Genome-wide Identification and Transcript Response to Sclerotinia of F-BOX Genes in Chinese Cabbage
-
摘要:目的 筛选参与菌核病应答反应的F-BOX基因，为大白菜抗菌核病基因的功能研究及抗病品种的选育提供基础。方法 基于核盘菌侵染大白菜转录组测序数据，对大白菜F-BOX基因家族进行鉴定，进行亚细胞定位、染色体定位、保守结构域等生物信息学分析。分析F-BOX基因在核盘菌侵染下的差异表达，并采用q-PCR技术检测F-BOX基因在0 h和36 h的表达情况。结果 共鉴定32个BraF-BOX基因，分子量介于34751.13～105942.22 Da；亚细胞定位表明，26个F-BOX基因定位在细胞核和细胞质中，6个定位在叶绿体中；系统进化树分析将BraF-BOX分为4个亚族；基因结构分析结果表明，每个BraF-BOX家族成员均含有Motif 1，序列中均含有外显子；组织特异性表达分析结果表明在不同大白菜部位，表达量有差异；在核盘菌处理36 h时，q-PCR检测6个基因的相对表达量趋势与转录组数据一致，其中Bra037120、Bra011427、Bra009835等3个基因表达上调，核盘菌侵染时间越长，表达量越大。结论 综合BraF-BOX基因生物信息学及转录组数据分析，Bra037120、Bra011427、Bra009835基因可能参与大白菜菌核病抗性功能，为后续基因功能研究提供研究基础。Abstract:Objective F-BOX genes responsible for the resistance of Brassica rapa to sclerotinia were investigated.Method Suspected members of F-BOX family were identified at the transcriptome level to identify their subcellular localization, chromosomal localization, and conserved domains as well as expressions by q-PCR under artificial induction of sclerotinia.Result There were 32 BraF-BOX genes classified into 4 subgroups with the relative molecular masses varying from 34 751.13 Da to 105 942.22 Da. The predicted subcellular localizations of 26 F-BOX were in the nucleus and cytoplasm, and 6 in the chloroplast. The genetic structures of all 32 genes contained Motif 1 and exon in the DNA sequences with expressions differed in different parts of Chinese cabbage. The relative expressions by q-PCR of 6 genes agreed with the transcriptome data at 36 h. The expressions of Bra037120, Bra011427, and Bra009835 were upregulated and increased with prolonged induction.Conclusion The bioinformatics and transcriptome data analysis on the BraF-BOX genes suggested that Bra037120, Bra011427, and Bra009835 were potentially associated with the sclerotinia resistance of Chinese cabbage.
-
Keywords:
- Chinese cabbage /
- F-BOX gene family /
- sclerotinia stem rot /
- gene expression
-
0. 引言
