Identification and Biological Characteristics of Stem Rot Pathogen of Dendrobium officinale
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摘要:目的 明确福建省铁皮石斛茎腐病病原菌及其生物学特性。方法 从福建省诏安县、松溪县等地的3个种植基地采集典型病株并分离病原菌，采用形态学结合分子生物学（ITS、EF1-α、ACT、RPB2和LSU基因序列分析）的方法鉴定其病原菌种类，并对该病原菌菌丝体在不同温度、pH值、光照条件、碳源、氮源等生物学特性进行研究。结果 经鉴定该病原菌为尖孢镰刀菌（Fusarium oxysporum）。生物学特性研究表明其菌丝生长最适温度为30 ℃，pH为7，光照有利于菌丝生长，最适碳、氮源分别为淀粉和蛋白胨。结论 分离鉴定了福建省铁皮石斛茎腐病病原菌为尖孢镰刀菌（Fusarium oxysporum），明确了病原菌生物学特性。Abstract:Objective To isolate and identify and determine the biological characteristics of the pathogen that caused the stem rot disease on Dendrobium officinale.Method Typical diseased plants were collected from 3 farms in Zhaoan and Songxi for pathogen isolation. Morphological and molecular identification methods including gene sequencing of ITS, EF1-α, ACT, RPB2, and LSU were performed on the isolates. Biological characteristics of the pathogen in response to temperature, pH, light condition, carbon source, and nitrogen source were determined.Result The pathogen was identified as Fusarium oxysporum, which grew optimally at 30 ℃ and pH 7 under light on a medium using starch for carbon and peptone for nitrogen sources.Conclusion F. oxysporum was identified to be the pathogen that caused the stem rot disease on D. officinale in Fujian, and the optimal mycelial growth conditions determined.
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Keywords:
- Dendrobium officinale /
- stem rot /
- identification /
- Fusarium oxysporum /
- biological characteristics
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0. 引言
【研究意义】由子囊菌Magnaporthe grisea引起的稻瘟病是水稻三大病害之一，稻瘟病的爆发严重影响稻米的产量及品质。20世纪70年代，稻瘟病是浙江省晚稻主要病害，流行年份发病面积约占栽培面积的20%~30%，2014年浙江省晚稻稻瘟病在杭嘉湖、宁绍平原等地突发流行，发病面积达到2.25万hm2，浙粳88、中浙优1号等推广品种发病严重[1-2]。其原因在于带有某些稻瘟病主效抗性基因的推广品种在多年种植后抗性逐步丧失，并且品种区域布局过于单一化、集中化；在不利天气因素的影响下，田间病菌爆发，导致严重的产量损失。培育品质良好的抗性品种是水稻育种家孜孜以求的目标，传统育种主要通过田间杂交和回交，再结合田间抗性鉴定和农艺性状的综合选择，经过多年多代筛选，选育抗性品种，这需要育种家有丰富的实践经验[3]。