红花夹竹桃萃取物对植物病原真菌的抑菌活性

冯小飞; 赵宁; 杨品辉; 王紫雯; 马建鹏

doi:10.19303/j.issn.1008-0384.2018.08.013

红花夹竹桃萃取物对植物病原真菌的抑菌活性

1.
西南林业大学生命科学学院, 云南昆明 650224
2.
云南大理白族自治州林业科学研究所, 云南大理 671000

基金项目:

云南省科技计划项目 216013

云南省大学生创新创业训练项目 516021

云南省高等学校科技创新团队项目 51600507

详细信息

作者简介:
冯小飞(1986-), 男, 硕士, 实验师, 主要从事天然产物化学成分研究(E-mail:575556848@qq.com)

通讯作者:
马建鹏(1964-), 男, 高级工程师, 主要从事森林保护与利用研究(E-mail:mjpzqy@126.com)

中图分类号: S482.2
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出版历程
- 收稿日期: 2017-12-26
- 修回日期: 2018-06-01
- 刊出日期: 2018-07-31

Antimicrobial Activities of Nerium indicum Mill Extracts on Fungal Pathogens

1.
Faculty of Life Science, Southwest Forestry Universty, Kunming, Yunnan 650224, China
2.
Dali Forestry Science Institute, Dali, Yunnan 671000, China

摘要

摘要: 以红花夹竹桃Nerium indicum Mill枝叶为试验材料，分别用石油醚、乙酸乙酯、正丁醇对夹竹桃枝叶提取物进行萃取，采用生长速率法测定不同萃取物对5种病原真菌（小麦雪腐病菌、小麦全蚀病菌、梨黑星病菌、辣椒炭疽病菌、稻瘟病菌）的抑菌活性，计算3种萃取物对5种病原真菌的毒力回归方程和半抑制率（EC₅₀）。结果显示：3种萃取物对5种病原真菌的菌丝体生长均有一定的抑制作用，且抑制率随着萃取物浓度的上升而增大。乙酸乙酯萃取物对供试病原菌的抑制效果最好，质量浓度为10.0 mg·mL^-1时，乙酸乙酯萃取物对5种病原真菌的抑制率均大于65.0%，尤其对小麦雪腐病原真菌的抑制效果最为显著，最大抑制率达85.7%，半抑制浓度（EC₅₀）为2.03 mg·mL^-1；石油醚萃取物其次，正丁醇萃取物抑制效果最差。3种萃取物对小麦雪腐病原菌的抑制作用均较强，半抑制浓度（EC₅₀）均小于6.28 mg·mL^-1，与其余4种植物病原菌的EC₅₀值相比，抑制效果显著。说明红花夹竹桃乙酸乙酯萃取物能够抑制5种病原菌的正常生长，其中对小麦雪腐病原菌的抑制效果最好。
- 夹竹桃 /
- 病原菌 /
- 抑菌活性
Abstract: The branches and leaves of Nerium indicum Mill plants were extracted using petroleum ether, ethyl acetate or nbutanol in this study. The antimicrobial activities of the extracts against 5 pathogenic fungi on plants (i.e., Gerlachia nivalis, Gaeumannomyces graminis, Venturia nashicola, Colletotrichum capsici, and Magnaporthe oryzae) were determined based on the fungal growth rates under the treatments. From the data, regression equations were obtained, and EC₅₀ calculated. It was found that the extracts exhibited varying inhibitory rates, which increased with increasing concentration of the extract. The ethyl acetate extract showed the greatest inhibitory effects on the pathogens. At a concentration of 10 mg·mL^-1, the extract demonstrated an inhibition rate exceeded 65.0% against all 5 fungi, especially G. nivalis, which reached 85.7% with an EC₅₀ of 2.04 mg·mL^-1. The petroleum ether extract and the nbutanol extract followed in that order on the inhibition effect. All 3 extracts retarded the growths of G. nivalis with an EC₅₀ below 6.28 mg·mL^-1, which was significantly lower than the EC₅₀ on other fungi tested.
- Nerium indicum Mill /
- pathogenic fungi /
- antimicrobial activity

