Soil Microbiome at Phyllostachys edulis Forest Affected by Application of Bioagent
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摘要:目的 探究复合微生物菌剂[产气肠杆菌（Enterobacter aerogenes）CT-B09-2、解淀粉芽孢杆菌（Bacillus amyloliquefaciens）JL-B06和乙酸钙不动杆菌（Acinetobacter calcoaceticus）WYS-A01-1]对毛竹土壤细菌群落结构和多样性的影响。方法 以毛竹（Phyllostachys edulis）实生幼苗为研究对象，采用灌根的方式施用复合微生物菌剂，30 d后采集毛竹幼苗根际与非根际土壤样本，测定土壤理化性质，提取土壤总DNA并进行16S rRNA高通量测序，分析复合微生物菌剂对土壤细菌群落结构和多样性的影响。结果 复合微生物菌剂可以有效提升土壤中速效磷的含量，调控土壤pH，提高根际土壤中物质代谢和碳化合物分解相关的功能活性。毛竹根际与非根际土壤共检测出26门、65纲、158目、253科、448属、674种微生物，主要优势菌门包括变形菌门 Proteobacteria、拟杆菌门 Firmicutes、放线菌门 Actinobacteriota、酸杆菌门 Acidobacteriota、绿弯菌门 Chloroflexi等。施用复合微生物菌剂后，毛竹根际土壤微生物群落物种数目显著上升，非根际土壤样本无显著变化。结论 复合微生物菌剂可以调节土壤矿质元素，改善土壤pH，调控细菌微生物群落组成。Abstract:Objective Effect of application of a microbial agent on the microbiome in soil at a Phyllostachys edulis forest was analyzed.Method In a P. edulis forest, a microbial solution of Enterobacter aerogenes CT-B09-2, Bacillus amyloliquefaciens JL-B06, and Acinetobacter calcoaceticus WYS-A01-1 was applied by root irrigation onto the soil around the seedlings. Rhizosphere and non-rhizosphere soil samples at the spots were collected 30 d after the application for physical and chemical analyses. Total DNA in soil was extracted, and 16S rRNA high-throughput sequencing performed to dissect the microbial community structure and diversity.Results The applied bioagent effectively increased the available phosphorus, regulated the pH, and improved the functional activities related to material metabolism and decomposition of carbon compounds in the rhizosphere soil. There were 26 phyla, 65 classes, 158 orders, 253 families, 448 genera, and 674 species detected in the soil samples with Proteobacteria, Firmicutes, Actinobacteriota, Acidobacteriota, and Chloroflexi being the dominant phyla. The application significantly increased the number of species in the microbial community only in the rhizosphere soil.Conclusion Application of the mixed microbial cultures significantly and positively affected the mineral contents, pH, and microbial community in the rhizosphere soil at the bamboo forest.