【研究意义】开花时间是作物重要的农艺性状之一[1]，对植物开花时间的调控是植物繁殖的核心问题[2]。在特定的时间开花是植物由营养生长转变为生殖生长的关键步骤，是植物生殖产生后代的重要节点[3]。玉米（Zea mays L.）起源于拉丁美洲，是世界主要粮食作物之一，在农业生产中有极其重要的地位[4]。玉米是短日照作物[5]，一些热带、亚热带玉米品种（系）在非短日照条件下种植时常常出现花期不遇甚至无法进入生殖生长等现象，严重限制了玉米育种的进展[6-11]。因此了解玉米的开花调控机理对于玉米的研究和改良具有十分重要的意义。植物由营养生长到生殖生长的转变，与开花基因的表达息息相关[12]。要清晰玉米开花的分子机理，首先要研究开花调控基因的作用机制。本研究以与开花相关的ZmCOL3基因为分析对象，用生物信息学的方法分析其所编码蛋白的结构，预测该基因在玉米开花及其可能参与的调控网络，对ZmCOL3基因的潜在功能及其在玉米开花调控中作用机制的进一步研究具有重要意义。【前人研究进展】在众多已报道的开花调控基因中，有一类基因具有多效性，不仅能直接调控植物早花或晚花，还具有调控产量及抗逆等生物学功能[13]。由于这类基因都含有CCT结构域，故被称为CCT 结构域基因[14]。目前已有诸多研究证实CCT基因家族影响植物开花，拟南芥中的开花关键基因CO、TOC1等均属于CCT基因家族。CCT基因家族的成员较多，目前已知玉米中含有80多个CCT基因家族成员[13]，功能也都不尽相同。根据所含结构域的不同CCT家族可以分为CMF、COL、PRR和TIFY四个亚家族[4]，其中COL亚家族成员的结构特征为含有1个CCT结构域和1-2个B-box锌指结构域[15,16]。COL蛋白是一类植物特异的转录因子，通常情况下，植物感受光周期诱导的昼夜节律变化与开花调控都需要COL蛋白的参与[17,18]。不同COL基因的CCT结构域序列较为保守，B-box结构域的差异比较明显，CCT结构域约由43个保守的氨基酸组成，一般位于蛋白质的C端，是DNA结合域，具有核定位、核蛋白运输及调节基因转录的功能[19,20]，B-box结构域在N端，是蛋白互作的区域，在COL蛋白与卷曲螺旋蛋白相互作用过程中发挥重要作用[21,22]。COL3是COL亚家族的一个重要成员，在拟南芥中AtCOL3是光形态发生的正向调节因子，在COP1酶的下游发挥作用[23]。水稻中的OsCO3基因含有1个B-box及1个CCT结构域，参与了水稻的光周期开花途径，是短日照条件下的开花抑制因子[24]。玉米中发现的ZmCOL3基因是水稻组成型开花抑制因子OsCOL4的同源基因，可以通过调控ZmCCT基因表达参与玉米光周期途径，进而调控玉米的开花期[15,25]。【本研究切入点】ZmCOL3基因的克隆虽然已经完成，但其作为转录因子应行使的多重功能还未被确定，在生物信息学方面仍有很多值得挖掘的地方，可为该基因的蛋白功能研究提供思路。【拟解决的关键问题】本研究用生物信息学方法对玉米ZmCOL3基因编码的蛋白质序列进行了深入分析，获得了其编码蛋白的理化性质、保守结构域、二级结构、信号肽、跨膜结构以及亚细胞定位的预测结果，通过同源建模的方法预测ZmCOL3基因编码蛋白的三级结构，对ZmCOL3基因的启动子区域所包含的顺式作用元件进行了分析，利用检索得到的表达数据进行该基因的组织表达分析。本研究预测ZmCOL3基因可能具备的功能，为该基因在玉米开花调控及其他潜在功能的研究奠定基础。
1. 材料和方法
在NCBI网站通过登录号NP_001147679查询并下载ZmCOL3基因的序列信息。使用ProtParam（http://web.expasy.org/protparam/）进行该基因编码蛋白序列的理化性质分析；使用NCBI的保守结构域数据库（CDD-search）（https://www.ncbi.nlm.nih.gov/Structure/bwrpsb/bwrpsb.cgi）对ZmCOL3的蛋白序列进行保守结构域的查找；在NPS@:HNNsecondarystructureprediction（https://npsa-prabi.ibcp.fr/cgi-bin/npsa_automat.pl?page=/NPSA/npsa_hnn.html）网站预测该基因编码蛋白质的二级结构；通过SSWISS MODEL（http://swissmodel.expasy.org/）中的同源建模预测ZmCOL3基因编码蛋白的三级结构；使用TMHMM（http://www.cbs.dtu.dk/services/TMHMM/）进行跨膜结构域预测；在SignalP（http://www.cbs.dtu.dk/services/SignalP/）进行信号肽分析；利用Plant-mPLocserver（http://www.csbio.sjtu.edu.cn/cgi-bin/PlantmPLoc.cgi）进行亚细胞定位预测；使用PlantCARE（http://bioinformatics.psb.ugent.be/webtools/plantcare/html/）网站进行启动子的顺式作用元件分析；通过MaizeGDB数据库（https://www.maizegdb.org/）检索获得ZmCOL3基因在玉米的种子、初生根、节间、叶、雌穗、和雄穗中的表达数据，用Excel绘制基因在不同组织中的表达图。
