Effects of CO2 and Supplemental LED on Photosynthesis and Quality of Chili Peppers
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摘要:目的 探究增施CO2与LED补光对日光温室辣椒光合特性和品质的影响，以期为提高日光温室辣椒光合作用和品质提供理论依据。方法 以“华美105”辣椒为试材，采用二因素随机区组设计。因素L为LED补光，设3 个水平：L1（自然光）、L2（R∶B=5∶1）、L3（R∶B∶W=3∶2∶1）；因素C为CO2含量，设2个水平：C1：自然条件下的 CO2含量为（400±50）μL·L−1，C2：增施CO2，使其含量为（800±50）μL·L−1；共6个处理：L1C1（对照）、L1C2、L2C1、L2C2、L3C1、L3C2。结果 结果表明：增施CO2与LED补光能够增加辣椒株高和茎粗，L2C2和L3C2处理株高和茎粗均显著高于对照，株高和茎粗分别为88.33 cm，93.00 cm和12.00 mm，13.34 mm。L2C2处理辣椒叶绿素a、叶绿素b和总叶绿素含量较其他处理显著提高。增施CO2与LED补光增强辣椒净光合速率（Pn），各处理之间Pn无差异，但显著高于CK，其中L2C2处理Pn最高，较CK增加36.70%。维生素C、可溶性糖、可溶性蛋白均表现为L2C2和L3C2高于其他处理。结论 对辣椒进行增施CO2与LED补光互作可有效提高辣椒光合特性和品质，其中L2C2处理可作为当地日光温室越冬茬辣椒栽培的最优选择。Abstract:Objective Effects of CO2 and LED exposure on the photosynthesis and quality of chili peppers in a solar greenhouse were studied.Method In a two-way random zone group experiment, Huamei 105 chili pepper plants were exposed to natural light (L1), natural light supplemented with LED of R ∶ B=5 ∶ 1 (L2) or R ∶ B ∶ W=3 ∶ 2 ∶ 1 (L3), CO2 at the natural 400±50 μL·L−1 (C1) or at 800±50 μL·L−1 (C2) in 6 combination treatments ∶ L1C1 (control), L1C2, L2C1, L2C2, L3C1, and L3C2. The physiological and photosynthetic characteristics of the plants under the treatments were compared.Result The added CO2 in the atmosphere as in C2 and supplementation of LED as in L2 and L3 increased the plant height and stem girth which were shown the significantly higher average height of 88.33cm and 93cm and girth diameter of 12.00mm and 13.34mm under L2C2 and L3C2, respectively, than higher CK treatments. Of all treatments, L2C2 produced the highest contents of chlorophyll a, chlorophyll b, and total chlorophyll as well as the greatest photosynthetic rate (Pn
) that was 36.70% higher than control. Both L2C2 and L3C2 resulted in higher contents of vitamin C, soluble sugars, and soluble proteins in the chili peppers. Conclusion Supply of added CO2 and supplementation of LED light effectively improved the photosynthesis and pepper quality of the plants. The combined applications of L2 and C2 appeared particularly attractive for the local solar greenhouse chili pepper cultivation in winter.-