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红花夹竹桃(Nerium indicum Mill)为夹竹桃科夹竹桃属多年生植物，花色鲜红，枝叶繁茂，在南方作为一种常见的绿化观赏植物进行种植和栽培。夹竹桃枝、叶和根中含有黄酮、甾体、生物碱、强心苷等多种化合物，近代临床用于心力衰竭、喘息咳嗽、癫痫等疾病的治疗。文静等^[1]采用色谱技术对夹竹桃叶的化学成分进行研究，从中分离鉴定出5种化合物；方访等^[2]采用柱层析法和气相色谱/质谱(GC-MS)技术从夹竹桃中分离鉴定出107种化合物。植物体内的次生代谢产物与植物的药用活性有着密切的联系。随着绿色农药理念的提出，具有高效、低毒、容易降解等优点的植物源农药成为现代抑菌农药研究和开发的热点^[3]。夹竹桃属植物分布范围广，枝条生长速度快，材料来源丰富，其独特的毒理活性也越来越引起人们的关注。关于夹竹桃的抑菌和抗虫活性已开展了较多研究。翟兴礼等^[4]发现夹竹桃叶的水提取物对枯草芽孢杆菌和巨大芽孢杆菌的生长具有一定的抑制作用；郭春雨^[5]研究了夹竹桃叶中的甾体类化合物，并进行了细胞毒性的测定；郑许松等^[6]对夹竹桃叶乙醇提取物进行了抗虫活性试验，发现夹竹桃叶乙醇提取物对茭白二化螟幼虫有较强的拒食作用和生长发育抑制作用。目前，对夹竹桃的研究主要集中于粗提物的抗虫、抑菌和抗肿瘤研究^[7]，对植物病原真菌的抑制作用研究相对较少^[8-9]。为研究红花夹竹桃对植物病原真菌的抑菌活性，本试验通过制备红花夹竹桃不同萃取物，研究各萃取物的不同浓度抑菌培养基对5种植物病原真菌的抑菌活性，为红花夹竹桃的进一步开发和利用提供依据。

1. 材料与方法

1.1 试验材料

1.1.1 红花夹竹桃材料

红花夹竹桃采自西南林业大学，树龄约为11年，选取生长状况良好的夹竹桃枝条(直径1.0~2.0 cm)，用枝剪将枝叶剪下来后带回实验室备用。

1.1.2 供试病源菌株

供试菌株为小麦雪腐病菌Gerlachia nivalis W. Games es E.、小麦全蚀病菌Gaeumannomyces graminis Var. tritici、梨黑星病菌Venturia nashicola Tanaka et Yamamoto、辣椒炭疽病菌Colletotrichum capsici (Syd.) Butl & Bisby、稻瘟病菌Magnaporthe oryzae，来源于西南林业大学生命科学学院生物化学教研室，菌种保存于4℃冰箱，活化后备用。

1.1.3 抑菌物质的萃取

夹竹桃枝叶砍成小段(长1~2 cm)后用3倍体积的80%乙醇水溶液浸提3次，每次4 d。合并提取液，减压蒸馏得到红花夹竹桃粗提物浸膏，用2倍质量的蒸馏水溶解后，分别用3倍体积的石油醚、乙酸乙酯、正丁醇对粗提物分别萃取3次，萃取后的有机试剂合并后经减压蒸馏浓缩后备用。

1.2 试验方法

1.2.1 萃取物抑菌母液的配制

试验采用不同浓度的抑菌培养基对5种病原菌进行抑菌活性研究，抑菌培养基的质量浓度分别为0.5、1.5、2.5、5.0、10.0 mg·mL^-1。按照总体积100 mL的抑菌培养基计算，分别称取不同用量夹竹桃萃取物于小三角瓶中，10 mL 80%的乙醇水溶液分溶解，溶解后的萃取物抑菌溶液放入无菌台中，紫外灯灭菌30 min后作为抑菌母液备用。

1.2.2 抑菌培养基的制备

灭菌后的普通PDA培养基在无菌台中冷却至50℃左右，迅速添加灭菌后的夹竹桃萃取物抑菌母液，充分混匀后配制成不同浓度的抑菌培养基，对照培养基加入相同体积的80%乙醇水溶液，保证培养基最后总体积为100 mL。把含有不同浓度萃取物的抑菌培养基均匀倒入玻璃培养皿中(直径为9 cm)，每皿20 mL培养基，冷却后备用。

1.2.3 抑菌试验

采用生长速率法^[10]测定不同浓度抑菌培养基对病原菌菌丝体生长的抑制作用。用灭菌后的打孔器将供试菌种制成“菌碟”(直径0.5 cm)后接种到抑菌培养基质的中央，每个浓度设置3个重复。同时，以未添加抑菌物质的培养基为对照进行接种。接种后的培养皿置于25℃的恒温培养箱中培养，观察5种病原真菌在不同培养基上的萌发情况及菌丝体生长情况。采用十字交叉法^[11-12]每隔2 d测量菌丝体的生长速率，待对照菌丝体长满培养皿边缘，结束测量试验。