2. 结果与分析
2.1 ZmCOL3基因编码蛋白的理化性质分析
使用在线软件对ZmCOL3基因所编码蛋白序列进行分析，结果表明该基因所编码蛋白的分子式为C1530H2376N452O482S18，相对分子质量为35.39 kD，理论等电点为5.04，属于酸性蛋白；该基因共编码335个氨基酸，氨基酸组分如图1所示，含量最高的为A（丙氨酸），共68个，占总体的20.29%，在该蛋白中带负电荷的氨基酸（Asp+Glu）数量为51，带正电荷的氨基酸（Arg+Lys）数量为34，脂肪族氨基酸指数为69.04；平均亲水性系数为−0.241，属于亲水性蛋白，不稳定系数为53.72，该蛋白是不稳定蛋白。
![]()
图 1 玉米ZmCOL3基因的蛋白组分注：A：丙氨酸；E：谷氨酸；R：精氨酸；P：脯氨酸；G：甘氨酸；S：丝氨酸；D：天冬氨酸；L：亮氨酸；V：缬氨酸；C：半胱氨酸；F：苯丙氨酸；H：组氨酸；K：赖氨酸；Y：酪氨酸；I：异亮氨酸；T：苏氨酸；M：蛋氨酸；N：天冬酰胺；Q：谷氨酰胺；W：色氨酸；O：吡咯赖氨酸；U：硒半胱氨酸；B、X、Z：酸水解后不确定的氨基酸Figure 1. Composition of maize ZmCOL3Note: A: Alanine; E: Glutamic acid; R: Arginine; P: Proline; G: Glycine; S: Serine; D: Aspartic acid; L: Leucine; V: Valine; C: Cysteine; F: Phenylalanine; H: Histidine; K: Lysine; Y: Tyrosine; I: Isoleucine; T: Threonine; M: Methionine; N: Asparagine; Q: Glutamine; W: Tryptophan; O: Pyrrolysine; U: Selenocysteine; B, X, and Z: Uncertain amino acids after acid hydrolysis.2.2 ZmCOL3基因编码蛋白的保守结构域分析
使用NCBI的保守结构域数据库（CDD-search）对ZmCOL3的氨基酸序列进行保守结构域的查找。如图2中的结果显示，ZmCOL3基因所编码蛋白含有1个CCT结构域和1个B-box锌指结构域，证明了其作为CCT基因家族中的COL亚族所含有的蛋白结构特征。
2.3 ZmCOL3基因编码蛋白的二级结构预测
如图3所示ZmCOL3蛋白质的二级结构主要由α螺旋和无规则卷曲组成，含有少量的延伸链和β转角。其中占比最大的为无规则卷曲，有184个氨基酸，占54.93%；其次是α螺旋（108个氨基酸），占32.24%；占比最少的是β转角，仅有9个氨基酸，只在靠近N端和C端的位置有所分布，主要集中在60～70和235～240这2个区间内。
2.4 ZmCOL3
基因编码蛋白的三级结构预测 使用SWISS-MODEL同源建模的方法进行三级结构预测，结果如图4所示。QMEAN值为−0.33，相似度为64.15%，表明该模型与2020年报道的DNA结合CCT/NF-YB/YC复合物的晶体结构模型[26]相似性较高，并且与前文二级结构预测结果相符，以α螺旋和无规则卷曲为主体形成三级结构。
2.5 ZmCOL3
基因编码蛋白跨膜结构及信号肽分析 ZmCOL3基因编码蛋白跨膜结构预测结果如图5所示，该基因编码蛋白没有形成跨膜螺旋，即该蛋白不含有跨膜结构域，且主要分布于细胞膜外，表明该蛋白为非跨膜蛋白。如图6所示，玉米COL3基因编码蛋白前70个氨基酸中不存在典型的信号肽趋势，CS缺陷概率为0，SP（Sec/SPI）概率仅为0.004，相比之下，Other的概率为0.996，表明该基因所编码蛋白不含有信号肽。
2.6 ZmCOL3
基因编码蛋白的亚细胞定位分析 将获取的玉米ZmCOL3基因编码序列提交到Plant-mPLoc网站进行亚细胞定位预测，结果如图7所示，预测定位在细胞核内。而跨膜结构域预测该蛋白为膜外，推测该基因可能在合成后受到某些因子的作用，在细胞核内发挥作用。
2.7 ZmCOL3启动子顺式作用元件分析
从maize sequence网站获取ZmCOL3基因ATG上游2300 bp序列，提交到PlantCARE网站进行顺式作用元件分析，结果如表1所示。该基因启动子除了含有基本的顺式作用元件，如TATA-box、CAAT-box等，还含有脱落酸（ABA）响应元件、光响应元件、茉莉酸甲酯（MeJA）响应元件等，表明该基因可能在多重反应调控网络中发挥作用，受到光照和多种激素调控。