Keywords:
- Chili pepper /
- CO2 /
- LED lighting /
- photosynthesis /
- quality
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0. 引言
【研究意义】金线兰（Anoectochilus roxburghii）为兰科（Orchidaceae）开唇兰属（Anoectochilus）多年生草本植物，在我国南方地区分布广泛，为民间传统用药，有“药王”之称[1]，其主要药用成分包含金线莲苷、黄酮和多糖等[2−3]。金线兰栽培过程中极易受到茎腐病的危害，虽然化学防治的效果较好[4]，但生物防治因具有安全、持久、有效和对人畜无害等特点，已成为植物病害防治的重要手段[4−8]。【前人研究进展】生防木霉菌通过产生营养竞争、空间竞争、重寄生，产生抗生素等作用对病原菌产生抑制，已在数十种作物的几十种土传病害和叶部病害防治中得到广泛应用[9−10]。金线兰中有关木霉菌研究报道较少，仅见路梅等报道了应用哈茨木霉（Trichoderma harzianum）、绿色木霉（T. viride）和放线菌（Actinomycetes sp.）等3种生防菌对金线兰茎腐病致病菌尖孢镰刀菌进行拮抗作用研究，发现哈茨木霉抑菌作用最强，菌丝生长抑制率在第5天达66.7%，表明木霉应用于抑制茎腐病具有较好的开发前景[6]。木霉菌广泛存在于自然界中，除产生生物及非生物胁迫抗性外，还有促进植物生长和提高次生代谢物积累等作用[11]。胡卫丛等利用木霉菌处理水果黄瓜，发现其株高、茎粗、叶绿素含量等生长指标均有不同程度的提高，同时还能提高水果黄瓜中可溶性蛋白和可溶性糖的含量，使水果黄瓜品质明显提高[12]。董琼娥等利用木霉菌处理玫瑰，可使切花总产量提高15.0%，且AB级花占比提高48.0%[13]。吕亮雨等将哈茨木霉应用于枸杞，发现其对树体生长发育、产量的提高最为显著[14]。【本研究切入点】有关木霉菌应用对金线兰产量及品质影响的研究还有待深入探讨。【拟解决的关键问题】以福建上杭仿野生环境中种植12个月的金线兰植株为材料，分离对茎腐病病原菌具有拮抗作用的3株木霉菌，通过分析比较不同种类木霉菌的生理特性及应用于金线兰的效果，以期获得具有提高金线兰抗茎腐病能力并提高金线兰产量与金线莲苷等药用成分含量的木霉菌株，为金线兰茎腐病生物防控与绿色仿生态栽培提供菌株材料及技术参考。
1. 材料与方法
1.1 试验材料
2021年9月，于福建龙岩上杭旧县镇（25°13′56.01″E， 116°31′6.76″N，海拔高度590.1 m）选择有野生金线兰生长的竹林。将于生根培养基生长6个月的金线兰红霞[Anoectochilus roxburghii (Wall.) Lindl. cv.'Hongxia']组培苗种植于竹林，仿野生种植12个月后，采收生长健壮的植株于无菌袋内用于4 ℃保存备用。金线兰红霞组培苗保存于三明市农业科学研究院药用植物研究所，茎腐病病原物尖孢镰刀菌（Fusarium oxysporum f. sp. opuntiarum ASP01）保藏于中国普通微生物学菌种保藏中心（CGMCC），保藏编号为CGMCC No.40759。金线兰组培方法见文献[15]，ASP01菌株分离与继代方法见文献[4]。
1.2 木霉菌分离
采用组织分离法分离木霉菌株，金线兰植株仿野生种植12个月后，流水洗净，于超净台75%乙醇浸泡30 s，0.1%升汞消毒10 min，无菌水清洗2～3次，无菌条件下切成2 cm左右茎段接种于PDA培养基中，置于28 ℃，黑暗条件培养4 d，挑取菌落边缘少许菌丝至新的PDA培养基进行纯化培养，直至获得性状一致的纯化菌株。
1.3 木霉菌鉴定
1.3.1 木霉菌形态观察
纯化菌株接种于PDA中，置于25 ℃，黑暗条件培养，每日观察并记录菌落形特征并利用显微镜（Olympus BX53） 40倍物镜下观察木霉菌菌丝、分生孢子梗和孢子形态。
1.3.2 木霉菌分子鉴定
利用CTAB法提取纯化菌株DNA。利用真菌通用rDNA ITS（internal transcribed sapcer）引物 ITS1 （5′-GAGTTTGATCCTGGCTCA-3′）和ITS4（5′-TCCTCCGCTTATTGATATGC-3′）扩增ITS序列[16]，利用rpb2引物rpb2-5f （5′-GAYGAYMGWGATCAYTTYGG-3′）和rpb2-7cr （5′-CCCATRGCTTGYTTRCCCAT-3′）扩增rpb2序列[17]。20 μL PCR反应体系：2 × Taq Mix 10 μL，10 μmol·L−1上下游引物各 1 μL，模板DNA 1 μL，双蒸水补至 20 μL。PCR反应条件：94 ℃预变性5 min；95 ℃变性30 s，退火30 s，72 ℃延伸40 s，40个循环；72 ℃延伸6 min。1%琼脂糖电泳检测，回收500 bp左右ITS序列条带，1 100 bp左右rpb2序列条带，送铂尚生物技术有限公司测序。根据NCBI GenBank 数据库比对测序结果，参照文献[18]，选取一致性高及模式木霉菌株的ITS与rpb2序列为建树对象，以Protocrea farinose CPK3144菌株序列为外群，利用MEGA 11软件采用邻接法（neighbor-joining, NJ）构建进化树。