【前人研究进展】Andersen等[4]于2003年提出了基因功能标记(Functional markers, FMs)的概念，指一个分子标记位点代表一个特定的等位基因，通过对分子标记的筛选即能对性状进行筛选。目前，育种家将分子标记结合到传统育种技术中，旨在实现快速、准确、系统地鉴定水稻品种抗瘟基因型，达到培育抗性强及抗谱广的水稻品种的目的。一些已经被定位或克隆的抗性基因，比如Pi9、Pigm、Pita、Pikm等已经在生产上广泛运用[5-8]。范方军等[9]利用水稻稻瘟病抗性基因Pi-b、Pita等4个基因的功能标记检测江苏省64份水稻品系，结合穗颈瘟抗性鉴定，解析4个稻瘟病抗性基因在江苏省粳稻稻瘟病抗性育种中的作用。宋兆强等[10]利用Pita、Pib等4个基因的功能标记，对在稻瘟病菌圃经多年抗性筛选的60份资源材料进行基因型鉴定，并进行抗性基因与穗颈瘟发病相关性分析，发现所有基因的抗病能力都在不断减弱。【本研究切入点】了解品种本身抗病基因型，可以避免育种上抗病基因利用的盲目性。由此，本研究利用Pi1、Pi9/Piz、Pi2/Pizt、Pikh、Pikm、Pita 6个稻瘟病抗性基因功能性分子标记，对浙江省46个水稻栽培品种和稻瘟病菌生理小种鉴别品种，包括籼型三系杂交稻、粳型三系杂交稻、籼型两系杂交稻、粳型常规稻、籼型常规稻等进行了抗瘟基因型检测，并且对这些品种进行了稻瘟菌苗期接种、抗苗瘟水平分析。【拟解决的关键问题】本研究旨在明确浙江省水稻栽培品种的基因型，初步探讨水稻基因型和抗瘟水平的相关性，为浙江省稻区抗病品种的合理布局提供依据。
1. 材料与方法
1.1 水稻材料及种植条件
供试水稻品种包括阳性对照材料丽江新团黑谷单基因系品种8个，为Pi1、Pi9、Piz、Pi2、Pizt、Pikh、Pikm、Pita基因供体品种IRBL1-CL、IRBL9-W、IRBLz-Fu、IRBLZ5-CA、IRBLZt-T、IRBLkh-k3、IRBLkm-Ts和IRBLta-K1，由粮食作物“基因对基因”病害农业部行业专项提供。阴性感病对照材料丽江新团黑谷1份，浙江省水稻栽培品种40份，稻瘟病菌生理小种鉴别品种6份；由浙江省农业科学院植物与微生物研究所提供。
将水稻种子置于28℃培养箱浸种2 d，32℃催芽48 h，选取发芽良好的种子穴播于盛有肥沃土壤的育苗盆内，穴间距为5 cm左右，每穴播种发芽良好的种子10粒左右，每盆中分别设感病对照1份，各重复内品种采用随机排列；2叶期定苗酌施氮肥，促苗以利于做接种试验。在温室中培养14 d后，进行样品采集和接种。
1.2 病原菌材料、培养及接种调查
1.2.1 菌株来源、活化、繁殖和产孢
供试菌株为2016-29-2、2017-58-1、2016-42-1等141个菌株(由浙江省农业科学院植物保护与微生物研究所提供)，所有菌株为2015-2017年间分离自浙江各地采集的稻瘟菌标样。菌株在PDA平板上活化后，接种于燕麦固体培养基上，26℃下12 h光暗交替培养10 d。加入适量无菌水刷洗培养基里的孢子，双层纱布过滤后，观察稻瘟病菌产孢情况，用血球计数板将孢子悬浮液浓度调节至约2× 105个·mL-1，作为苗期喷雾的接种体。
1.2.2 水稻叶片喷雾接种和发病调查
待水稻生长14 d左右，即在幼苗三叶一心期，在悬浮液中加入0.5%~0.8%的Tween20进行喷雾接种，每100株苗约喷20mL(以菌株薄雾均匀沾布全部叶片为度)；于26~28℃下黑暗保湿(相对湿度约95%) 24 h，然后将育苗盘移至28℃的高湿(用喷雾器进行不定时喷雾)环境下培育。
在水稻接种7 d左右进行调查：以感病对照品种发病程度判断试验的有效性。以病斑是否典型，大小及数量记载病情。本试验中丽江新团黑谷单基因系和浙江省栽培品种的抗瘟性等级，以水稻苗期调查9级分级标准[11]。0级，没有症状，免疫；1级，针头状大小褐色小点，高抗；2级，直径≤1 mm的褐色病斑，抗病；3级，灰色病斑，边缘褐色，病斑直径约1~2 mm，中抗；4级，典型纺锤形病斑，长3 mm以上，通常在两条叶脉之间，为害面积不超过叶面积2%，中感；5~7级，典型病斑，为害面积占叶面积10%~50%，感病；8~9级，典型病斑，为害面积51%以上，高感。抗性频率(%)为水稻材料在稻瘟菌接种中表现抗性菌株数与总测定菌株数目之比。
1.3 样品采集及DNA提取
每个品种采集1个单株的2 cm长叶片，置于2 mL离心管(提前放置2~3颗钢珠)中，经液氮速冻后，置于-80℃的冰箱里储藏备用。