表 1 ZmCOL3启动子顺式作用元件分析Table 1. Analysis on cis acting elements of ZmCOL3 promoter元件名称
Element name位置
Site功能
FunctionAAGAA-motif −222 胁迫响应 stress response element A-box −718，−768，−789，+1230，+1251，−1773 顺式作用调控元件 cis-acting regulatory element ABRE +1223，+1702，−2059，+2060，+2158 脱落酸响应顺式作用元件
cis-acting element involved in the abscisic acid responsivenessACE +54 光响应顺式作用元件
cis-acting element involved in light responsivenessARE +686，+959 厌氧诱导必需的顺式作用元件
cis-acting regulatory element essential for the anaerobic inductionCAAT-box −6，−142，+283，+600，−946，+1018，−1031等 启动子和增强子区的共同顺式作用元件
common cis-acting element in promoter and enhancer regionsCAT-box −350 与分生组织表达相关的顺式作用元件
cis-acting regulatory element related to meristem expressionCGTCA-motif +860，+1215 茉莉酸甲酯响应的顺式作用元件
cis-acting regulatory element involved in the MeJA-responsivenessDRE core −894 ABRE的耦合功能元件 funtions as a coupling element of ABRE ERE −1299 乙烯响应元件 ethylene-responsive element GATA-motif +1023 光响应元件的一部分 part of a light responsive element G-box −22，−316，−1701，−1222，−2059 光响应顺式作用元件
cis-acting regulatory element involved in light responsivenessGC-motif −592 与缺氧特异性诱导相关的增强子类元件
enhancer-like element involved in anoxic specific inducibilityI-box +971 光响应元件的一部分 part of a light responsive element JERE +900 JA和诱导子响应 JA and elicitor responsive LTR −764 低温响应的顺式作用元件
cis-acting element involved in low-temperature responsivenessMYC −1279 茉莉酸甲酯响应的顺式作用元件
cis-acting regulatory element involved in the MeJA-responsiveO2-site +546，−1824 玉米醇溶蛋白调控的顺式作用元件
cis-acting regulatory element involved in zein metabolismP-box −293 赤霉素响应元件 gibberellin-responsive element Sp1 +167，−583，−903，−2157 光响应元件 light responsive element STRE −235，−329，+865，−1080，+1242，−2053，−2076 热休克、渗透胁迫、低pH值、营养缺乏引起的活化
activation by heat shock, osmotic stress, low pH, nutrient starvationTATA-box −107，+110，−178，−181，+182，+802，+917等 转录起始点−30左右的核心启动子元件
core promoter element around −30 of transcription startTCA-element +195，−259 水杨酸响应的顺式作用元件
cis-acting element involved in salicylic acid responsivenessTC-rich repeats −1912 防御和应激响应的顺式作用元件