1.4 拮抗菌株对金线兰病原真菌的抑制作用
采用平板对峙培养的方法[19]测定分离菌株对尖孢镰刀菌ASP01的抑制作用。从拮抗菌和病原菌平板上打取4 mm 菌饼接种于直径为 70 mm 的PDA培养基两端，两菌饼相距 5 cm。以只接尖孢镰刀菌ASP01的平板为对照，每处理重复3次。于28 ℃，黑暗条件培养7 d后，测量菌落半径，计算抑制率。抑制率/% =[（对照组半径−处理组半径）/对照组半径]×100。
参照文献[18,20]的方法，利用显微镜（Olympus BX53） 40倍物镜下观察拍照木霉菌与尖孢镰刀菌ASP01菌株互作情况。
1.5 拮抗菌株室内防效试验
参照文献[19]的方法制备不同木霉菌孢子悬浮液（5×106孢子·mL−1），以无菌水为对照，均匀喷施于金线兰组培苗叶片上，置于铺有润湿的无菌滤纸培养皿于28 ℃、光周期14L∶10D、光合有效辐射40 μmol·m−2·s−1条件下培养7 d后，用无菌针于叶片中央两侧制造伤口，并在伤口接种尖孢镰刀菌ASP01孢子悬浮液（5×106孢子·mL−1），以5个叶片为1个处理，每个处理设置3个重复。保湿培养7、15 d后，观察并测量病斑面积，计算抑制率。抑制率/%=[（对照组面积−处理组面积） /对照组面积]× 100。
1.6 木霉菌促生作用分析
参照文献[21]的方法，以草炭土和细砂质量比为3∶1的混合土为基质，将生长6个月金线兰组培苗移栽于直径为8 cm营养杯中，置于28 ℃、光周期14L∶10D、光合有效辐射40 μmol·m−2·s−1条件下培养，每15 d喷施1次抗菌发酵液（5×106孢子·mL−1），种植6个月后测定植株生长量和SPAD值。SPAD值采用柯尼卡-美能达SPAD-502Plus仪进行测定。试验以5株为1个处理，每处理3个重复。
1.7 金线兰品质测定
金线兰多糖及黄酮含量测定采用苯酚-硫酸法与NaNO2-Al(NO3)3-NaOH显色法于赛默飞Tecan M200pro酶标仪进行测定[22]。金线莲苷含量采用高效液相色谱-蒸发光散射检测法（HPLC-ELSD)于Waters e2695 alliance高效液相色谱仪进行测定[23]。试验以5株为1个处理，每处理3个重复。
2. 结果与分析
2.1 金线兰木霉菌分离与鉴定
以于野生环境种植12个月的金线兰红霞植株为材料，通过组织分离法获得3个不重复的疑似木霉菌株，分别命名为A21B-1、A21B-2与A21E。
3个菌株在PDA培养基生长迅速，3 d可布满70 mm培养皿。A21B-1菌株菌落为绒毛状，正面初期为白色，最终变成深绿色，具有同心圆状轮纹，菌饼中央可见明显的菌丝消退现象，菌落背面为黄白色，呈放射状。显微镜下可见分生孢子梗从菌丝侧枝长出，粗短，瓶茎近球形，尖端变细，分生孢子光滑，近球形（图1 a~d）。A21B-2菌株菌落为羊毛毡状，菌落正面初期为白色，最终变成深绿色，有不规则出现的白色绒毛状突起，菌落背面为黄白色，均匀分布。显微镜下可见分生孢子梗从菌丝侧枝长出，对称生长，瓶茎呈长瓶梗状，分生孢子光滑，呈椭圆形（图1 e~h）。A21E菌株菌落为羊毛毡状，菌落正面初期为黄白色，最终变成浅绿色，菌落背面为黄白色，呈现放射状。显微镜下可见分生孢子梗从菌丝侧枝长出，较多分枝，瓶茎呈瓶梗状，分生孢子光滑，呈圆或椭圆形（图1 i~l）。根据3个菌株的形态与生长特性，初步确定其为木霉菌。
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图 1 木霉菌形态特征a～d、e～h、i～l分别为木霉菌菌株A21B-1、A21B-2与A21E接种于PDA培养7 d后的菌落形态；a、e、i为正面；b、f、 j为背面；c、g、k为分生孢子梗与瓶梗形态，d、h、l为分生孢子形态。Figure 1. Morphological characteristics of Trichoderma strainsa–d, e–h, and i–l: colony morphology of A21B-1, A21B-2, and A21E, respectively, grown on PDA for 7 d; a, e, and i: front views; b, f, and j: back views; c, g, and k: conidia stem, bottle stem; d, h and l : morphology of conidia, respectively.为进一步明确3个木霉菌株的分类，分别扩增ITS序列与rpb2并上传到NBCI获得序列号（表1）。利用NCBI BLASTn比对获得相似序列，与模式木霉菌株一并构建进化树（图2），结果显示A21B-1菌株与哈茨木霉菌株聚在一个分支。A21B-2菌株与拟康宁木霉菌株聚在一个分支，A21E菌株与T. longifialidicum 聚在一个分支。结合形态学及分子鉴定结果，3个菌株分别鉴定为哈茨木霉、拟康宁木霉及T. longifialidicum。
