级结构预测结果显示（图4B），该蛋白为α-螺旋、β-转角组成无规则卷曲的三维空间结构，与二维结构预测结果一致。
![]()
图 4 VcILR1蛋白的二级结构预测（A）和三级结构预测（B）Figure 4. Predicted secondary structure (A) and tertiary structure (B) of VcILR1 protein2.2.5 VcILR1基因系统发育树的构建与分析
利用NCBI中的BLAST工具，对蓝莓VcILR1基因序列进行在线比对，选取16个物种的ILL基因序列进行比对并构建系统发育树，结果（图5）显示蓝莓VcILR1与山茶科（Theaceae）植物ILL亲缘关系较近，与漆树科（Anacardiaceae）植物ILL亲缘关系较远。
![]()
图 5 蓝莓VcILR1基因与其他物种ILL家族基因的系统发育树Figure 5. Phylogenetic trees of VcILR1 and ILL familial genes of other species2.2.6 VcILR1氨基酸序列同源性比对
由构建的系统发育树分析结果选出与蓝莓VcILR1基因同源性高的3个物种，分别为茶树（Camellia sinensis）、欧亚种葡萄（Vitis vinifera）、河岸葡萄（Vitis riparia）。利用DNAMAN软件对蓝莓和其他植物的ILL家族蛋白进行序列比对，包含ILL蛋白家族保守结构域Peptidase_M20（图6红线区域）和M20_dimer（图6蓝线区域）。使用BioXM 2.7软件对氨基酸序列相似率进行计算，得出蓝莓ILR1蛋白与茶树ILL1蛋白氨基酸相似率为65.92%，与欧亚种葡萄ILL1蛋白和ILL4蛋白相似率分别为63.15%、61.22%，与河岸葡萄ILL4蛋白相似率为65.77%。综上可得，进化过程中蓝莓ILR1基因与茶树ILL1和河岸葡萄ILL4基因具有较高的同源性。
![]()
图 6 蓝莓VcILR1氨基酸序列与其他物种ILL家族蛋白氨基酸序列对比分析以相似性 50%为阈值，蓝色标注：相似性 ≥ 50%；粉色标注：相似性 ≥ 75%；黑色标注：相似性 ≥100%；红线、蓝线：保守结构域。Figure 6. Amino acid sequence alignment of VcILR1 with other ILL family proteinsWith threshold at 50 % similarity, blue indicates≥50%; pink, ≥75%; black, 100%; red and blue lines, conservative domains.2.3 VcILR1基因的表达分析
荧光定量PCR分析结果显示，在蓝莓Baldwin品种的花、果、茎、叶和根中均能检测到VcILR1基因的表达（图7-A），且不同部位的表达量存在显著差异。VcILR1在蓝莓叶中的表达量最高，在果实中表达量最低，前者是后者的6倍。由赤霉素处理后蓝莓青果和成熟果中VcILR1的表达量图（图7-B）可知，赤霉素处理的蓝莓青果中VcILR1的表达量较高，相比对照组上升约3.2倍；VcILR1基因在成熟果中的表达量均低于青果，但对照组VcILR1表达量最低，比赤霉素处理组低约39%。由此推测，赤霉素处理可以诱导蓝莓果实中VcILR1基因的表达上调。
![]()
图 7 VcILR1在蓝莓不同部位（A）和赤霉素处理下的相对表达量（B）A：不同的小写字母表示不同部位间差异显著（P＜0.05）。B：青果CK——对照组青果期果实；青果GA——赤霉素处理组青果期果实；熟果CK——对照组成熟果实；熟果GA——赤霉素处理组成熟果实。不同小写字母表示同一阶段果实不同处理间差异显著（P＜0.05）。Figure 7. Expressions of VcILR1 in different organs of blueberry plant (A) and of that being treated by gibberellin (B)A: Data with different lowercase letters indicate significant difference between organs (P＜0.05); B: Green fruit CK—control green fruit stage; green fruit GA—gibberellin treated group green fruit stage; ripe fruit CK—control ripe fruit; ripe fruit GA—gibberellin treated group ripe fruit. Data with different lowercase letters indicate significant difference between treatments on fruits at the same growth stage (P＜0.05).3. 讨论与结论