cis-acting element involved in defense and stress responsivenessTCT-motif +475 光响应元件的一部分 part of a light responsive element TGACG-motif −860，−1215 茉莉酸甲酯响应的顺式作用元件
cis-acting regulatory element involved in the MeJA-responsivenessTGA-element −446 生长素响应元件 auxin-responsive element W box −772 植物特异性转录调节因子WRKY的结合位点
binding sites for the WRKY plant-specific transcriptional regulatorsWUN-motif +982 创伤响应元件 wound-responsive element 2.8 ZmCOL3
基因在玉米不同组织中的表达 下载获得了ZmCOL3基因在玉米的种子、初生根、节间、叶、雌穗和雄穗6个组织部位中的表达数据。分析结果如图8所示，ZmCOL3基因在玉米的叶片中表达量最高，雄穗中的表达量次之，在种子中该基因表达量最低，总体上看ZmCOL3基因在叶片中的表达量显著高于其他组织，其余5个不同组织中的表达量差异较小。
![]()
图 8 ZmCOL3基因在玉米不同组织部位的表达情况 注：不同小写字母表示差异显著性（P＜0.05）。Figure 8. Expressions of ZmCOL3 in maize tissuesNote: Different lowercase letters indicate significant difference at P＜0.05.3. 讨论与结论
玉米起源于美洲大陆，在人类的长期驯化和自然选择下，现今广泛种植于世界各地，并集粮、饲、经三种用途于一体，具有很大的开发潜力[27]。但由于玉米的光周期敏感性导致热带、亚热带的玉米种质资源在长日照地区无法正常完成生命周期，限制了现代玉米育种的创新和进步。要改变这一现状，首先要清晰玉米的开花调控机制。有研究表明在玉米开花过程中，ZmCOL3的作用主要是通过反式激活调控玉米开花的关键基因之一ZmCCT的转录，或者通过干扰生物钟来抑制玉米开花[4]，该基因是玉米开花调控网络中不可忽视的一环。本研究利用生物信息学方法对ZmCOL3基因所编码蛋白质的结构和功能进行预测和分析，能进一步挖掘和确认该基因的功能和特点，也为ZmCOL3基因功能的深入研究提供思路。
对ZmCOL3基因所编码的蛋白质序列进行分析发现ZmCOL3基因共编码335个氨基酸，理化性质分析结果显示ZmCOL3蛋白相对分子质量为35.39 kD，理论等电点为5.04，属于酸性蛋白，具有亲水性和不稳定性，没有信号肽和跨膜结构域。ZmCOL3蛋白包含2个保守结构域，分别是CCT结构域和B-box锌指结构域，证明ZmCOL3是CCT家族的成员，具备COL亚族的基本特征。CCT家族基因能影响植物开花，部分基因参与到生物钟的调控，ZmCOL3作为该家族成员之一，很可能具备玉米开花调控的相关功能，这与金敏亮[15]发现ZmCOL3是玉米开花抑制子的研究结果相吻合。亚细胞定位预测该蛋白在细胞核中，这可能是由于ZmCOL3蛋白所含有的CCT结构域具有核定位的功能[28]。该蛋白的二级结构主要由无规则卷曲组成，其次是α螺旋，还含有少量的延伸链和β转角。通过同源建模对其蛋白三级结构进行预测，QMEAN值为−0.33，同源性高达64.15%。对该基因的启动子顺式作用元件分析发现其含有光响应元件，这一特点与COL家族基因作为光周期途径主要调节因子的功能相符，同时含有脱落酸（ABA）响应元件、茉莉酸甲酯（MeJA）响应元件等多种激素响应元件，表明该基因可能受到多种激素调控，暗示其可在多重反应调控网络中发挥作用。ZmCOL3基因在玉米的不同组织中有明显的差异表达，在玉米的叶片中表达量最高，在种子中该基因表达量最低，该结果与果天宇等[25]对ZmCOL3启动子的组织特异性分析结果存在差异，推测为物种间启动子片段的置换所造成。
本文通过生物信息学方法对玉米ZmCOL3基因编码蛋白的性质、亚细胞定位、启动子顺式作用元件及在不同组织间的表达等方面进行分析，可以为后续研究该基因的功能及参与的调控通路提供参考。
-
![]()
图 1 大白菜和拟南芥F-BOX家族进化树
Bra：大白菜；At：拟南芥。
Figure 1. Unrooted phylogenetic tree of F-BOX family between B. rapa and A. thaliana
Bra: B. rapa; At: Arabidopsis thaliana.