表 1 木霉菌序列登录号及种名Table 1. Sequence accession numbers and species of Trichoderma菌株
Strains登录号
Accession No.种名
SpeciesITS rpb2 A21B-1 ON209377 OR161371 T. harzianum A21B-2 ON209378 OR161372 T. konginggipsis A21E ON209384 OR161373 T. longifialidiucum ![]()
图 2 基于序列ITS与rpb2多基因进化树分析标记T的菌株为模式菌，其余为参考菌株。Figure 2. ITS and rpb2 sequence-based phylogenetic treeT: representative typical strains; remainders are reference strains.2.2 分离菌株对尖孢镰刀菌的抑制作用
通过平板对峙试验，3个木霉菌株均对尖孢镰刀菌ASP01表现较强的生长抑制作用（图3 a~d），培养7 d时，对ASP01菌丝的抑制率分别为75.29%、73.55%和60.02%（表2），表明这3个木霉菌株均对尖孢镰刀菌具有较强的拮抗作用。
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图 3 不同木霉菌与尖孢镰刀菌菌株ASP01对峙培养a，e：尖孢镰刀菌ASP01；b，f：A21B-1与ASP01对峙培养；c，g：A21B-2与ASP01对峙培养；d，h：A21E与ASP01对峙培养；箭头所指为木霉菌菌丝侵入ASP01菌丝并导致尖孢镰刀菌孢子不能正常发育。Figure 3. Confrontation cultures of Trichoderma strains and F. oxysporum f. sp. opponiarum ASP01a and e: F. oxysporum f. sp. opponiarum ASP01; b and f: confrontation culture of A21B-1 and ASP01; c and g: confrontation culture of A21B-2 and ASP01; d and h: confrontation culture of A21E and ASP01; arrow points to invasion of Trichoderma hyphae into ASP01 hyphae inhibiting normal development of ASP01 spores.表 2 不同木霉菌对尖孢镰刀菌株ASP01抑制效果Table 2. Inhibition effects of Trichoderma strains on F. oxysporum f. sp. pponiarum ASP01处理
Treatment病原真菌菌落直径
Colony diameter of pathogens/cm抑制率
Inhibition rates/%CK 5.41±0.08 a 0 c A21B-1 1.33±0.32 c 75.29±6.45 a A21B-2 1.43±0.40 c 73.55±7.38 a A21E 2.17±0.16 b 60.02±2.87 b 数据为平均值±标准误，同列数据后不同小字母表示0.05水平上差异显著。下同。
Data are presented as mean±SD; those with different lowercase letters on same column indicate significant difference at 0.05 level. Same for below.通过显微观察分析，可见3个木霉菌株均能侵入ASP01菌丝并导致菌丝萎缩（图3 f~h），并导致瓶梗不能正常发育，分生孢子数显著减少（图3 e~h）。
2.3 木霉菌对茎腐病的室内防效
通过于金线兰植株喷施木霉菌后接种ASP01，3个木霉菌均不同程度抑制金线兰茎腐病进程的发生，施用木霉菌并接种ASP01 7 d后，可见对照组叶片已有明显的发病症状，而接种3种不同木霉株的植株表现较强抗性，其抑制率分别达98.49%、93.42%和96.71%（表3）。接种后15 d，其防效有所下降，但A21B-1抑制率仍能达91.88%，而A21B-2与A21-E则下降至75.62%与66.41%。表明A21B-1具有较强的金线兰茎腐病抗性，可作为该病生物防治的候选菌株。