蓝莓品种丰富，各品种间种子含量差异较大，其中兔眼蓝莓品种由于籽粒较多，严重影响口感，大大降低其商品价值。研究如何获得少籽/无籽蓝莓果实，是提升多籽品种蓝莓果实品质的重要手段。常用的获得无籽果实的方法是赤霉素处理。赤霉素和生长素作为果实受精后生长所需的主要激素[20]，它们之间互作影响着果实授粉和单性结实的坐果问题[21]。基于转录组数据，本研究对蓝莓生长素酰胺水解酶基因VcILR1进行了克隆和表达分析，以期为赤霉素调控蓝莓种子发育的机理提供科学依据。
本研究从蓝莓Baldwin品种中克隆获得了VcILR1基因，生物信息学分析显示该基因编码325个氨基酸，编码蛋白的分子质量为35364.20 kDa，理论电子量为5.677，为亲水性蛋白。跨膜区结构域和信号肽预测结果显示，VcILR1蛋白既无跨膜结构域也不含信号肽，因为信号肽是分泌性蛋白的决定性因子[22]，所以推测VcILR1为非分泌性蛋白。系统进化树分析结果显示，VcILR1基因与山茶科植物的茶树（Camellia sinensis）生长素酰胺水解酶（IAA-Leucine Resistant 1-like，ILL）亲缘关系较近，而与漆树科植物的ILL亲缘关系较远。从拟南芥7个ILL家族基因的深入研究得知，AtILR1能够水解生长素-氨基酸螯合物，其符合所有拟南芥生长素酰胺水解酶基因（AtILLs）拥有的M20二聚体结构域所具有的水解生长素螯合物作用的机制。使用SMART对蓝莓VcILR1基因的结构域分析发现，VcILR1中也拥有M20二聚体结构域（M20_dimer），因此蓝莓VcILR1可能也具有水解生长素-氨基酸螯合物的功能。大量研究表明，ILL家族基因在不同组织中的表达具有特异性。蓝莓各部位中VcILR1基因的表达量分析结果显示，花、叶、茎和根中的表达量相对于果实都较高，可能的原因是果实为生殖器官，生长素含量过多会抑制果实和种子的正常发育，这与Weijers等[23]、Adamowski等[24]和Blakeslee等[25]的研究结果基本一致。本研究中，赤霉素处理的蓝莓果实中VcILR1基因的表达量均明显增强，表明VcILR1发挥了ILL家族基因所具有的调控游离态IAA的释放进而调控果实继续发育的功能[26]，推测由此可能会造成生长素的累积，从而影响珠心发育，导致胚胎败育，形成无籽果实，但具体机理还有待进一步研究。
-
![]()
图 1 DcbHLH14基因克隆（A）及染色体定位（B）结果
M：Marker；1：DcbHLH14基因 cDNA 电泳。
Figure 1. DcbHLH14 cloning (A) and chromosome locating (B)
M: Marker; 1: cDNA electrophoresis of DcbHLH14.
![]()
图 2 DcbHLH14基因cDNA序列及其推导氨基酸序列分析
红色箭头表示DcbHLH14基因与参考序列间存在的碱基差异。
Figure 2. cDNA and deduced amino acid sequences of DcbHLH14
Red arrow represents difference on base between DcbHLH14 and reference sequences.
![]()
图 4 DcbHLH14蛋白亲疏水分析（A）、二级结构预测（B）及三级结构预测（C）
Figure 4. Hydrophilicity and hydrophobicity of DcbHLH14 protein (A), predicted secondary structure (B), and tertiary structure (C)
![]()
图 5 DcbHLH14蛋白与其他物种bHLH蛋白的多重序列比对分析结果
实线表示bHLH-MYC-N结构域；虚线表示HLH结构域。
Figure 5. Multiple sequence alignment between DcbHLH14 and bHLH proteins from other plants
Solid line represents bHLH-MYC-N domain; dashed line, HLH domain.