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Keywords:
- bioagent /
- Phyllostachys edulis /
- soil microbiome /
- diversity
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0. 引言
【研究意义】镉（Cadmium，Cd）是环境中毒性最强的重金属元素之一，被联合国环境规划署列为具有全球意义的危险物质之首[1]。随着城市化、工业化的迅速发展，福州市城区土壤和农田土壤均受到重金属Cd污染，研究发现城区土壤和农田土壤中的Cd含量均超过福建省土壤背景值，相对于其他重金属元素，Cd元素存在严重积累现象[2-3]。不结球白菜作为Cd超富集蔬菜，在Cd胁迫下不结球白菜呈现叶片黄化、植株矮小的毒害症状[4-5]，不结球白菜幼苗叶绿素的含量显著降低，光合作用受到抑制，同时产生过量的活性氧，造成膜质过氧化损伤[6]，Cd在蔬菜中富集积累，可通过食物链传递危害人体健康[7]。【前人研究进展】水杨酸（Salicylic acid，SA）是植物体内广泛存在的一种酚类化合物，它不仅参与调节植物生长发育的生理过程，还能诱导植物对低温、盐碱、重金属等胁迫产生抗性[8]。近年来，关于SA缓解植物Cd胁迫的研究较为广泛，研究表明，SA能缓解Cd对花椰菜种子萌发和幼苗生长的抑制[9]；外施SA可降低小麦根部Cd含量，提高光合速率，增强小麦的耐Cd能力[10]；外源SA处理莴苣幼苗后，可以有效缓解Cd对莴苣幼苗生长的抑制作用[11]；SA预处理可以缓解Cd胁迫对番茄生长的毒害作用，降低番茄根、叶中的Cd积累量[12]。【本研究切入点】不结球白菜（Brassica chinensis L.）为十字花科芸薹属芸薹种白菜亚种，原产于我国，种质资源丰富[13]，生长快速、口感清爽、营养丰富[14]，是福建省栽培最广的绿叶蔬菜之一。不结球白菜作为Cd敏感植物，更容易从土壤中吸收Cd并转移至可食部位[15]。目前，关于将SA用于缓解Cd对不结球白菜毒性效应的研究鲜见报道。【拟解决的关键问题】本试验以不结球白菜为材料，采用穴盘育苗，研究Cd胁迫下不同质量浓度SA处理对不结球白菜幼苗形态、生理及Cd富集量的影响，探讨SA诱导不结球白菜抗Cd胁迫的响应及对Cd吸收积累和转运差异，为利用SA减轻Cd胁迫对不结球白菜的伤害提供理论依据，在生产上为提高作物抗重金属栽培提供新方法。
1. 材料与方法
1.1 试验材料
以华冠不结球白菜为供试材料，产地为日本株式会社武藏野种苗园，该品种生育期短、属矮脚种、叶柄深绿肥厚，具有耐暑、耐病及耐雨等特性。以珍珠岩、草炭作为育苗基质。
1.2 试验方法
试验于2018年12月19日至2019年1月28日在福建省农业科学院中以示范农场玻璃温室和生理生化实验室进行。不结球白菜播种时间为12月19日，出苗时间为12月21日，试验共设6个处理，每个处理重复3次。将草炭与珍珠岩以2∶1体积比例（V/V）配成复合基质，将基质装入72孔穴盘中。不结球白菜播种后置于玻璃温室植物工厂育苗，采用的营养液配方为每200 L添加A：Ca（NO3）2 16 kg，KNO3 6 kg；B：KHPO4 3 kg，MgSO4 10 kg，EDTA-Fe 460 g，MnSO4 120 g，ZnSO4 60 g，CuSO4 4 g，NH4Mo 1.5 g，HBO3 60 g[16]。不结球白菜幼苗长至两叶一心时，于每天上午9：00，对幼苗进行以下处理：（1）空白对照（CK1）和Cd胁迫对照组（CK2），叶面均喷施去离子水；（2）叶面喷施去离子水配制的0.01 mmol·L−1SA溶液；（3）叶面喷施去离子水配制的0.05 mmol·L−1SA溶液；（4）叶面喷施去离子水配制的0.1 mmol·L−1SA溶液；（5）叶面喷施去离子水配制的0.5 mmol·L−1SA溶液。连续喷施3 d，叶片以正反两面全部湿润且无液体滴下为准。3 d后开始Cd胁迫处理，除CK1用正常营养液培养，其余处理用含50 mg·L−1 CdCl·2.5H2O营养液培养。分别在Cd胁迫处理的第5 d、第10 d取样测定不结球白菜幼苗的形态指标和生理指标。
1.3 测定项目与方法
1.3.1 形态指标
株高：用直尺测量植株基部到顶端生长点的长度；茎粗：用游标卡尺测定植株子叶下2 cm的直径；根长采用WinRHIZO加拿大根系分析系统测定；叶面积用YMJ-B型叶面积测定仪（浙江托普云农科技股份有限公司）测量；地上/地下部鲜干重：用JJ223BC型电子天平（感量为0.1 mg）进行测量；壮苗指数=（茎粗/株高+地下部干质量/地上部干质量）×植株干质量[17]；根冠比=地下部鲜质量/地上部鲜质量。取样时，每个处理分别选取10株长势一样且具有代表性的植株。