抑菌率X/%=[(D₁-D₂)/D₁]×100%

式中，D₁为对照组菌落直径，D₂为处理组菌落直径(单位cm)。

1.2.4 半抑制率(EC₅₀)和毒力回归方程的计算

采用SPSS 19软件开展毒力回归方程的模拟和EC₅₀的计算。抑菌率、浓度、总数为变量，以软件“回归”分析中的“Probit”模型进行“10”为对数底的“logit”模型转换，计算出不同抑菌物质的EC₅₀值；参数估计值中的“PROBIT模型”即为不同抑菌物质的毒力回归方程，采用卡方(χ²)对回归方程的拟合度进行检验。

1.3 数据处理

采用SPSS 19软件进行统计分析，用Duncan方法对数据进行显著性比较。

2. 结果与分析

2.1 不同萃取物对供试病源菌株的抑菌效果

由表 1可知，随着萃取物质量浓度的增加，红花夹竹桃萃取物对5种病源真菌的抑菌效果均显著增强，且不同浓度间抑制效果差异显著。

表 1 不同萃取物对5种病原菌的抑制效果

Table 1. Inhibitory effects of 3 extracts on 5 fungi

萃取物	质量浓度/(mg·mL^-1)	小麦雪腐病菌		小麦全蚀病菌		梨黑星病菌		辣椒炭疽病菌		稻瘟病菌
萃取物	质量浓度/(mg·mL^-1)	菌落直径/cm	抑菌率/%	菌落直径/cm	抑菌率/%	菌落直径/cm	抑菌率/%	菌落直径/cm	抑菌率/%	菌落直径/cm	抑菌率/%
石油醚	0.0	8.60±0.00Aa	0.00 ±0.00Aa	8.60 ±0.00Aa	0.00 ±0.00Aa	8.60 ±0.00Aa	0.00 ±0.00Aa	8.60 ±0.00Aa	0.00 ±0.00Aa	8.60 ±0.00Aa	0.00 ±0.00Aa
	0.5	8.60±0.00Aa	0.00±0.00Aa	8.60 ±0.00Aa	0.00 ±0.00Aa	8.60 ±0.00Aa	0.00 ±0.00Aa	8.60 ±0.00Aa	0.00 ±0.00Aa	8.60 ±0.00Ba	0.00 ±0.00Aa
	1.5	7.25±0.13Bb	15.67 ±1.53Bb	7.97 ±0.06Bb	7.37 ±0.64Bb	7.88 ±0.10Bb	8.33 ±1.19Ab	8.22 ±0.10Bb	4.83 ±1.19Ab	8.25 ±0.05Bb	4.10 ±0.6Ab
	2.5	5.25 ±0.05Bc	38.80 ±0.61Bc	6.93 ±0.10Bc	19.27 ±1.17Bc	7.03 ±0.06Bc	18.20 ±0.69Bc	7.30 ±0.10Bc	15.17 ±1.2Bc	7.87 ±0.06Bc	8.50 ±0.69Bc
	5.0	3.27 ±0.06Bd	62.00 ±0.69Bd	5.0 ±0.09Ad	42.43 ±0.98Bd	5.15 ±0.15Bd	40.13 ±1.75Bd	5.17 ±0.06Bd	39.90±0.69Bd	5.68 ±0.08Bd	33.90 ±0.92Bd
	10.0	1.97 ±0.08Be	77.13 ±0.86Be	4.29 ±0.01Be	50.07 ±0.12Be	3.23 ±0.08Be	62.40 ±0.92Be	3.93 ±0.08Be	54.27 ±0.86Be	4.30 ±0.11Be	50.27 ±1.25Be
乙酸乙酯	0.0	8.60±0.00Aa	0.00±0.00Aa	8.60±0.00Aa	0.00 ±0.00Aa	8.60±0.00Aa	0.0 ±0.00Aa	8.60 ±0.00Aa	0.00 ±0.00Aa	0.00 ±0.00Aa	0.00 ±0.00Aa