用TPS法抽提水稻叶片总DNA。在每个放置样品的离心管中加入800 μL的TPS(100 mmol·L -1 Tris-Cl，pH值8.0；10 mmol·L -1 EDTA，pH值8.0；1 mol·L -1 KCl)抽提液。将离心管放入组织研磨仪，70 Hz、90 s研磨2次。将磨碎的叶片放入65℃水浴中温浴30 min。12 000 r·min-1离心10 min。取上清液于1.5 mL的离心管，加入等体积的氯仿/异戊醇(24:1)，混匀，12 000 r·min-1离心5 min。取上清加入等体积的异丙醇，混匀，室温放置10 min, 12 000 r·min-1离心5 min。弃上清，加入800 μL 75%乙醇，洗涤沉淀，12 000 r·min-1离心2 min，弃上清，控干残液，室温(37℃)放置使沉淀干燥，加入100 μL ddH2O(含RNA酶)溶解，37℃温浴40 min，然后-20℃保存。
1.4 Pi1、Pi9/Piz、Pi2/Pizt、Pikh、Pikm、Pita等6个基因特异性分子标记与检测
1.4.1 Pi1、Pi9/Piz、Pi2/Pizt、Pikh、Pikm、Pita等6个基因特异性分子标记
本研究检测Pi1 [12-13]、Pi9/Piz[14-15]、Pi2/Pizt[15-16]、Pikh[17-18]、Pikm[19-20]、Pita[21-22]6个稻瘟病抗性基因，其特异性分子标记的引物信息见表 1。引物由上海擎科生物技术公司合成。
表 1 用于PCR扩增的分子标记Table 1. Functional markers used for resistant gene amplification基因
Gene引物名称
Primer name引物序列(5′-3′)
Primer sequence(5′-3′)片段大小
Frangment size/bp抗感性
Resistance and susceptibilityPil M-Pi1 F:GAACAATGCCCAAACTTGAGA
R:GGGTCCACATGTCAGTGAGC460 抗病 Pi9/Piz M-Pi9/Piz F:GCTGTGCTCCAAATGAGGAT
R:GCGATCTCACATCCTTTGCT291/397 抗病/感病 Pi2/Pizt M-Pi2/Pizt F:CAGCGATGGTATGAGCACAA
R:CGTTCCTATACTGCCACATCG450/282 抗病/感病 Pikh FM143 F:CCCAACATTGGTAGTAGTGC
R:TCCTTCATACGCAACAATCT258/401 抗病/感病 Pikm Pik-1 F:TCGAGTTGCTGGAACAAGGG
R:ACTGCGTTCCCAATGCATGA575 抗病 Pita Pita-1 F:AGCAGGTTATAAGCTAGGCC
R:CTACCAACAAGTTCATCAAA1042 抗病 Pita-2 F:AGCAGGTTATAAGCTAGGCTAT
R:CTACCAACAAGTTCATCAAA1042 感病 1.4.2 Pi1、Pi9/Piz、Pi2/Pizt、Pikh、Pikm、Pita等6个基因特异性分子标记的检测
采用PCR扩增方法检测。用20 μL PCR反应体系，含1 μL(40 ng)Template DNA，0.5 μLForward Primer(10 μm)，0.5 μL Reverse Primer(10 μm)，10 μL 2×TSINGKE Master Mix，8 μL ddH2O。PCR反应条件：94℃预变性2 min；然后94℃变性30 s，50~60℃退火30 s，72℃延伸1 kb·min-1，将这三步进行35个循环；最后72℃ 5 min。制备1.0%~2.5%的琼脂糖凝胶，电压90~140V下电泳15~45 min。最后，在紫外线凝胶成像系统中观察拍照并记录试验结果。
2. 结果与分析
2.1 供试栽培品种、稻瘟病菌生理小种鉴别品种和丽江新团黑谷单基因系的抗性频率
本研究利用田间收集的141个稻瘟病菌对40个浙江省栽培品种、6个稻瘟病菌生理小种鉴别品种，以及8个含有对应抗性基因的丽江新团黑谷单基因系进行了苗期抗性测定。结果显示，在40个浙江省水稻栽培品种中，有2个水稻品种抗性频率达到80%以上，分别为秀水321和浙优12；有13个品种抗性频率在70%~80%，分别为Y两优1号、春优84、浙粳86、深两优5814、浙粳99、甬优12、甬优538、中浙优8号、浙粳70、秀水519、秀水134、宁88、甬优1540；有6个品种抗病频率在60%~70%，分别为Y两优689、嘉58、内五优8015、钱优0508、宁84、春优927。6个稻瘟病鉴别品种中，抗性频率最高的是TTP，为54.61%；抗性频率最低的是合江18，为26.95%。8个丽江黑谷单基因系中，抗性频率最高的是IRBL9-W(Pi9)和IRBLZ5-CA(Pi2)，分别为60.99%和58.87%，说明Pi9和Pi2基因的抗谱较广，同前人研究吻合。抗性频率最低的是IRBLta-K1(Pita)和IRBLzt-T(Pizt)，均为17.73%，其余几个单基因系的抗性频率在30%~45%。鉴定结果如表 2所示。