1.3.2 叶片生理指标
叶绿素（Chl）含量采用张宪政[18]的丙酮乙醇混合液法，可溶性蛋白含量的测定采用杨晴[19]的考马斯亮蓝G-250染色法；脯氨酸（Pro）含量采用磺基水杨酸法，丙二醛（MDA）含量采用硫代巴比妥酸法，根系活力采用TTC法，超氧化物歧化酶（SOD）活性采用氮蓝四唑（NBT）法，过氧化物酶（POD）活性采用愈创木酚法，过氧化氢酶（CAT）活性采用紫外吸收比色法[20]。取样时，每个处理随机选取长势一致的植株，撕取相同部位的叶片，去除叶脉后，剪碎混匀，重复测试3次。叶片生理指标测定的部位均以鲜重（FW）计算。
1.3.3 镉含量测定
将不结球白菜幼苗从基质中取出，依次用自来水、超纯水洗涤，将地上与地下部分分开，于105 ℃杀青30 min，70 ℃烘干至恒重，用不锈钢粉碎机粉碎备用。取1 g烘干样品，经混合酸高温消煮成透明或淡黄色液体，用火焰原子吸收光谱法测定茎叶和根Cd含量[21]，并计算转运系数。
转运系数=地上部分镉含量/地下部分镉含量[22]
1.4 数据处理
试验数据采用Excel、DPS v7.05 数据处理软件进行统计和分析。
2. 结果与分析
2.1 外源SA对Cd胁迫下不结球白菜幼苗生长的影响
从表1可以看出，Cd胁迫5 d，与CK1相比，CK2的不结球白菜幼苗生长受到抑制，其株高、茎粗、根长、叶面积、根冠比和壮苗指数分别下降6.88%、16.88%、5.58%、4.91%、42.31%和30.50%；0.01 mmol·L−1、0.05 mmol·L−1SA处理的不结球白菜各生长指标均高于CK2，但与CK1相比，株高、茎粗差异不显著，根长、叶面积显著高于CK1，根冠比、壮苗指数显著降低；SA质量浓度高于0.05 mmol·L−1，幼苗生长量反而下降。Cd胁迫10 d，CK2处理的不结球白菜幼苗的生长量依旧低于CK1，其中根冠比下降幅度达到62.27%；0.01 mmol·L−1、0.05 mmol·L−1SA处理的不结球白菜幼苗各生长量均高于CK2；与CK1相比，幼苗的株高、茎粗均升高，而根长、叶面积、根冠比、壮苗指数均下降；当SA质量浓度高于0.05 mmol·L−1，幼苗生长呈下降趋势。
表 1 外源SA对Cd胁迫下不结球白菜幼苗生长的影响Table 1. Effect of exogenous SA on growth of non-heading Chinese cabbage seedlings under Cd-stress处理时间
Processing time/dSA/（mmol·L−1） 株高
Plant height/cm茎粗
Stem thickness/cm根长
Root length/cm叶面积
Leaf area/cm2根冠比
Root shoot ratio壮苗指数
seedling index5 0（CK1） 10.67±0.35 ab 0.28±0.02 a 8.37±0.32 de 12.99±1.00 b 0.12±0.02 a 0.69±0.03 a 0（CK2） 9.93±0.40 b 0.23±0.02 b 7.90±0.46 e 12.35±0.73 b 0.07±0.02 c 0.48±0.04 b 0.01 11.57±0.80 a 0.28±0.03 a 9.70±0.10 b 15.19±1.60 a 0.09±0.00 bc 0.52±0.03 b 0.05 10.63±0.85 ab 0.27±0.03 a 11.83±0.21 a 16.33±0.62 a 0.09±0.01 b 0.50±0.09 b 0.1 10.37±0.65 b 0.21±0.02 bc 9.17±0.29 c 11.25±1.32 bc 0.08±0.01 bc 0.48±0.01 b 0.5 8.43±0.32 c 0.17±0.01 c 8.60±0.17 d 9.89±0.18 c 0.08±0.00 bc 0.53±0.04 b 10 0（CK1） 10.87±0.10 b 0.29±0.03 ab 12.00±1.13 a 17.31±0.55 a 0.20±0.02 a 0.61±0.01 a 0（CK2） 10.23±0.25 c 0.26±0.02 bc 8.90±0.36 b 13.29±1.45 b 0.08±0.04 c 0.42±0.06 b 0.01 11.77±0.21 a 0.33±0.02 a 9.17±0.58 b 16.65±0.34 a 0.12±0.00 bc 0.50±0.07 ab 0.05 10.80±0.26 b 0.32±0.02 a 9.60±0.36 b 16.55±1.41 a 0.18±0.08 ab 0.44±0.04 b 0.1 10.47±0.15 bc 0.22±0.01 cd 9.33±1.26 b 12.26±0.32 b 0.09±0.03 c 0.43±0.09 b 0.5 10.27±0.25 c 0.20±0.01 d 9.50±0.50 b 12.18±1.06 b 0.10±0.01 c 0.41±0.05 b 注：同列同处理数值不同字母表示处理间差异达到0.05显著水平；表2、3同。