![]()
图 6 基于不同物种bHLH蛋白氨基酸序列构建的系统发育进化树
Figure 6. Phylogenetic tree based on amino acid sequences in bHLH protein of different species
![]()
![]()
图 8 DcbHLH14基因组织表达特性的qRT-PCR分析
Figure 8. qRT-PCR analysis on DcbHLH14 expressions in tissues
![]()
图 9 DcbHLH14基因在低温（A）、干旱（B）和ABA（C）处理下的表达情况
*表示与0 h差异显著（P＜0.05）；***表示与0 h极显著差异（P＜0.001）；
Figure 9. Expressions of DcbHLH14 under cold stress (A), drought stress (B), and ABA treatment (C)
* represents significant difference from control (0 h) at P＜0.05; *** represents extremely significant difference from control (0 h) at P＜0.001.
![]()
图 10 DcbHLH14基因在低温、干旱和ABA处理下表达水平的qRT-PCR分析结果
不同小写字母表示同一处理不同时间之间差异显著（P<0.05）。
Figure 10. qRT-PCR analysis on expressions of DcbHLH14
under low temperature, drought, and ABA treatment Different lowercase letters indicant significant difference among different treatment times of the same treatment (P<0.05).
表 1 DcbHLH14基因启动子顺式作用元件分析结果
Table 1 Cis-acting elements in DcbHLH14 promoter
序号 No. 元件名称 Element 元件序列 Element sequence 数目 Number 功能预测 Predicted function 1 MYCCONSENSUSAT CANNTG 18 低温响应 Low temperature responsive 2 MYBCORE CNGTTR 4 水分胁迫调控 Regulation of water stress 3 MYB2CONSENSUSAT YAACKG 3 脱水响应 Dehydration responsive 4 LTRECOREATCOR15 CCGAC 3 低温响应 Low temperature responsive 5 MYBATRD22 CTAACCA 2 脱水响应 Dehydration responsive 6 MYB1AT WAACCA 1 脱水响应 Dehydration responsive 7 ABRELATERD1 ACGTG 1 ABA响应 Abscisic acid responsive 
下载: 导出CSV
-
[1] 蔡琳, 彭鹏. 名贵中药铁皮石斛化学成分及其药理作用浅述 [J]. 安徽化工, 2021, 47(1):24−25. DOI: 10.3969/j.issn.1008-553X.2021.01.008 CAI L, PENG P. A brief introduction on the chemical constituents and pharmacological action of rare Chinese medicine Dendrobium officinale [J]. Anhui Chemical Industry, 2021, 47(1): 24−25.(in Chinese) DOI: 10.3969/j.issn.1008-553X.2021.01.008
[2] 黄嘉雯, 陈小阳, 刘涛利, 等. 花色素苷合成关键调节基因的研究进展 [J]. 分子植物育种, 2019, 17(11):3602−3608. DOI: 10.13271/j.mpb.017.003602 HUANG J W, CHEN X Y, LIU T L, et al. Research progress of the key regulatory genes for anthocyanin synthesis [J]. Molecular Plant Breeding, 2019, 17(11): 3602−3608.(in Chinese) DOI: 10.13271/j.mpb.017.003602
[3] 王力伟, 房永雨, 刘红葵, 等. bHLH转录因子的研究进展 [J]. 畜牧与饲料科学, 2020, 41(1):23−27. DOI: 10.12160/j.issn.1672-5190.2020.01.005 WANG L W, FANG Y Y, LIU H K, et al. Research progress of bHLH transcription factors [J]. Animal Husbandry and Feed Science, 2020, 41(1): 23−27.(in Chinese) DOI: 10.12160/j.issn.1672-5190.2020.01.005
[4] 陈清, 汤浩茹, 董晓莉, 等. 植物Myb转录因子的研究进展 [J]. 基因组学与应用生物学, 2009, 28(2):365−372. CHEN Q, TANG H R, DONG X L, et al. Progress in the study of plant myb transcription factors [J]. Genomics and Applied Biology, 2009, 28(2): 365−372.(in Chinese)
[5] AMOUTZIAS G, VERON A, WEINER J, et al. One billion years of bZIP transcription factor evolution: Conservation and change in dimerization and DNA-binding site specificity [J]. Molecular Biology and Evolution, 2006, 24(3): 827−835. DOI: 10.1093/molbev/msl211
[6] 覃超. 甜瓜CmbHLH93和CmbHLH130基因在果实发育中的作用[D]. 呼和浩特: 内蒙古大学, 2020: 84－86. QIN C. The role of CmbHLH93 and CmbHLH130 in fruit development of melon[D]. Hohhot: Inner Mongolia University, 2020: 84-86. (in Chinese)