表 3 木霉菌对茎腐病室内防效Table 3. In vitro stem rot disease control by Trichoderma strains处理
Treatment接种7 d后 7 d after inoculation 接种15 d 后 15 d after inoculation 感病面积
Infected areas/mm2抑制率
Inhibition rates/%感病面积
Infected areas/mm2抑制率
Inhibition rates/%CK 354.0±90.7 0 c 995.31±55.58 0 d A21B-1 5.33±0.94 98.49±0.26 a 79.93±14.77 91.88±1.47 a A21B-2 23.3±5.73 93.42±1.62 b 242.14±38.53 75.62±3.78 b A21E 11.8±4.09 96.71±1.15 b 334.17±65.76 66.41±6.61 c 2.4 拮抗木霉菌对金线兰的促生效果
施用不同木霉菌并种植6个月后，测定金线兰植株的生长量情况。结果（表4）可见，在促进生长方面，施用3个木霉菌A21B-1、A21B-2与A21E的金线兰均在单株重、株高、茎粗、叶面积及SPAD值方面较CK显著提高。其中单株重方面，施用3株木霉菌株分别较对照提高2.52%、58.68%与58.99%；株高分别提高25.93%、38.17%和28.92%；叶面积分别增加25.43%、66.82%与59.73%。综合以上结果，在3个木霉菌中，A21B-2与A21E具有较强的促进生长作用，可作为金线兰促进生长的候选菌株。
表 4 木霉菌对金线兰促生效果Table 4. A. roxburghii growth promoted by presence of Trichoderma strains处理
Treatment株高
Plant height/
cm茎粗
Stem diameter/
mm叶数
Number of
leaves叶长
Leaf Length/
mm叶宽
Leaf width/
mm叶面积
Leaf area/
mm2叶厚
Leaf thickness/
mm根长
Root length/
cm根粗
Root diameter/
mm根数
Root numberSPAD 单株重
Single plant
weight/gCK 15.23±1.81 b 2.62±0.30 c 6.67±1.37 b 29.10±3.02 b 26.78±1.84 b 784.69±141.95 b 0.33±0.05 b 7.19±1.08 b 2.02±0.26 b 2.83±0.37 a 46.83±3.84 c 3.17±0.44 c A21B-1 19.15±3.26 a 3.05±0.40 b 7.67±1.37 ab 29.85±2.41 b 28.02±2.99 b 984.27±151.95 b 0.42±0.07 a 6.68±0.68 b 1.95±0.21 b 2.83±0.90 a 56.65±4.18 a 3.25±0.45 b A21B-2 21.02±2.05 a 3.08±0.19 b 8.33±0.47 a 39.55±3.08 a 32.95±2.41 a 1309.01 ±177.04 a0.40±0.00 a 8.93±1.20 a 2.53±0.09 a 2.33±0.47 a 50.53±4.83 b 5.03±0.62 a A21E 19.65±2.00 a 3.65±0.29 a 6.00±2.45 b 38.10±0.73 a 32.85±1.67 a 1253.43 ±87.91 a0.40±0.00 a 9.14±1.36 a 2.10±0.24 b 3.00±0.00 a 56.95±2.16 a 5.04±0.20 a 在促进次生代谢物积累方面，3个木霉菌在提高干物质含量、多糖及金线苷含量方面均有较为显著的作用（表5），特别是A21B-2，其多糖及金线苷含量较对照分别提高89.62%与11.83%，在3个木霉菌中最好，可作为促进多糖及金线莲苷成分积累的候选菌株。但在黄酮含量方面，施用3个木霉菌均未能起显著提高的作用。
表 5 木霉菌对金线兰促进次生代谢物积累效果Table 5. Secondary metabolites accumulated in A. roxburghii promoted by presence of Trichoderma strains处理
Treatment折干率
Drying rate/%多糖含量
Content of polysaccharide/(mg·g−1)黄酮含量
Content of flavone/（mg·g−1）金线莲苷含量