	0.5	6.83 ±0.06Bb	20.53 ±0.64Bb	7.97 ±0.15Ab	7.37 ±1.78Bb	8.00 ±0.30Ab	7.00 ±3.50Bb	7.72 ±0.10Ab	10.27 ±1.19Bb	7.67 ±0.15Ab	10.87 ±1.78Bb
	1.5	4.90 ±0.10Ac	43.47 ±1.36Cc	7.00 ±0.26Ac	18.60 ±3.08Cc	7.17 ±0.15Ac	16.67 ±1.78Bc	7.17 ±0.06Ac	16.67 ±0.64Bc	6.98 ±0.28Ac	18.77 ±3.19Bc
	2.5	3.87 ±0.0A6d	55.07 ±0.64Cd	6.52 ±0.10Ad	24.23 ±1.21Cd	6.50 ±0.17Ad	24.43 ±2.02Cd	6.60 ±0.10Ad	23.27 ±1.15Cd	6.40 ±0.20Ad	25.60 ±2.30Cd
	5.0	2.81 ±0.04Ae	67.73 ±0.85Ce	4.92 ±0.08Ae	42.83 ±0.86Be	4.33 ±0.15Ae	49.63 ±1.78Ce	4.63 ±0.21Ae	46.10 ±2.40Ce	4.17 ±0.25Ae	51.57 ±1.33Ce
	10.0	1.28 ±0.08Af	85.07 ±0.86Cf	3.07 ±0.15Af	64.37 ±1.78Cf	2.75 ±0.15Af	68.03 ±1.75Cf	2.53 ±0.15Af	70.53 ±1.78Cf	2.77 ±0.12Af	67.83 ±2.90Cf
正丁醇	0.0	8.60± 0.00Aa	0.00 ±0.00Aa	8.60±0.00Aa	0.00 ±0.00Aa	8.60±0.00Aa	0.00 ±0.00Aa	8.60±0.00Aa	0.00 ±0.00Aa	8.60±0.00Aa	0.00 ±0.00Aa
	0.5	8.60 ±0.00Aa	0.00 ±0.00Aa	8.60±0.00Aa	0.00 ±0.00Aa	8.60±0.00Aa	0.00 ±0.00Aa	8.60±0.00Aa	0.00 ±0.00Aa	8.60±0.00Aa	0.00 ±0.00Aa
	1.5	8.37 ±0.15Cb	2.73 ±1.79Ab	8.33 ±0.06Cb	3.10 ±0.69Ab	7.90 ±0.10Bb	8.13 ±1.15Ab	8.07 ±0.12Bb	6.23 ±1.33Ab	8.10 ±0.10Bb	5.83 ±1.15Ab
	2.5	7.43 ±0.16Cc	13.57 ±1.79Ac	7.97 ±0.06Cc	7.37 ±0.64Ac	7.60 ±0.10Cc	11.63 ±1.15Ac	7.77 ±0.06Cc	9.70 ±0.69Ac	7.55 ±0.05Cc	12.20 ±0.60Ac
	5.0	5.27 ±0.06Cd	38.77 ±0.64Ad	6.57 ±0.06Bd	23.67 ±0.64Ad	6.48 ±0.13Cd	24.63 ±1.46Ad	7.07 ±0.12Cd	17.83 ±1.33Ad	6.80 ±0.10Cd	20.93 ±1.15Ad
	10.0	2.35 ±0.09Ce	74.30 ±1.04Ae	4.73 ±0.15Ce	44.93 ±1.78Ae	4.10 ±0.10Ce	52.33 ±1.15Ae	4.37 ±0.21Ce	49.23 ±2.44Ae	4.50 ±0.20Be	47.67 ±2.35Ae
注：表中不同大写字母表示同一质量浓度不同萃取物的抑菌率在0.05水平上差异显著，不同小写字母表示同一种萃取物不同质量浓度的抑菌率在0.05水平上差异显著。