[7] 张娇. 两个bHLH转录因子(AtLPl和AtLP2)在拟南芥细胞伸长生长中的功能研究[D]. 武汉: 华中师范大学, 2019: 28－29. ZHANG J. Study on the roles of two bHLH transcription factors(AtLPl and AtLP2)in cell elongation of Arabidopsis thaliana[D]. Wuhan: Central China Normal University, 2019: 28－29. (in Chinese)
[8] LIU Y, LI X, LI K, et al. Multiple bHLH proteins form heterodimers to mediate CRY2-dependent regulation of flowering-time in Arabidopsis [J]. PLoS Genetics, 2013, 9(10): e1003861. DOI: 10.1371/journal.pgen.1003861
[9] 宋建辉. bHLH113调控拟南芥开花和花青素合成的分子机制研究[D]. 杭州: 浙江农林大学, 2020. SONG J H. The molecular regulatory mechanism of flowering and anthocyanin by bHLH113 in Arabidopsis[D]. Hangzhou: Zhejiang A & F University, 2020. (in Chinese)
[10] WU H H, REN Z Y, ZHENG L, et al. The bHLH transcription factor GhPAS1 mediates BR signaling to regulate plant development and architecture in cotton [J]. The Crop Journal, 2021, 9(5): 1049−1059. DOI: 10.1016/j.cj.2020.10.014
[11] ZHANG J H, LV H Z, LIU W J, et al. bHLH transcription factor SmbHLH92 negatively regulates biosynthesis of phenolic acids and tanshinones in Salvia miltiorrhiza [J]. Chinese Herbal Medicines, 2020, 12(3): 237−246. DOI: 10.1016/j.chmed.2020.04.001
[12] MENG F W, YANG C, CAO J D, et al. A bHLH transcription activator regulates defense signaling by nucleo-cytosolic trafficking in rice [J]. Journal of Integrative Plant Biology, 2020, 62(10): 1552−1573. DOI: 10.1111/jipb.12922
[13] 尹航. 露地菊CgbHLH113基因的克隆及功能分析[D]. 哈尔滨: 东北林业大学, 2021. YIN H. Cloning and functional analysis of CgbHLH113 gene from Chrysanthemum × grandiflora[D]. Harbin: Northeast Forestry University, 2021. (in Chinese)
[14] LI Y Y, SUI X Y, YANG J S, et al. A novel bHLH transcription factor, NtbHLH1, modulates iron homeostasis in tobacco (Nicotiana tabacum L.) [J]. Biochemical and Biophysical Research Communications, 2020, 522(1): 233−239. DOI: 10.1016/j.bbrc.2019.11.063
[15] YI K K, WU Z C, ZHOU J, et al. OsPTF1, a novel transcription factor involved in tolerance to phosphate starvation in rice [J]. Plant Physiology, 2005, 138(4): 2087−2096. DOI: 10.1104/pp.105.063115
[16] WANG F B, ZHU H, CHEN D H, et al. A grape bHLH transcription factor gene, VvbHLH1, increases the accumulation of flavonoids and enhances salt and drought tolerance in transgenic Arabidopsis thaliana [J]. Plant Cell, Tissue and Organ Culture (PCTOC), 2016, 125(2): 387−398. DOI: 10.1007/s11240-016-0953-1
[17] CHEN H C, CHENG W H, HONG C Y, et al. The transcription factor OsbHLH035 mediates seed germination and enables seedling recovery from salt stress through ABA-dependent and ABA-independent pathways, respectively [J]. Rice, 2018, 11(1): 50. DOI: 10.1186/s12284-018-0244-z
[18] GAO Y, WU M Q, ZHANG M J, et al. Roles of a maize phytochrome-interacting factors protein ZmPIF3 in regulation of drought stress responses by controlling stomatal closure in transgenic rice without yield penalty [J]. Plant Molecular Biology, 2018, 97(4): 311−323.