表 2 浙江省水稻栽培品种、稻瘟病菌生理小种鉴别品种和丽江新团黑谷单基因系的抗性频率Table 2. Resistance frequencies of CRZ, PRI and LTH monogenic lines编号
No.品种名称
Variety
name抗性频率
Resistance
frequency/%1 Ⅱ优650 48.94 2 Y两优2号 59.57 3 宁81 43.26 4 Y两优1号 75.89 5 Y两优689 65.25 6 春优84 76.60 7 丰两优香1号1 30.50 8 嘉58 67.38 9 EX119 21.28 10 浙粳86 79.43 11 内五优8015 65.96 12 钱优0508 67.38 13 钱优1号 48.23 14 钱优930 53.19 15 绍糯9714 58.87 16 深两优5814 71.63 17 秀水12 58.16 18 秀水321 81.56 19 秀优378 63.83 20 浙粳99 79.43 21 甬优12 74.47 22 甬优15 54.61 23 甬优17 59.57 24 甬优538 73.05 25 甬优8 44.68 26 粤优938 38.30 27 浙优12 81.56 28 浙糯优1号 53.90 29 中浙优1号 52.48 30 中浙优8 73.0 31 浙粳70 74.47 32 甲农糯 7.80 33 秀水519 70.21 34 宁84 64.54 35 秀水134 74.47 36 嘉禾218 27.66 37 宁88 79.43 38 甬优1540 78.01 39 甬优9号 56.03 40 春优927 65.96 41 合江18 26.95 42 四丰43 27.66 43 东农363 50.35 44 关东51 42.55 45 TTP 54.61 46 珍龙13 46.10 47 IRBL1-CL(Pi1) 34.75 48 IRBL9-W(Pi9) 60.99 49 IRBLZ5-CA(Pi2) 58.87 50 IRBLkh-k3(Pikh) 41.13 51 IRBLkm-Ts(Pikm) 43.97 52 IRBLta-K1(Pita) 17.73 53 IRBLz-Fu(Piz) 31.91 54 IRBLzt-T(Pizt) 43.26 注:编号1~40为浙江省栽培品种，41~46为稻瘟病菌生理小种鉴别品种，47~54为丽江新团黑谷单基因系。
Note:No. 1-40 are CRZ cultivars; No. 41-46, PRI cultivars; No. 47-54, LTH monogenic lines.2.2 供试栽培品种和稻瘟病菌生理小种鉴别品种的抗瘟基因型及其分布
利用已建立的分子鉴别体系对40个浙江省水稻栽培品种和6个稻瘟病鉴别品种的基因分布情况进行了研究，获得了部分稻瘟病抗性基因的分布情况(表 3)。结果发现在这46个品种中，有1个品种携带Pi1抗病基因，为稻瘟病菌生理小种鉴别品种TTP。有10个品种(其中两个为稻瘟病菌生理小种鉴别品种)携带Pi9/Piz抗病基因，其中9个为纯合基因型，1个为杂合型。有16个栽培品种携带Pi2/Pizt抗病基因，其中13个为纯合基因型，3个为杂合基因型。有19个品种(其中2个为稻瘟病菌生理小种鉴别品种)携带Pikh抗病基因，其中10个为纯合基因型，9个为杂合基因型。有16个品种(其中2个为稻瘟病菌生理小种鉴别品种)携带 Pikm抗病基因，有22个品种(其中1个为稻瘟病菌生理小种鉴别品种)携带 Pita抗病基因，其中10个为纯合基因型，12个为杂合基因型。在检测的水稻品种中，抗性基因Pita和Pikh分布频率最高，分别为47.83%和41.30%；其次是抗性基因Pikm和Pi2/Pizt，分别为39.13%和34.78%；Pi9/Piz 和Pi1分布频率为21.74%和2.17%。部分品种分子标记检测结果如图 1所示，各个抗性基因分布频率如图 2所示。
表 3 Pi1、Pi9/Piz、Pi2/Pizt、Pikh、Pikm和Pita 6个抗性基因在浙江省栽培品种和稻瘟病菌生理小种鉴别品种中的分布及基因型Table 3. Distribution and genotypes of Pi1, Pi9/Piz, Pi2/Pizt, Pikh, Pikm and Pita in CRZ and PRI cultivars品种