Content of kinsenoside/（mg·g−1）CK 11.25±0.71d 6.07±0.14 d 8.15±0.43 a 14.29±0.24 b A21B-1 12.88±0.73 cd 7.40±0.68 c 7.20±0.14 c 14.60±0.45 b A21B-2 13.91±0.59 b 11.51±0.35 a 7.43±0.24 bc 15.98±0.97 a A21E 14.58±0.01 a 8.05±0.99 b 7.76±0.78 ab 14.96±1.26 b 3. 讨论与结论
木霉菌可应用于多种作物病害的防治，并具有促进生长与改善环境的作用[18, 24−28]。金线兰易感茎腐病，其病原菌尖孢镰刀菌可在多种作物上造成严重的危害，是研究最广泛的病原菌之一[4, 29]。金线兰为地生兰类多年生植物，其生境分布呈现明显的碎片化[30]，相对气生兰类，地生兰为应对更为复杂的环境其根际共生菌群也与其他类型兰科植物存在种类与功能的显著区别[31]。本试验将金线兰组培苗种植于野生生境中，并从植株中分离出3株对尖孢镰刀菌具有拮抗作用的木霉菌株，其中菌株A21B-1为哈茨木霉，哈茨木霉在农业生产应用较为广泛，具有重要的产业化开发价值[32, 33]，在本试验中，A21B-1菌株在对峙培养试验中对金线兰茎腐病病原菌抑制率为3个木霉菌最高水平，此结果与路梅等[6]研究结果较为一致，此外，A21B-1菌株初步表现出产孢量较其他2个菌株更大的特点，具有良好的产业化开发潜力。菌株A21B-2鉴定为拟康宁木霉，此菌已从油菜[34]、药用植物黄精[35]及石斛[36]等多种植物中分离，具有抗多种细菌与真菌病害[37−38]及促生长作用[39]。在本试验中，A21B-2亦是综合表现较为优良的菌株，可在有效抑制茎腐病的同时，促进次生代谢物的积累，亦具有良好的开发潜力。A21E菌株被鉴定为T. longifialidicum，在金线兰中表现较强的促生长作用，此菌株为新近发现的类群[40]。
金线兰的药用成分包含黄酮、多糖以及甾体、苷类等多种类型[22,41−42]，随着2022年金线兰福建省食品安全地方标准颁布，金线莲苷被列为主要的理化检测指标[43]。本试验中，3个木霉菌对金线兰单株重、株高、叶面积及SPAD值的增长均有显著的影响，吕亮雨等[14]在枸杞的应用中也得到类似的结果，其增产原因与木霉菌剂提高枸杞光合作用有关，在本试验中亦观察到金线兰叶面积及SPAD值提高的现象。在提高药用成分方面，3个木霉菌在干物质含量、多糖及金线苷含量方面均较对照有显著提高，但在黄酮含量上有所降低，这可能与不同次生代谢物受到不同信号激素的调控有关。目前，有关金线兰药用成分积累机制的相关研究仍较缺乏[44−45]，木霉菌与金线兰的互作研究的开展将为揭示金线兰药用成分积累规律提供新的研究角度。
本试验结果表明，金线兰野生环境存在丰富的有益木霉菌类型等待发掘，不同木霉菌在提高抗性、促进生长以及提高次生代谢物积累方面均存在较大差异，对金线兰根际木霉菌的进一步研究具有重要的科学意义与现实意义。
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表 1 试验处理
Table 1 Treatments applied
处理
TreatmentLED光
LED lightingCO2含量
CO2 concentration/（μL·L−1）L1C1 自然光 400± 50 L1C2 自然光 800 ± 50 L2C1 R∶B=5∶1 400± 50 L2C2 R∶B=5∶1 800 ± 50 L3C1 R∶B∶W=3∶2∶1 400± 50 L3C2 R∶B∶W=3∶2∶1 800 ± 50 
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表 2 增施CO2与LED补光互作对辣椒株高、茎粗的影响
Table 2 Effect of CO2 and LED on height and stem girth of pepper plant
处理
Treament株高
Plant height/cm茎粗
Stem diameter/mmL1C1 74.66±2.02 c 9.68±0.37 c L1C2 75.67±2.18 bc 10.02±0.30 bc L2C1 78.33±2.01 bc 11.50±0.19 b L2C2 88.33±2.06 a 13.34±0.57 a L3C1 84.67±2.18 ab 10.47±0.32 bc L3C2 93.00±0.77 a 12.00±0.28 ab 注：表中同列不同字母表示不同处理之间差异显著（P<0.05）。
Note: The different letters on a same column indicate significant differences between treatments (P<0.05).