[19] REN Y R, YANG Y Y, ZHAO Q, et al. MdCIB1, an apple bHLH transcription factor, plays a positive regulator in response to drought stress [J]. Environmental and Experimental Botany, 2021, 188: 104523. DOI: 10.1016/j.envexpbot.2021.104523
[20] ZHAO Q, XIANG X H, LIU D, et al. Tobacco transcription factor NtbHLH123 confers tolerance to cold stress by regulating the NtCBF pathway and reactive oxygen species homeostasis [J]. Frontiers in Plant Science, 2018, 9: 381. DOI: 10.3389/fpls.2018.00381
[21] DONG H Z, CHEN Q M, DAI Y Q, et al. Genome-wide identification of PbrbHLH family genes, and expression analysis in response to drought and cold stresses in pear (Pyrus bretschneideri) [J]. BMC Plant Biology, 2021, 21(1): 86. DOI: 10.1186/s12870-021-02862-5
[22] JIN R, KIM H S, YU T, et al. Identification and function analysis of bHLH genes in response to cold stress in sweetpotato [J]. Plant Physiology and Biochemistry, 2021, 169: 224−235. DOI: 10.1016/j.plaphy.2021.11.027
[23] YU Z M, ZHANG G H, TEIXEIRA DA SILVA J A, et al. The methyl jasmonate-responsive transcription factor DobHLH4 promotes DoTPS10, which is involved in linalool biosynthesis in Dendrobium officinale during floral development [J]. Plant Science, 2021, 309: 110952. DOI: 10.1016/j.plantsci.2021.110952
[24] CHEN Y, WANG Y Z, LYU P, et al. Comparative transcriptomic analysis reveal the regulation mechanism underlying MeJA-induced accumulation of alkaloids in Dendrobium officinale [J]. Journal of Plant Research, 2019, 132(3): 419−429. DOI: 10.1007/s10265-019-01099-6
[25] 张志勇, 阳静, 齐泽民. 铁皮石斛总RNA提取方法的比较研究 [J]. 江苏农业科学, 2017, 45(4):33−35. DOI: 10.15889/j.issn.1002-1302.2017.04.009 ZHANG Z Y, YANG J, QI Z M. Comparative study on extraction methods of total RNA from Dendrobium candidum [J]. Jiangsu Agricultural Sciences, 2017, 45(4): 33−35.(in Chinese) DOI: 10.15889/j.issn.1002-1302.2017.04.009
[26] ZHANG G Q, LIU K W, LI Z, et al. The Apostasia genome and the evolution of orchids [J]. Nature, 2017, 549(7672): 379−383. DOI: 10.1038/nature23897
[27] WANG Y, LIU A Z. Genomic characterization and expression analysis of basic Helix-loop-Helix (bHLH) family genes in traditional Chinese herb Dendrobium officinale [J]. Plants (Basel, Switzerland), 2020, 9(8): 1044.