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不同萃取物之间比较发现，低质量浓度时(0.5 mg·mL^-1)，石油醚和正丁醇萃取物对供试病原菌均没有表现出明显的抑菌活性，抑制率均为0，而乙酸乙酯萃取物对5种病原菌抑菌效果显著，且对小麦雪腐病原菌抑制率最强达到了20.53%。随着萃取物质量浓度的升高，石油醚和乙酸乙酯萃取物对5种病原菌的抑制作用迅速增加，2.5 mg·mL^-1和5.0 mg·mL^-1的石油醚、乙酸乙酯萃取物的抑制作用显著高于正丁醇萃取物；高质量浓度(10.0 mg·mL^-1)时，3种萃取物对5种病原菌的抑制率均大于40%，其中乙酸乙酯萃取物对5种植物病原菌的抑制作用最强，最高达85.07%，显著高于其他2种萃取物。综合比较可知，红花夹竹桃的乙酸乙酯萃取物对供试病原菌的抑菌活性显著高于其余2种萃取物，石油醚萃取物次之，正丁醇萃取物的抑制率相对较弱，除了对小麦雪腐和梨黑星病原菌的抑菌率分别达到74.3%和52.33%外，对其余3种植物病原菌的抑菌效果均小于50%。

3种萃取物对不同植物病原菌的抑制效果比较发现，石油醚萃取物对小麦雪腐病原菌的抑制效果最明显，质量浓度为10 mg·mL^-1时的菌丝生长仅1.97 cm，抑制率最高达77.13%(图 1-A)；对梨黑星和辣椒炭疽病原菌的抑制效果次之，抑制率分别为62.4%和54.27%；对稻瘟和小麦全蚀病原菌的抑制效果均较弱，抑制率分别为50.27%和50.07%。正丁醇萃取物对小麦雪腐病原菌的抑制效果最明显，质量浓度为10 mg·mL^-1时菌丝生长仅2.35 cm，抑制率最高达74.3%(图 1-B)；对梨黑星病原菌的抑制率次之，抑制率为52.33%；对稻瘟和小麦全蚀病原菌的抑制效果均小于50%。乙酸乙酯萃取物对5种病原菌的抑制情况均较好，浓度为10.0 mg·mL^-1时对供试的病原菌抑制率都大于60%，其中对小麦雪腐病原菌的抑制效果最强，菌丝生长仅1.28 cm，抑制率达85.7%(图 1-C)；对辣椒炭疽病原菌的抑制率次之，抑制率为70.53%；对小麦全蚀病原菌的抑制效果最弱，抑制率为64.37%。

图 1 红花夹竹桃3种萃取物对小麦雪腐病原菌抑制效果

注：A为石油醚，B为正丁醇，C为乙酸乙酯。图中培养皿标注的数字1~6分别表示萃取物质量浓度为0、0.5、1.5、2.5、5.0、10.0 mg·mL^-1。

Figure 1. Inhibitory effects of 3 extracts from N. indicum plant tissues on G. nivalis

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2.2 不同萃取物对供试病原真菌抑制率的毒力回归方程

通过SPSS 19软件对不同浓度的抑制率进行毒力回归方程的模拟^[13]，采用卡方检验(χ²)验证回归方程的拟合度(表 2)。

表 2 不同萃取物对5种病原菌的毒力回归方程分析

Table 2. Toxicity regression equations of 5 fungi affected by 3 extracts

萃取物	供试菌株	毒力回归方程	χ²	χ_0.05²	df^a	P
石油醚	小麦雪腐病菌	y=2.262x-1.360	6.417	7.815	3	0.093
	小麦全蚀病菌	y=1.948x-1.720	4.729	7.815	3	0.193
	梨黑星病菌	y=2.037x-1.757	1.856	7.815	3	0.603
	辣椒炭疽病菌	y=2.064x-1.894	4.732	7.815	3	0.193
	稻瘟菌病菌	y=2.129x-2.088	3.817	7.815	3	0.282
乙酸乙酯	小麦雪腐病菌	y=3.031x-2.380	0.429	7.815	3	0.934
	小麦全蚀病菌	y=2.207x-2.029	0.314	7.815	3	0.957
	梨黑星病菌	y=1.949x-1.939	2.689	7.815	3	0.441
	辣椒炭疽病菌	y=1.999x-2.111	4.167	7.815	3	0.244
	稻瘟菌病菌	y=1.910x-2.010	2.033	7.815	3	0.566
正丁醇	小麦雪腐病菌	y=1.411x-0.438	0.8	7.815	3	0.85
	小麦全蚀病菌	y=1.554x-1.172	4.071	7.815	3	0.252
	梨黑星病菌	y=1.828x-1.231	6.676	7.815	3	0.083
	辣椒炭疽病菌	y=1.399x-1.101	5.634	7.815	3	0.131
	稻瘟菌病菌	y=1.694x-1.149	5.079	7.815	3	0.166
注：表中“χ²”为卡方值，“χ_0.05²”为临界值，(df^a)为自由度，“P”为5%显著性差异。

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由上述毒力回归方程表格可知，χ²测定值均小于检验的临界值7.815(χ_0.05²)(自由度为3时)，且P值都大于0.05，表明实际测定结果与理论测定结果差异不显著，卡方(χ²)检验结果说明毒力回归方程拟合度良好。

2.3 不同萃取物对供试病原菌的半抑制率(EC₅₀)

夹竹桃不同萃取物对5种病原真菌半抑制率(EC₅₀)结果如图 2所示。EC₅₀反映了药物对供试病原菌的抑制能力，EC₅₀值越低，抑菌培养基的抑菌活性越好。结果显示，夹竹桃3种有机溶剂萃取物对5种病原真菌都有抑菌活性，并且呈现了不同的半抑制率(EC₅₀)，乙酸乙酯萃取物对小麦雪腐病原菌的EC₅₀值最小，仅为2.03 mg·mL^-1，显著低于对其他4种病原真菌的EC₅₀值。石油醚萃取物对小麦雪腐病菌的抑制作用最强，其次是梨黑心病原菌，对小麦全蚀病和辣椒炭疽病的抑制效果较差，对稻瘟病的抑制效果最弱，差异显著。正丁醇萃取物对稻瘟病原菌的EC₅₀值最大，为11.12 mg·mL^-1，显著高于对小麦雪腐病原菌和梨黑心病原菌的EC₅₀。乙酸乙酯萃取物对5种植物病原真菌菌丝生长的抑制效果均较好，特别是对小麦雪腐病原真菌的抑制效果最为明显；石油醚萃取物对5种病原真菌的抑制效果次之；正丁醇萃取物对5种病原真菌的抑制效果最差，尤其对稻瘟病原真菌。与上述抑制率分析结果相对应。