Variety基因Gene Pi1 Pi9/Piz Pi2/Pizt Pikh Pikm Pita Ⅱ优650 Ⅱ you 650 SS SS SS SS SS SS Y两优2号 Y liangyou 2 SS SS SS SS SS RS 宁81 Ning 81 SS RR SS RR R_ SS Y两优1号 Y liangyou 1 SS SS SS SS SS RS Y两优689 Y liangyou 689 SS SS SS RS SS RS 春优84 Chunyou 84 SS SS RS RS R_ RS 丰两优香1号 Fengyouxiang 1 SS SS SS RS SS SS 嘉58 Jia 58 SS SS RR SS R_ SS EX119 SS SS SS RR SS SS 浙粳86 Zhegeng 86 SS SS RR SS R_ RR 内五优8015 Neiwuyou 8015 SS SS SS RS SS SS 钱优0508 Qianyou 0508 SS SS SS RS R_ SS 钱优1号 Qianyou 1 SS SS SS RS SS SS 钱优930 Qianyou 930 SS SS SS RR R_ SS 绍糯9714 Shaonuo 9714 SS RR SS RR SS RR 深两优5814 Shenyou 5814 SS SS SS SS SS RS 秀水12 Xiushui 12 SS RR SS SS R_ RR 秀水321 Xiushui 321 SS SS RR SS R_ RR 秀优378 Xiuyou 378 SS SS RR SS R_ SS 浙粳99 Zhegeng 99 SS SS RR SS R_ RR 甬优12 Yongyou 12 SS SS RR SS SS RR 甬优15 Yongyou 15 SS SS RS SS R_ SS 甬优17 Yongyou 17 SS SS RR SS R_ SS 甬优538 Yongyou 538 SS SS RR RS SS RR 甬优8 Yongyou 8 SS SS SS SS SS RR 粤优938 Yueyou 938 SS SS SS SS SS RR 浙优12 Zheyou 12 SS SS RR SS SS RR 浙糯优1号 Zhenuoyou 1 SS RR SS RR SS RR 中浙优1号 Zhongzheyou 1 SS SS SS SS SS SS 中浙优8 Zhongzheyou 8 SS SS SS SS SS SS 浙粳70 Zhegeng 70 SS SS RR RR R_ RR 甲农糯 Jianongnuo SS SS SS SS SS SS 宁84 Ning 84 SS SS RR SS R_ RR 秀水519 Xiushui 519 SS RR SS SS R_ RR 秀水134 Xiushui 134 SS RR SS SS R_ SS 嘉禾218 Jiahe 218 SS RR SS SS SS SS 宁88 Ning 88 SS SS RR RS SS RR 甬优1540 Yongyou 1540 SS SS RR RR SS RS 甬优9号 Yongyou 9 SS RS SS RS SS RS 春优927 Chunyou 927 SS SS RS SS SS RS 合江18 Hejiang 18 SS RR SS SS SS SS 四丰43 Sifeng 43 SS SS SS SS SS SS 东农363 Dongnong 363 SS RR SS RR R_ SS 关东51 Guandong 51 SS SS SS SS R_ SS TTP R_ SS * RR SS RR 珍龙13 Zhenglong 13 SS SS SS SS SS SS 注: RR:纯合抗病基因型; SS:纯合感病基因型; RS:杂合基因型；*未得到扩增。
Note:RR: resistant homozygous genotype. SS: susceptible homozygous genotype. RS: heterozygous genotype. *: no amplification.![]()