[28] 李季生, 李娜, 贾漫丽, 等. 基于转录组数据挖掘桑树bHLH转录因子家族 [J]. 分子植物育种, 2022, 20(6):1798−1810. DOI: 10.13271/j.mpb.020.001798 LI J S, LI N, JIA M L, et al. Mining bHLH transcription factor family of mulberry based on transcriptome data [J]. Molecular Plant Breeding, 2022, 20(6): 1798−1810.(in Chinese) DOI: 10.13271/j.mpb.020.001798
[29] 王菊萍, 王珍, 张铁军, 等. 蒺藜苜蓿MtbHLH148转录因子的克隆与转化及其功能分析 [J]. 西北植物学报, 2019, 39(6):963−973. DOI: 10.7606/j.issn.1000-4025.2019.06.0963 WANG J P, WANG Z, ZHANG T J, et al. Cloning and analysis of a basic Helix-loop-Helix (bHLH) transcription factor MtbHLH148 from Medicago truncatula L [J]. Acta Botanica Boreali-Occidentalia Sinica, 2019, 39(6): 963−973.(in Chinese) DOI: 10.7606/j.issn.1000-4025.2019.06.0963
[30] SUN W J, JIN X, MA Z T, et al. Basic helix-loop-helix (bHLH) gene family in Tartary buckwheat (Fagopyrum tataricum): Genome-wide identification, phylogeny, evolutionary expansion and expression analyses [J]. International Journal of Biological Macromolecules, 2020, 155: 1478−1490. DOI: 10.1016/j.ijbiomac.2019.11.126
[31] 杨贞, 蔡友铭, 张永春, 等. 基于SRAP分子标记的铁皮石斛遗传多样性分析 [J]. 上海农业学报, 2019, 35(5):23−27. DOI: 10.15955/j.issn1000-3924.2019.05.05 YANG Z, CAI Y M, ZHANG Y C, et al. Genetic diversity analysis of Dendrobium officinale based on SRAP molecular markers [J]. Acta Agriculturae Shanghai, 2019, 35(5): 23−27.(in Chinese) DOI: 10.15955/j.issn1000-3924.2019.05.05
[32] 朱璐璐, 周波. bHLH蛋白在植物发育及非生物胁迫中的调控[J/OL]. 分子植物育种, 2021: 1-14. (2021-02-23). https://kns.cnki.net/kcms/detail/46.1068.S.20210222.1744.012.html. ZHU L L, ZHOU B. Regulation of bHLH protein in plant development and abiotic stress[J/OL]. Molecular Plant Breeding, 2021: 1-14. (2021-02-23). https://kns.cnki.net/kcms/detail/46.1068.S.20210222.1744.012.html.(in Chinese)
[33] CASTILHOS G, LAZZAROTTO F, SPAGNOLO-FONINI L, et al. Possible roles of basic helix-loop-helix transcription factors in adaptation to drought [J]. Plant Science, 2014, 223: 1−7. DOI: 10.1016/j.plantsci.2014.02.010
[34] LIU Y J, JI X Y, NIE X G, et al. Arabidopsis AtbHLH112 regulates the expression of genes involved in abiotic stress tolerance by binding to their E-box and GCG-box motifs [J]. The New Phytologist, 2015, 207(3): 692−709. DOI: 10.1111/nph.13387
[35] JI X Y, NIE X G, LIU Y J, et al. A bHLH gene from Tamarix hispida improves abiotic stress tolerance by enhancing osmotic potential and decreasing reactive oxygen species accumulation [J]. Tree Physiology, 2016, 36(2): 193−207.
[36] 耿晶晶. 甜橙bHLH家族转录因子发掘及CsbHLH18抗寒功能鉴定与作用机制解析[D]. 武汉: 华中农业大学, 2018: 77-79. GENG J J. Genome-wide identification of bHLH transcription factor family in sweet orange(Citrus sinensis) and functional characterization and mechanism analysis of CsbHLH18 in cold resistance[D]. Wuhan: Huazhong Agricultural University, 2018: 77-79. (in Chinese)
[37] PARK S, LEE C, DOHERTY C J, et al. Regulation of the Arabidopsis CBF regulon by a complex low-temperature regulatory network [J]. The Plant Journal, 2015, 82(2): 193−207. DOI: 10.1111/tpj.12796
[38] CHINNUSAMY V, ZHU J K, SUNKAR R. Gene regulation during cold stress acclimation in plants [J]. Methods in Molecular Biology (Clifton, N J), 2010, 639: 39−55.
[39] CHINNUSAMY V, OHTA M, KANRAR S, et al. ICE1: A regulator of cold-induced transcriptome and freezing tolerance in Arabidopsis [J]. Genes & Development, 2003, 17(8): 1043−1054.
[40] SHI Y T, DING Y L, YANG S H. Molecular regulation of CBF signaling in cold acclimation [J]. Trends in Plant Science, 2018, 23(7): 623−637. DOI: 10.1016/j.tplants.2018.04.002
计量
- 文章访问数: 475
- HTML全文浏览量: 137
- PDF下载量: 48