![]()
图 3 大白菜F-BOX基因家族的进化树和保守基序
Figure 3. Phylogenetic relationships and motif of F-BOX family in B. rapa
![]()
图 5 大白菜F-BOX基因家族的进化树和基因结构
Figure 5. Phylogenetic relationships and gene structure of F-BOX family in B. rapa
![]()
图 6 F-BOX基因在大白菜不同组织中的表达模式
Figure 6. Expressions of F-BOX in different tissues of B. rapa
![]()
图 7 BraF-BOX在核盘菌诱导下的表达分析
Figure 7. Expressions of BraF-BOX in response to sclerotinia induction
![]()
图 8 BraF-BOX基因核盘菌诱导表达的qRT-PCR验证
Figure 8. Expressions of BraF-BOX in response to sclerotinia induction by qRT-PCR
表 1 荧光定量PCR引物
Table 1 Primers for RT q-PCR
基因名称
Gene name基因序列（5′-3′）
Primer sequence (5′-3′)Bra037120 GTGCGTTGAGGAAGTTCTGTAT TCTCTTAGCCATTCTCCAATCTCT Bra003518 ATGATGCGTTGGTAGCGATT CATCCAGTGGCTCTAGTGTTAG Bra009835 CTCCTCTGCCATCATCATCAAC CATCCGTCACTCCGTTCAATC Bra011427 CGTATCACAATCGCTTCCAACT GGCATCCACCATCATCACTG Bra011207 GACATCTTCTCACGCCTTAGC TCGGGAATCCACCAGTTGAT Bra010279 GGAAGTCAACGACGAAGGAG ACGGTTAGCCGTGAGAAGAT 
下载: 导出CSV
表 2 大白菜F-BOX家族基因理化性质
Table 2 Physiochemical properties of F-BOX family genes in B. rapa
基因名称
Gene name理论等电点
pI分子量
Molecular weight/Da氨基酸大小
Amino acids脂肪系数
Aliphatic index不稳定系数
Instability index亲水性
GRAVY亚细胞定位
Subcellular locationBra011427 5.16 72453.74 660 105.06 52.40 0.168 细胞核 Nuclear Bra011207 5.80 35574.12 310 91.81 50.55 −0.093 细胞质 Cytoplasmic Bra029994 8.81 55946.13 511 99.96 43.48 0.002 细胞质 Cytoplasmic Bra036542 8.34 65257.97 616 99.66 43.79 0.114 细胞核 Nuclear Bra016754 6.17 66444.72 590 97.85 48.47 −0.091 细胞质 Cytoplasmic Bra036607 8.36 70484.33 639 113.35 32.68 0.137 细胞核 Nuclear Bra010279 5.93 34751.13 301 84.85 54.23 −0.327 细胞质 Cytoplasmic Bra017245 5.53 105942.22 949 105.16 44.32 0.077 细胞核 Nuclear Bra005669 8.73 72644.85 668 109.31 36.41 0.158 细胞核 Nuclear Bra029656 8.02 43507.11 395 103.11 41.00 0.058 细胞质 Cytoplasmic Bra009931 8.58 70575.49 640 114.75 34.01 0.142 细胞质 Cytoplasmic Bra003692 6.83 39588.79 359 98.58 44.58 0.020 细胞质 Cytoplasmic Bra032213 8.78 56034.25 514 98.68 50.56 0.016 叶绿体 Chloroplst Bra029367 8.26 44895.2 411 102.92 31.44 0.037 叶绿体 Chloroplst Bra009671 6.26 43986.92 405 104.22 34.75 0.077 细胞质 Cytoplasmic Bra008461 7.41 52042.84 467 112.44 35.06 0.131 细胞核 Nuclear Bra034254 7.29 65953.34 622 104.08 42.07 0.187 细胞核 Nuclear Bra024055 5.87 34885.23 304 84.90 45.33 −0.276 细胞核 Nuclear Bra034551 6.18 97726.55 890 107.15 47.88 0.179 细胞质 Cytoplasmic Bra015699 7.45 39102.24 354 97.51 42.73 −0.012 细胞核 Nuclear Bra016422 7.42 38869.11 353 97.54 42.43 0.038 细胞质 Cytoplasmic Bra012785 8.75 67864.12 632 104.32 41.69 0.150 叶绿体 Chloroplst Bra032954 6.61 64664.61 575 96.31 46.97 −0.077 细胞核 Nuclear Bra014568 5.25 74292.77 666 93.27 34.90 −0.176 细胞核 Nuclear Bra000604 5.54 67952.33 607 87.23 54.69 −0.101 叶绿体 Chloroplst Bra037324 5.02 68165.97 619 102.23 38.77 −0.060 细胞核 Nuclear Bra037120 8.20 56893.49 526 92.30 38.63 −0.103 叶绿体 Chloroplst Bra003518 7.94 66765.54 594 95.81 51.87 −0.014 细胞核 Nuclear Bra009835 8.41 65245.08 622 99.97 44.73 0.166 细胞核 Nuclear Bra000842 5.57 65632.15 586 99.13 43.70 −0.032 细胞质 Cytoplasmic Bra026953 6.35 65169.16 578 95.83 45.94 −0.118 细胞核 Nuclear Bra034191 8.14 66378.14 585 96.46 47.23 −0.117 叶绿体 Chloroplst