Note: Data with different letters on same column under same treatment indicate significant difference at level of 0.05. Same for below.2.2 外源SA对Cd胁迫下不结球白菜幼苗叶片光合色素的影响
从表2可以看出，Cd胁迫5 d和10 d，与CK1相比，CK2的不结球白菜幼苗叶片的叶绿素含量和类胡萝卜素含量均降低。Cd胁迫5 d，不同浓度SA处理均能提高幼苗叶片的叶绿素含量，以0.05 mmol·L−1SA处理的叶绿素含量和类胡萝卜素含量最高，其叶绿素a、叶绿素b和叶绿素（a+b)含量较CK2分别增加40.47%、117.28%和55.10%，类胡萝卜素含量增加36.30%。Cd胁迫10 d，0.01 mmol·L−1SA、0.05 mmol·L−1SA处理的幼苗叶片叶绿素含量和类胡萝卜素含量与CK1相比差异不显著。当SA浓度高于0.05 mmol·L−1，叶绿素含量、类胡萝卜素含量均下降。
表 2 外源SA对Cd胁迫下不结球白菜幼苗叶片光合色素的影响Table 2. Effect of exogenous SA on photosynthetic pigment in non-heading Chinese cabbage seedling leaves under Cd-stress处理时间
Processing time/dSA/（mmol·L−1） 叶绿素a
Chlorophyll a/（mg·g−1）叶绿素b
Chlorophyll b/（mg·g−1）叶绿素（a+b）
Total chlorophyll content/（mg·g−1）类胡萝卜素
Carotenoid/（mg·g−1）5 0（CK1） 0.43±0.01 de 0.16±0.00 c 0.59±0.01 c 0.12±0.01 ab 0（CK2） 0.42±0.01 e 0.10±0.01 e 0.52±0.01 d 0.10±0.00 c 0.01 0.59±0.00 a 0.21±0.01 a 0.80±0.01 a 0.13±0.01 a 0.05 0.56±0.01 b 0.18±0.01 b 0.74±0.03 b 0.12±0.02 ab 0.1 0.44±0.00 cd 0.15±0.01 c 0.59±0.00 c 0.11±0.01 bc 0.5 0.46±0.02 c 0.12±0.01 d 0.58±0.02 c 0.09±0.01 c 10 0（CK1） 1.06±0.01 a 0.35±0.03 a 1.41±0.04 a 0.28±0.00 ab 0（CK2） 0.97±0.01 b 0.28±0.01 b 1.25±0.01 b 0.24±0.01 c 0.01 1.09±0.01 a 0.35±0.01 a 1.44±0.02 a 0.27±0.02 b 0.05 1.06±0.02 a 0.35±0.02 a 1.40±0.02 a 0.30±0.01 a 0.1 0.84±0.02 c 0.26±0.00 bc 1.10±0.02 c 0.25±0.00 c 0.5 0.77±0.04 d 0.23±0.01 c 1.00±0.05 d 0.21±0.00 d 2.3 外源SA对Cd胁迫下不结球白菜幼苗根系活力、可溶性蛋白、脯氨酸和MDA含量的影响
2.3.1 外源SA对Cd胁迫下不结球白菜幼苗根系活力的影响
由图1可以看出，CK2的不结球白菜幼苗根系活力显著低于CK1；Cd胁迫5 d 和10 d，外源SA处理的幼苗根系活力均高于CK2；Cd胁迫5 d，0.05 mmol·L−1SA处理的根系活力较CK2显著增加29.44%；Cd胁迫10 d，0.01 mmol·L−1SA处理的根系活力最高，较CK2显著提高103.28%，但不同浓度SA处理之间差异不显著。
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图 1 外源SA对Cd胁迫下不结球白菜幼苗根系活力的影响Figure 1. Effect of exogenous SA on root activity of non-heading Chinese cabbage seedlings under Cd-stress2.3.2 外源SA对Cd胁迫下不结球白菜幼苗叶片可溶性蛋白含量的影响