图 2 夹竹桃不同萃取物对5种病原真菌的半抑制率(EC₅₀)

注：图中不同小写字母表示同一萃取物对不同病原菌的抑菌效果差异显著(P < 0.05)。

Figure 2. EC₅₀ of N. indicum extracts on 5 pathogenic fungi

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3. 讨论与结论

夹竹桃的总提取物对不同细菌和真菌的抑菌研究^{[1, 14-16]}表明，夹竹桃总提取物对不同的细菌和真菌都有一定的抑制活性。本研究利用极性不同的有机溶剂对红花夹竹桃的总提取物进行萃取，石油醚为非极性溶剂，萃取物中的主要成分为色素、挥发油、甾醇等弱极性化合物；乙酸乙酯为中等极性溶剂，萃取物中主要成分为黄酮、小极性的甙类等化合物；正丁醇极性较大，萃取物中主要化合物为皂甙、蒽酮甙、糖甙等大极性的化合物。本研究表明乙酸乙酯萃取物对5种供试病原菌的最小抑菌浓度(MIC)为0.5 mg·mL^-1，石油醚和正丁醇的萃取物对供试菌株的最小抑菌浓度(MIC)为1.5 mg·mL^-1，乙酸乙酯萃取物在较小浓度时对供试病原菌就表现出了一定的抑制作用，抑菌效果较为明显。5种病原真菌半抑制率(EC₅₀)的计算结果也显示乙酸乙酯萃取物对5种供试的植物病原真菌的EC₅₀值均较小，进一步说明该萃取物中的化合物对供试病原菌菌丝体生长的抑制效果较好，抑制率比其他两种萃取物更高。其原因可能是3种萃取物中化合物的种类和含量的不同对供试病原菌的菌丝体生长产生了不同的抑制效果；此外，活性化合物对病原菌的作用机理的不同也可能是造成抑菌率差异的原因。本研究说明利用乙酸乙酯作为萃取剂开展红花夹竹桃的病原菌抑菌活性筛选效果更好，特别是后期开展夹竹桃抑菌活性化合物的活性追踪时，可以选择乙酸乙酯对夹竹桃的提取物进行萃取。此外，3种夹竹桃萃取物对小麦雪腐病原真菌均表现出了更明显的抑菌活性，说明夹竹桃中的多种化合物能够对小麦雪腐病原真菌菌丝体生长形成抑制作用，可用于小麦雪腐病原真菌的生物防治。其具体作用原理还需对夹竹桃萃取物进行单体化合物的分离和结构鉴定，确定抑菌活性是单一化合物的作用还是由多个化合物对病原菌协同作用产生的抑制效果，从而明确其抑制机理。

图 1 红花夹竹桃3种萃取物对小麦雪腐病原菌抑制效果

注：A为石油醚，B为正丁醇，C为乙酸乙酯。图中培养皿标注的数字1~6分别表示萃取物质量浓度为0、0.5、1.5、2.5、5.0、10.0 mg·mL^-1。

Figure 1. Inhibitory effects of 3 extracts from N. indicum plant tissues on G. nivalis

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图 2 夹竹桃不同萃取物对5种病原真菌的半抑制率(EC₅₀)