下载: 导出CSV
-
[1] 孙叶烁, 郝玲玉, 张杰, 等. 大白菜菌核病抗性鉴定方法研究 [J]. 西北农林科技大学学报(自然科学版), 2019, 47(12):123−129. DOI: 10.13207/j.cnki.jnwafu.2019.12.015 SUN Y S, HAO L Y, ZHANG J, et al. Identification method of resistance to Sclerotinia in Chinese cabbage [J]. Journal of Northwest A & F University (Natural Science Edition), 2019, 47(12): 123−129.(in Chinese) DOI: 10.13207/j.cnki.jnwafu.2019.12.015
[2] KUMAR A, PAIETTA J V. The sulfur controller-2 negative regulatory gene of Neurospora crassa encodes a protein with beta-transducin repeats [J]. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America, 1995, 92(8): 3343−3347. DOI: 10.1073/pnas.92.8.3343
[3] BAI C, SEN P, HOFMANN K, et al. SKP1 connects cell cycle regulators to the ubiquitin proteolysis machinery through a novel motif, the F-box [J]. Cell, 1996, 86(2): 263−274. DOI: 10.1016/S0092-8674(00)80098-7
[4] KIPREOS E T, PAGANO M. The F-box protein family [J]. Genome Biology, 2000, 1(5): REVIEWS3002.
[5] MO F L, ZHANG N, QIU Y W, et al. Molecular characterization, gene evolution and expression analysis of the F-box gene family in tomato (Solanum lycopersicum) [J]. Genes, 2021, 12(3): 417. DOI: 10.3390/genes12030417
[6] GAGNE J M, DOWNES B P, SHIU S H, et al. The F-box subunit of the SCF E3 complex is encoded by a diverse superfamily of genes in Arabidopsis [J]. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America, 2002, 99(17): 11519−11524. DOI: 10.1073/pnas.162339999
[7] JAIN M, NIJHAWAN A, ARORA R, et al. F-box proteins in rice. genome-wide analysis, classification, temporal and spatial gene expression during panicle and seed development, and regulation by light and abiotic stress [J]. Plant Physiology, 2007, 143(4): 1467−1483. DOI: 10.1104/pp.106.091900
[8] JIA F J, WU B J, LI H, et al. Genome-wide identification and characterisation of F-box family in maize [J]. Molecular Genetics and Genomics, 2013, 288(11): 559−577. DOI: 10.1007/s00438-013-0769-1
[9] ZHANG S L, TIAN Z L, LI H P, et al. Genome-wide analysis and characterization of F-box gene family in Gossypium hirsutum L [J]. BMC Genomics, 2019, 20(1): 993. DOI: 10.1186/s12864-019-6280-2
[10] JIA Q, XIAO Z X, WONG F L, et al. Genome-wide analyses of the soybean F-Box gene family in response to salt stress [J]. International Journal of Molecular Sciences, 2017, 18(4): 818−835. DOI: 10.3390/ijms18040818
[11] 崔浩然. 苹果基因组中F-box基因家族的鉴定及分析[D]. 泰安: 山东农业大学, 2015. CUI H R. Genome-wide characterization and analysis of F-box protein-encoding genes in the Malus domestica genome[D]. Taian: Shandong Agricultural University, 2015. (in Chinese)