由图2可知，CK2的幼苗叶片可溶性蛋白含量低于CK1；Cd胁迫5 d，0.01 mmol·L−1SA、0.05 mmol·L−1SA处理的幼苗叶片可溶性蛋白含量显著高于各个处理，0.1 mmol·L−1SA、0.5 mmol·L−1SA处理的可溶性蛋白含量出现下降；Cd胁迫10 d，SA处理显著提高可溶性蛋白含量，以0.01 mmol·L−1SA处理的可溶性蛋白含量升高最多，较CK1和CK2分别增加44.45%和70.74%。
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图 2 外源SA对Cd胁迫下不结球白菜幼苗叶片可溶性蛋白含量的影响Figure 2. Effect of exogenous SA on soluble protein content of non-heading Chinese cabbage seedling leaves under Cd-stress2.3.3 外源SA对Cd胁迫下不结球白菜幼苗叶片脯氨酸含量的影响
从图3可知，CK2的幼苗叶片脯氨酸含量均低于CK1；处理5 d后，0.01 mmol·L−1SA处理的脯氨酸含量与CK2差异不显著，0.05 mmol·L−1SA、0.1 mmol·L−1SA处理的脯氨酸含量显著高于各个处理，0.5 mmol·L−1SA处理显著低于其余处理；处理10 d后，0.01 mmol·L−1SA、0.05 mmol·L−1SA处理的脯氨酸含量显著高于其余处理，其中0.05 mmol·L−1SA处理较CK1和CK2分别提高29.96%和44.98%；而0.1 mmol·L−1SA、0.5 mmol·L−1SA处理的脯氨酸含量显著降低，与其余处理之间差异显著。
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图 3 外源SA对Cd胁迫下不结球白菜幼苗叶片脯氨酸含量的影响Figure 3. Effect of exogenous SA on proline content of non-heading Chinese cabbage seedling leaves under Cd-stress2.3.4 外源SA对Cd胁迫下不结球白菜幼苗叶片丙二醛含量的影响
由图4可知，Cd胁迫5 d，CK1的不结球白菜幼苗叶片MDA含量最低，但与CK2、0.01 mmol·L−1SA、0.05 mmol·L−1SA处理之间差异不显著；胁迫10 d后，CK2的幼苗叶片MDA含量上升幅度最大，较CK1显著增加68.83%；不同浓度SA处理均能降低幼苗叶片MDA含量，但含量仍显著高于CK1，其中0.01 mmol·L−1SA处理下降幅度最大，较CK2显著降低27.50%。
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图 4 外源SA对Cd胁迫下不结球白菜幼苗叶片MDA含量的影响Figure 4. Effect of exogenous SA on MDA content in non-heading Chinese cabbage seedling leaves under Cd-stress2.4 外源SA对Cd胁迫下不结球白菜幼苗叶片抗氧化酶活性的影响
从图5可以看出，CK2的不结球白菜幼苗叶片SOD、POD、CAT活性均低于CK1。Cd胁迫5 d，CK2的不结球白菜幼苗叶片SOD活性与0.5 mmol·L−1 SA处理相比差异显著，与其余处理之间差异不显著；Cd胁迫10 d，CK2的幼苗叶片SOD活性显著低于CK1，0.01 mmol·L−1SA、0.05 mmol·L−1SA处理的幼苗叶片SOD活性略有增加。
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图 5 外源SA对Cd胁迫下不结球白菜幼苗叶片抗氧化酶活性的影响Figure 5. Effect of exogenous SA on antioxidant enzyme activities of non-heading Chinese cabbage seedling leaves under Cd-stressCd胁迫5 d，0.01 mmol·L−1SA、0.05 mmol·L−1SA处理显著提高幼苗叶片POD活性，以0.01 mmol·L−1SA处理表现最好，而0.1 mmol·L−1SA、0.5 mmol·L−1SA处理POD活性下降；Cd胁迫10 d，0.05 mmol·L−1SA处理的幼苗叶片POD活性较CK2显著提高1.18倍，当SA浓度超过0.05 mmol·L−1POD活性出现下降。