注：图中不同小写字母表示同一萃取物对不同病原菌的抑菌效果差异显著(P < 0.05)。

Figure 2. EC₅₀ of N. indicum extracts on 5 pathogenic fungi

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表 1 不同萃取物对5种病原菌的抑制效果

Table 1 Inhibitory effects of 3 extracts on 5 fungi

萃取物	质量浓度/(mg·mL^-1)	小麦雪腐病菌		小麦全蚀病菌		梨黑星病菌		辣椒炭疽病菌		稻瘟病菌
萃取物	质量浓度/(mg·mL^-1)	菌落直径/cm	抑菌率/%	菌落直径/cm	抑菌率/%	菌落直径/cm	抑菌率/%	菌落直径/cm	抑菌率/%	菌落直径/cm	抑菌率/%
石油醚	0.0	8.60±0.00Aa	0.00 ±0.00Aa	8.60 ±0.00Aa	0.00 ±0.00Aa	8.60 ±0.00Aa	0.00 ±0.00Aa	8.60 ±0.00Aa	0.00 ±0.00Aa	8.60 ±0.00Aa	0.00 ±0.00Aa
	0.5	8.60±0.00Aa	0.00±0.00Aa	8.60 ±0.00Aa	0.00 ±0.00Aa	8.60 ±0.00Aa	0.00 ±0.00Aa	8.60 ±0.00Aa	0.00 ±0.00Aa	8.60 ±0.00Ba	0.00 ±0.00Aa
	1.5	7.25±0.13Bb	15.67 ±1.53Bb	7.97 ±0.06Bb	7.37 ±0.64Bb	7.88 ±0.10Bb	8.33 ±1.19Ab	8.22 ±0.10Bb	4.83 ±1.19Ab	8.25 ±0.05Bb	4.10 ±0.6Ab
	2.5	5.25 ±0.05Bc	38.80 ±0.61Bc	6.93 ±0.10Bc	19.27 ±1.17Bc	7.03 ±0.06Bc	18.20 ±0.69Bc	7.30 ±0.10Bc	15.17 ±1.2Bc	7.87 ±0.06Bc	8.50 ±0.69Bc
	5.0	3.27 ±0.06Bd	62.00 ±0.69Bd	5.0 ±0.09Ad	42.43 ±0.98Bd	5.15 ±0.15Bd	40.13 ±1.75Bd	5.17 ±0.06Bd	39.90±0.69Bd	5.68 ±0.08Bd	33.90 ±0.92Bd
	10.0	1.97 ±0.08Be	77.13 ±0.86Be	4.29 ±0.01Be	50.07 ±0.12Be	3.23 ±0.08Be	62.40 ±0.92Be	3.93 ±0.08Be	54.27 ±0.86Be	4.30 ±0.11Be	50.27 ±1.25Be
乙酸乙酯	0.0	8.60±0.00Aa	0.00±0.00Aa	8.60±0.00Aa	0.00 ±0.00Aa	8.60±0.00Aa	0.0 ±0.00Aa	8.60 ±0.00Aa	0.00 ±0.00Aa	0.00 ±0.00Aa	0.00 ±0.00Aa
	0.5	6.83 ±0.06Bb	20.53 ±0.64Bb	7.97 ±0.15Ab	7.37 ±1.78Bb	8.00 ±0.30Ab	7.00 ±3.50Bb	7.72 ±0.10Ab	10.27 ±1.19Bb	7.67 ±0.15Ab	10.87 ±1.78Bb
	1.5	4.90 ±0.10Ac	43.47 ±1.36Cc	7.00 ±0.26Ac	18.60 ±3.08Cc	7.17 ±0.15Ac	16.67 ±1.78Bc	7.17 ±0.06Ac	16.67 ±0.64Bc	6.98 ±0.28Ac	18.77 ±3.19Bc
	2.5	3.87 ±0.0A6d	55.07 ±0.64Cd	6.52 ±0.10Ad	24.23 ±1.21Cd	6.50 ±0.17Ad	24.43 ±2.02Cd	6.60 ±0.10Ad	23.27 ±1.15Cd	6.40 ±0.20Ad	25.60 ±2.30Cd
	5.0	2.81 ±0.04Ae	67.73 ±0.85Ce	4.92 ±0.08Ae	42.83 ±0.86Be	4.33 ±0.15Ae	49.63 ±1.78Ce	4.63 ±0.21Ae	46.10 ±2.40Ce	4.17 ±0.25Ae	51.57 ±1.33Ce
	10.0	1.28 ±0.08Af	85.07 ±0.86Cf	3.07 ±0.15Af	64.37 ±1.78Cf	2.75 ±0.15Af	68.03 ±1.75Cf	2.53 ±0.15Af	70.53 ±1.78Cf	2.77 ±0.12Af	67.83 ±2.90Cf
正丁醇	0.0	8.60± 0.00Aa	0.00 ±0.00Aa	8.60±0.00Aa	0.00 ±0.00Aa	8.60±0.00Aa	0.00 ±0.00Aa	8.60±0.00Aa	0.00 ±0.00Aa	8.60±0.00Aa	0.00 ±0.00Aa
	0.5	8.60 ±0.00Aa	0.00 ±0.00Aa	8.60±0.00Aa	0.00 ±0.00Aa	8.60±0.00Aa	0.00 ±0.00Aa	8.60±0.00Aa	0.00 ±0.00Aa	8.60±0.00Aa	0.00 ±0.00Aa
	1.5	8.37 ±0.15Cb	2.73 ±1.79Ab	8.33 ±0.06Cb	3.10 ±0.69Ab	7.90 ±0.10Bb	8.13 ±1.15Ab	8.07 ±0.12Bb	6.23 ±1.33Ab	8.10 ±0.10Bb	5.83 ±1.15Ab
	2.5	7.43 ±0.16Cc	13.57 ±1.79Ac	7.97 ±0.06Cc	7.37 ±0.64Ac	7.60 ±0.10Cc	11.63 ±1.15Ac	7.77 ±0.06Cc	9.70 ±0.69Ac	7.55 ±0.05Cc	12.20 ±0.60Ac
	5.0	5.27 ±0.06Cd	38.77 ±0.64Ad	6.57 ±0.06Bd	23.67 ±0.64Ad	6.48 ±0.13Cd	24.63 ±1.46Ad	7.07 ±0.12Cd	17.83 ±1.33Ad	6.80 ±0.10Cd	20.93 ±1.15Ad
	10.0	2.35 ±0.09Ce	74.30 ±1.04Ae	4.73 ±0.15Ce	44.93 ±1.78Ae	4.10 ±0.10Ce	52.33 ±1.15Ae	4.37 ±0.21Ce	49.23 ±2.44Ae	4.50 ±0.20Be	47.67 ±2.35Ae
注：表中不同大写字母表示同一质量浓度不同萃取物的抑菌率在0.05水平上差异显著，不同小写字母表示同一种萃取物不同质量浓度的抑菌率在0.05水平上差异显著。