[12] WANG G M, YIN H, QIAO X, et al. F-box genes: Genome-wide expansion, evolution and their contribution to pollen growth in pear (Pyrus bretschneideri) [J]. Plant Science, 2016, 253: 164−175. DOI: 10.1016/j.plantsci.2016.09.009
[13] ABD-HAMID N A, AHMAD-FAUZI M I, ZAINAL Z, et al. Diverse and dynamic roles of F-box proteins in plant biology [J]. Planta, 2020, 251(3): 68. DOI: 10.1007/s00425-020-03356-8
[14] SCHUMANN N, NAVARRO-QUEZADA A, ULLRICH K, et al. Molecular evolution and selection patterns of plant F-box proteins with C-terminal kelch repeats [J]. Plant Physiology, 2011, 155(2): 835−850. DOI: 10.1104/pp.110.166579
[15] XU G X, MA H, NEI M, et al. Evolution of F-box genes in plants: Different modes of sequence divergence and their relationships with functional diversification [J]. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America, 2009, 106(3): 835−840. DOI: 10.1073/pnas.0812043106
[16] NAVARRO-QUEZADA A, SCHUMANN N, QUINT M. Plant F-box protein evolution is determined by lineage-specific timing of major gene family expansion waves [J]. PLoS One, 2013, 8(7): e68672. DOI: 10.1371/journal.pone.0068672
[17] CAO Y F, YANG Y Y, ZHANG H J, et al. Overexpression of a rice defense-related F-box protein geneOsDRF 1 in tobacco improves disease resistance through potentiation of defense gene expression [J]. Physiologia Plantarum, 2008, 134(3): 440−452. DOI: 10.1111/j.1399-3054.2008.01149.x
[18] PIISILÄ M, KECELI M A, BRADER G, et al. The F-box protein MAX2 contributes to resistance to bacterial phytopathogens in Arabidopsis thaliana [J]. BMC Plant Biology, 2015, 15: 53. DOI: 10.1186/s12870-015-0434-4
[19] 魏春茹, 孟钰玉, 范润侨, 等. 小麦F-box/Kelch类基因TaFKOR23的抗逆相关表达模式及分子互作蛋白鉴定 [J]. 植物遗传资源学报, 2020, 21(3):695−705. DOI: 10.13430/j.cnki.jpgr.20190626002 WEI C R, MENG Y Y, FAN R Q, et al. Stress-related expression profile of F-box/kelch gene TaFKOR23 in wheat and molecular characterization of the interacting target protein [J]. Journal of Plant Genetic Resources, 2020, 21(3): 695−705.(in Chinese) DOI: 10.13430/j.cnki.jpgr.20190626002
[20] KIM J, LEE J, CHOI J P, et al. Functional innovations of three chronological mesohexaploid Brassica rapa genomes [J]. BMC Genomics, 2014, 15(1): 606. DOI: 10.1186/1471-2164-15-606
[21] BELKHADIR Y, SUBRAMANIAM R, DANGL J L. Plant disease resistance protein signaling: NBS–LRR proteins and their partners [J]. Current Opinion in Plant Biology, 2004, 7(4): 391−399. DOI: 10.1016/j.pbi.2004.05.009
[22] SUN J M, LI L T, WANG P, et al. Genome-wide characterization, evolution, and expression analysis of the leucine-rich repeat receptor-like protein kinase (LRR-RLK) gene family in Rosaceae genomes [J]. BMC Genomics, 2017, 18(1): 763. DOI: 10.1186/s12864-017-4155-y
-
期刊类型引用(0)
其他类型引用(2)
计量
- 文章访问数: 390
- HTML全文浏览量: 220
- PDF下载量: 13
- 被引次数: 2