Cd胁迫5 d，不同浓度SA处理均能提高幼苗叶片CAT活性，以0.01 mmol·L−1SA处理的CAT活性最高，与其余处理之间差异显著；Cd胁迫10 d，0.05 mmol·L−1SA、0.1 mmol·L−1SA处理叶片的CAT活性得到提高，其中0.05 mmol·L−1SA处理的CAT活性较CK2显著提高70.43%，与各处理之间差异显著；当SA超过0.05 mmol·L−1CAT活性出现下降。
2.5 外源SA对Cd胁迫下不结球白菜幼苗地上、地下部分Cd含量及转运系数的影响
由表3可知，不结球白菜幼苗地上部分Cd含量高于地下部分，CK2的不结球白菜幼苗地上、地下部分Cd含量显著高于其余处理，外源SA处理能显著降低幼苗体内Cd含量；Cd胁迫5 d，CK2的转运系数显著高于其余处理，转运系数随SA浓度的增加呈先降低后升高的趋势，其中0.05 mmol·L−1SA处理的转运系数最小。
表 3 外源SA对Cd胁迫下不结球白菜幼苗地上、地下部分Cd含量及转运系数的影响Table 3. Effect of exogenous SA on Cd Content and transport coefficient of aboveground and underground parts of non-heading Chinese cabbage seedlings under Cd-stress处理时间
Processing time/dSA/mmol·L−1 地上部分Cd含量
Cd content in above ground/（mg·kg−1）地下部分Cd含量
Cd content in underground part/（mg·kg−1）转运系数
Transport coefficient5 0（CK2） 483.33±7.02 a 215.97±4.80 a 2.24±0.02 a 0.01 319.03±5.67 c 185.97±4.28 b 1.72±0.07 c 0.05 251.87±3.48 e 167.53±4.28 d 1.50±0.03 d 0.1 269.23±3.00 d 175.37±4.11 c 1.54±0.02 d 0.5 334.87±4.45 b 174.40±4.75 cd 1.92±0.03 b 10 0（CK2） 677.70±2.33 a 397.73±3.00 a 1.70±0.01 b 0.01 534.33±3.52 c 348.10±2.98 c 1.54±0.02 c 0.05 503.47±2.34 d 375.77±4.98 b 1.34±0.02 d 0.1 594.07±4.44 b 338.67±4.77 d 1.75±0.04 a 0.5 598.13±3.44 b 350.77±3.31 c 1.71±0.02 b 3. 讨论与结论
3.1 外源SA对Cd胁迫下不结球白菜幼苗生长的影响
生物量是植物生长状况的直接反映，是确定其对环境耐性的重要指标之一[23]。本研究结果表明，Cd胁迫下不结球白菜幼苗生物量积累受到抑制，较CK1表现出下降趋势，其中根冠比下降幅度最大，说明根系生长受抑制程度最大；0.01～0.05 mmol·L−1 SA处理不结球白菜幼苗后，可以有效缓解Cd胁迫对不结球白菜幼苗生长的抑制作用，当SA浓度高于0.05 mmol·L−1，缓解效果减弱甚至表现出抑制作用，这可能是高浓度SA与Cd共同作用对不结球白菜幼苗根系产生了双重的毒害有关，这与任艳芳等[11]的研究结果一致。
3.2 外源SA对Cd胁迫下不结球白菜幼苗叶片光合色素的影响
叶绿素是植物进行光合作用时吸收和传递光能的主要色素，其含量高低不仅反映植物的光合能力强弱，亦能反映出植物在逆境下受伤害的程度[24]。本试验中，不结球白菜幼苗叶片叶绿素含量在Cd胁迫后显著下降，可能出现的原因：一是Cd2+在幼苗叶片细胞内积累后，取代叶绿素中的Zn2+、Mg2+、Fe2+，或与叶绿体中蛋白质上的-SH结合，导致叶绿体的结构和功能被破坏；二是叶绿素合成所必需的酶活性受抑，导致叶绿素合成受阻；三是活性氧和MDA的产生，致使叶绿素受到破坏[25]。0.01～0.05 mmol·L−1SA处理的幼苗叶片叶绿素含量和类胡萝卜素含量显著增加，说明外源SA通过提高幼苗叶片叶绿素含量来维持Cd胁迫下光合作用的正常进行，从而提高其对Cd胁迫的抗性，这与张永平等[26]的研究结果相一致。
3.3 外源SA对Cd胁迫下不结球白菜幼苗根系活力、可溶性蛋白、脯氨酸和丙二醛含量的影响
根系是植物吸收和合成的重要器官，根的生长状况和活力水平直接影响植株地上部的生长和营养吸收及产量高低，因此根系活力是衡量根系功能的重要指标[20]。本次试验中，CK2的不结球白菜幼苗根系活力显著低于CK1，可能是土壤中的Cd2+使根系受到损伤，导致根系活力下降，幼苗生长受抑；而SA处理的幼苗根系活力显著升高，说明喷施SA能够缓解Cd对不结球白菜幼苗的伤害，维持根系吸收和运输功能，促进植株生长，这与邵小杰等[27]的研究结果相似。