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表 3 增施CO2与LED补光互作对叶绿素含量的影响
Table 3 Effect of increased CO2 and supplemental LED on chlorophyll content of pepper plant
处理
Treament叶绿素a
Chlorophyll a/(mg·g−1)叶绿素b
Chlorophyll b/(mg·g−1)总叶绿素
Chlorophyll/(mg·g−1)叶绿素a/b
Chlorophyll a/bL1C1 0.89±0.05 c 0.12±0.02 c 1.02±0.08 c 7.81±0.02 a L1C2 1.07±0.03 bc 0.23±0.03 b 1.29±0.03 b 4.93±0.01 b L2C1 1.14±0.06 b 0.20±0.01 bc 1.34±0.06 b 5.72±0.02 b L2C2 1.44±0.05 a 0.34±0.01 a 1.77±0.03 a 4.33±0.02 c L3C1 1.04±0.08 bc 0.25±0.02 ab 1.29±0.10 b 4.24±0.01 b L3C2 1.13±0.05 b 0.29±0.04 ab 1.42±0.09 b 4.06±0.05 ab
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表 4 增施CO2与LED补光互作对辣椒光合作用的影响
Table 4 Effect of increased CO2 and supplemental LED on photosynthesis of pepper plant
处理Treament 净光合速率Pn/(μmol·m−2·s−2 ) 胞间二氧化碳浓度Ci/(μmol·mol−1) 气孔导度Gs/(mmo·m−2·s−2 ) 蒸腾速率Tr/(mmol·m−2·s−2） L1C1 13.00±0.13b 0.20±0.01b 279.28±32.81b 3.19±0.07b L1C2 13.63±1.36a 0.33±0.07ab 318.00±9.23ab 3.56±0.51b L2C1 14.45±1.72a 0.27±0.04ab 304.67±34.25ab 4.06±0.01ab L2C2 17.77±0.89a 0.50±0.10a 340.45±14.87a 4.59±0.18a L3C1 13.57±0.75a 0.34±0.04ab 340.92±23.38a 4.01±0.28ab L3C2 16.64±0.47a 0.51±0.10a 347.86±14.25a 4.31±0.14a
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表 5 增施CO2与LED补光互作对辣椒品质的影响
Table 5 Effect of increased CO2 and supplemental LED on chili pepper quality
处理
Treament维生素C含量
Content of VC/
(mg·g−1)可溶性糖含量
Content of
soluble sugar/
%可溶性蛋白含量
Content of
soluble protein/
(mg·g−1)L1C1 0.17±0.01 d 0.96±0.05 c 1.35±0.11 c L1C2 0.28±0.01 c 1.02±0.03 c 1.37±0.21 c L2C1 0.31±0.05 bc 1.39±0.09 bc 1.72±0.01 b L2C2 0.43±0.01 a 1.73±0.21 a 2.31±0.04 a L3C1 0.37±0.04 b 1.57±0.21 ab 1.87±0.01 b L3C2 0.39±0.04 ab 1.78±0.04 a 2.10±0.02 ab
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