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表 2 不同萃取物对5种病原菌的毒力回归方程分析

Table 2 Toxicity regression equations of 5 fungi affected by 3 extracts

萃取物	供试菌株	毒力回归方程	χ²	χ_0.05²	df^a	P
石油醚	小麦雪腐病菌	y=2.262x-1.360	6.417	7.815	3	0.093
	小麦全蚀病菌	y=1.948x-1.720	4.729	7.815	3	0.193
	梨黑星病菌	y=2.037x-1.757	1.856	7.815	3	0.603
	辣椒炭疽病菌	y=2.064x-1.894	4.732	7.815	3	0.193
	稻瘟菌病菌	y=2.129x-2.088	3.817	7.815	3	0.282
乙酸乙酯	小麦雪腐病菌	y=3.031x-2.380	0.429	7.815	3	0.934
	小麦全蚀病菌	y=2.207x-2.029	0.314	7.815	3	0.957
	梨黑星病菌	y=1.949x-1.939	2.689	7.815	3	0.441
	辣椒炭疽病菌	y=1.999x-2.111	4.167	7.815	3	0.244
	稻瘟菌病菌	y=1.910x-2.010	2.033	7.815	3	0.566
正丁醇	小麦雪腐病菌	y=1.411x-0.438	0.8	7.815	3	0.85
	小麦全蚀病菌	y=1.554x-1.172	4.071	7.815	3	0.252
	梨黑星病菌	y=1.828x-1.231	6.676	7.815	3	0.083
	辣椒炭疽病菌	y=1.399x-1.101	5.634	7.815	3	0.131
	稻瘟菌病菌	y=1.694x-1.149	5.079	7.815	3	0.166
注：表中“χ²”为卡方值，“χ_0.05²”为临界值，(df^a)为自由度，“P”为5%显著性差异。

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参考文献(16)

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1. 材料与方法
1.1 试验材料
1.1.1 红花夹竹桃材料
1.1.2 供试病源菌株
1.1.3 抑菌物质的萃取
1.2 试验方法
1.2.1 萃取物抑菌母液的配制
1.2.2 抑菌培养基的制备
1.2.3 抑菌试验
1.2.4 半抑制率(EC50)和毒力回归方程的计算
1.3 数据处理
2. 结果与分析
2.1 不同萃取物对供试病源菌株的抑菌效果
2.2 不同萃取物对供试病原真菌抑制率的毒力回归方程
2.3 不同萃取物对供试病原菌的半抑制率(EC50)
3. 讨论与结论

1. 材料与方法
1.1 试验材料
1.1.1 红花夹竹桃材料
1.1.2 供试病源菌株
1.1.3 抑菌物质的萃取
1.2 试验方法
1.2.1 萃取物抑菌母液的配制
1.2.2 抑菌培养基的制备
1.2.3 抑菌试验
1.2.4 半抑制率(EC₅₀)和毒力回归方程的计算
1.3 数据处理
2. 结果与分析
2.1 不同萃取物对供试病源菌株的抑菌效果
2.2 不同萃取物对供试病原真菌抑制率的毒力回归方程
2.3 不同萃取物对供试病原菌的半抑制率(EC₅₀)
3. 讨论与结论

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红花夹竹桃萃取物对植物病原真菌的抑菌活性

作者简介: 冯小飞(1986-), 男, 硕士, 实验师, 主要从事天然产物化学成分研究(E-mail:575556848@qq.com)

通讯作者: 马建鹏(1964-), 男, 高级工程师, 主要从事森林保护与利用研究(E-mail:mjpzqy@126.com)

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