植物体内可溶性蛋白、脯氨酸在逆境胁迫下可作为渗透调节剂，通过调节渗透压，维持细胞内环境的稳定；当植物遇到逆境胁迫时，植物体内可溶性蛋白、脯氨酸的含量会迅速积累[28]。本研究结果表明，Cd胁迫下不结球白菜幼苗叶片的可溶性蛋白、脯氨酸含量表现出下降，可能是较高浓度的Cd2+抑制蛋白质的合成和脯氨酸的积累；外源SA处理后不结球白菜幼苗叶片的可溶性蛋白、脯氨酸含量显著升高，说明SA能促进Cd胁迫下不结球白菜幼苗叶片可溶性蛋白的合成和脯氨酸的积累，通过调节渗透压、维持细胞膜的稳定性，缓解Cd2+对膜的伤害，这与张芬琴等[29]的研究结果一致。
MDA是膜脂过氧化作用的主要产物，可与蛋白质、核酸等发生反应，干扰细胞内正常的生命活动，抑制植物生长发育，故MDA含量可以反映细胞膜脂过氧化水平和细胞膜受伤害程度[30]。本研究中，Cd胁迫10 d时，CK2的不结球白菜幼苗叶片MDA含量迅速上升，这可能是因为植物根系不断吸收Cd2+，导致Cd2+在植物体内富集量增加，从而对植物的伤害更为严重；外源SA均可降低不结球白菜幼苗叶片MDA含量，这与任艳芳等[11]的研究结果一致。证明外施SA能减轻Cd胁迫对膜的过氧化损伤，降低膜的透性，稳定膜的结构，促进Cd胁迫下幼苗的生长。
3.4 外源SA对Cd胁迫下不结球白菜幼苗叶片抗氧化酶活性的影响
SOD、POD、CAT是植物体内具有协同作用的抗氧化酶，在逆境胁迫下清除细胞内过量的活性氧，维持活性氧代谢的平衡，减轻逆境胁迫对植物细胞造成的伤害[31]。本试验发现，Cd胁迫下，不结球白菜幼苗叶片SOD、POD和CAT活性较CK1均有不同程度降低，可能是Cd2+诱导氧化毒害的主要原因[32]。适宜浓度的SA处理可提高不结球白菜幼苗叶片的抗氧化酶活性，Cd胁迫5 d时以0.01 mmol·L−1SA处理效果较佳，Cd胁迫10 d时0.05 mmol·L−1SA处理抗氧化酶活性最高，这与赵新月等[33]研究玉米在镉胁迫下喷施SA的最适宜浓度为 50～100 μmol·L−1的结果一致。本试验中，当SA浓度大于0.05 mmol·L−1，明显抑制不结球白菜幼苗叶片的酶活性，可能是因为高浓度的SA 降低相应的酶活性，说明SA只能在一定范围内对植物的抗氧化酶活性产生促进作用，超过这个范围将产生抑制作用。
3.5 外源SA对Cd胁迫下不结球白菜幼苗地上、地下部分Cd含量及转运系数的影响
通常情况下，植物通过将重金属截留于根系，减少重金属由根部向地上部分转运，从而减轻镉对地上部分的毒害[34]。本试验中，不结球白菜幼苗对Cd的吸收表现为地上部分＞地下部分，说明不结球白菜幼苗从土壤中吸收的Cd主要积累于茎叶，向地上部茎叶中转移较多，这与任艳军等[35]的研究一致。外源SA处理可以显著降低不结球白菜幼苗地上、地下部分Cd含量，其中0.01 mmol·L−1SA、0.05 mmol·L−1SA处理能有效降低幼苗的转运系数，说明0.01～0.05 mmol·L−1SA处理的不结球白菜幼苗对重金属Cd的根际阻控效应较强，减少Cd向幼苗地上部分的转运。
综上所述，Cd胁迫会对不结球白菜幼苗生长造成伤害，添加外源SA可有效缓解Cd胁迫的伤害，本研究结果认为SA为0.05 mmol·L−1时，不结球白菜幼苗的根长、根冠比最高，同时能显著提高幼苗脯氨酸含量和POD、CAT活性，降低不结球白菜幼苗地上部分的Cd累积量，提高不结球白菜幼苗的抗Cd能力。
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图 1 样本稀释曲线和Venn图
A：稀释曲线；B：（a）复合微生物菌剂施用的根际土壤ASV对比；（b）复合微生物菌剂施用的非根际土壤ASV对比；（c）样本总体ASV对比。
Figure 1. Sample dilution curve and Venn diagram
A: dilution curve; B: (a) ASVs of rhizosphere soils treated with bioagent; (b) ASVs of non-rhizosphere soils treated with bioagent; (c) ASVs of total sample population.
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图 3 门水平下的物种相对丰度
A：相对丰度；B：样本间显著差异箱图。图4同。
Figure 3. Relative species abundance at phylum level
A: histogram of relative abundance; B: box chart of significant differences between samples. Same for Fig.4.
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图 5 样本环境因子与门水平物种RDA分析
Figure 5. RDA analysis on environmental factors and species at phylum level
表 1 样本编号对照表
Table 1 Sample codes
样本类型
Sample type分组
Group对照组毛竹根际土壤 E0 对照组毛竹非根际土壤 F0 复合微生物菌剂处理组毛竹根际土壤 E1 复合微生物菌剂处理组毛竹非根际土壤 F1 
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表 2 土壤理化性质测定结果
Table 2 Physiochemical properties of soil samples
样本
Sample有机质
OM/ (g·kg−1)速效磷
AP/（μmol·g−1）速效钾
AK/（mg·kg−1）全钾
TK/（g·kg−1）全氮
TN/（g·kg−1）全磷
TP/（mg·kg−1）速效氮
AN/（mg·kg−1）pH E0 20.81±0.01a 4.42±0.02c 329.12±0.02b 14.79±0.02b 0.97±0.02a 507.04±0.02b 86.34±0.01a 5.68±0.01d E1 7.67±0.01c 4.82±0.03a 196.71±0.01d 13.75±0.02c 0.75±0.03b 480.41±0.03c 43.03±0.02c 5.88±0.01c F0 17.84±0.01b 4.50±0.01b 341.53±0.03a 15.84±0.04a 0.99±0.01a 531.07±0.04a 68.96±0.04b 6.14±0.02b F1 7.01±0.01d 4.51±0.01b 261.03±0.04c 13.73±0.03c 0.77±0.02b 488.1±0.02c 47.05±0.03c 6.54±0.02a 图中数据为平均值±标准差；同列数据后不同小写字母表示不同处理间差异显著（P ＜ 0.05）。表3同。
Data are mean±standard deviation; those with different lowercase letters indicate significant differences between treatments at P＜0.05. Same for Table 3.
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表 3 Alpha 多样性指数
Table 3 Alpha diversity index
样本
Sample丰度指数
ACE查尔指数
Chao1香农指数
Shannon辛普森指数
SimpsonE0 479.84±32.70b 479.76±32.55b 5.74±0.11a 0.0048±0.001b E1 539.52±80.66a 539.20±80.37a 5.76±0.06a 0.0055±0.001b F0 493.95±96.69b 493.66±96.37b 5.67±0.19a 0.0054±0.001b F1 489.88±127.07b 489.25±126.73b 5.56±0.29a 0.0079±0.004a
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表 4 细菌功能表达丰度
Table 4 Significant differences in microbial functions
功能 Function E0 E1 F0 F1 光养 Phototrophy 1.54±0.37c 1.61±0.09b 2.62±0.26a 2.32±0.26a 光合自养 Photoautotrophy 1.47±0.38d 1.61±0.09c 2.60±0.29a 2.26±0.32b 蓝藻 Cyanobacteria 1.23±0.36d 1.55±0.04c 2.56±0.35a 2.26±0.32b 含氧光能自养 Oxygenic photoautotrophy 1.23±0.36d 1.55±0.04c 2.56±0.35a 2.26±0.32b 固氮作用 Nitrogen fixation 3.98±1.90a 1.94±0.20b 0.75±0.31c 0.67±0.36c 硝酸盐呼吸 Nitrate respiration 0.98±0.58a 0.26±0.12c 0.84±0.32b 0.20±0.09c 氮呼吸 Nitrogen respiration 0.98±0.58a 0.26±0.12b 0.84±0.32a 0.20±0.09b 纤维素分解 Cellulolysis 1.04±0.50a 0.50±0.32b 0.16±0.02c 0.15±0.16c 甲基营养 Methylotrophy 0.19±0.01a 0.05±0.08c 0.19±0.02a 0.08±0.05b 甲醇氧化 Methanol oxidation 0.19±0.01a 0.05±0.08c 0.19±0.02a 0.08±0.05b 铁呼吸 Iron respiration 0d 0.02±0.03c 0.14±0.04a 0.07±0.07b 芳香烃碳氢降解 Aromatic hydrocarbon degradation 0c 0.02±0.02b 0c 0.09±0.07a 脂族非甲烷碳氢化合物降解
Aliphatic non methane hydrocarbon degradation0c 0.02±0.02b 0c 0.09±0.07a 碳氢化合物降解 Hydrocarbon degradation 0c 0.02±0.02b 0c 0.09±0.07a
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