图 1 6个稻瘟病基因抗感性分子标记检测注：M为DL2000，A为Pi1基因抗性分子标记检测，CK为IRBL1-CL; B为Pi9/Piz基因抗感分子标记检测，CK为IRBL9-W; C为Pi2/Pizt基因抗性分子标记检测，CK为IRBLz5-CA; D为Pikh基因抗感分子标记检测，CK为IRBLkh-K3; E为Pikm基因抗感分子标记检测，CK为IRBLkm-Ts; F1为 Pita基因抗性分子标记检测，F2为 Pita基因感性分子标记检测，CK为IRBLta2-Pi.第二泳道为阴性对照丽江新团黑谷.泳道1~12为部分浙江省主栽品种材料，依次是Ⅱ优650、Y两优2号、宁81、Y两优1号、Y两优689、春优84、丰两优香1号、嘉58、EX119、浙粳86、内五优8015、钱优0508。Figure 1. Detection of 6 rice blast resistance genes by specific molecular markersNote:M: DL2000;A: Identification of Pi1 with resistance molecular markers, CK: IRBL1-CL; B: Identification of Pi9/Piz with resistance and susceptible molecular markers, CK: IRBL9-W; C: Identification of Pi2/Pizt with resistance and susceptible molecular markers, CK: IRBLz5-CA; D: Identification of Pikh with resistance and susceptible molecular markers, CK: IRBLkh-K3; E: Identification of Pikm with resistance molecular markers, CK: IRBLkm-Ts; F1: Identification of Pita with resistance molecular markers; F2: Identification of Pita with susceptibility molecular markers, CK: IRBLta2-Pi. Second line is negative control, LTH. Line 1-12: some main varieties in Zhejiang, i.e., Ⅱ you 650, Y Liangyou 2, Ning 81, Y Liangyou 1, Y Liangyou 689, Chunyou 84, Feng Liangyou 1, Jia 58, EX119, Zhegeng 86, Neiwuyou 8015, Qianyou 0508.![]()
图 2 6个抗稻瘟病基因在浙江主栽水稻品种和稻瘟菌生理小种鉴别品种中的分布Figure 2. Distribution of 6 rice resistant genes in CRZ and PRI cultivars2.3 供试品种抗瘟基因数量分析
对40个浙江省水稻栽培品种和6个稻瘟病菌生理小种鉴别品种检出的稻瘟病抗性基因进行数量分析，春优84、浙粳70两个栽培品种同时携带4个抗性基因，占检测品种比率为4.35%；宁81、浙粳86、绍糯9714、秀水12号等15个品种(其中2个为稻瘟病菌生理小种鉴别品种)同时携带3个抗病基因，占检测品种比率为32.61%；Y两优689、嘉58和钱优0508等13个栽培品种同时携带2个抗病基因，占测试品种的23.91%；有12个品种(其中1个为稻瘟病菌生理小种鉴别品种)仅携带1个抗病基因，占测试品种的26.09%；还有6个品种未携带任何抗病基因，其比率为13.04%。
2.4 检出的抗瘟基因数量、类型与品种抗病性的相关性分析
为了探明浙江省栽培水稻品种和稻瘟菌检测品种抗瘟基因类型或数量与品种抗病性之间的相关性，本研究对46个水稻品种进行了稻瘟病苗叶瘟检测，并用6个稻瘟病抗性基因分子标记对46个品种进行了基因型检测。结果表明，其中28个品种(占比为60.87%)含有2个或2个以上抗性基因，这28个品种中18个品种的抗性频率高于60%，仅有1个品种抗性频率低于50%，而含有对应基因的8个丽江新团黑谷单基因系中有6个抗性频率在45%以下，说明聚合了2个或2个以上抗性基因的材料抗性频率明显提高。随着品种中检出的抗性基因数量增多，品种的抗性频率也明显上升。含有4个抗病基因的2个品种，抗性频率都超过70%；在含有3个抗病基因的15个品种中，14个品种抗性频率都在50%以上。春优84聚合了Pi2/Pizt、Pikh、Pikm、Pita 4个抗病基因，其中3个为杂合基因型，抗性频率达76.60%；浙粳86、宁88和甬优1540聚合了Pi2/Pizt、Pikh、Pita等3个抗性基因，抗性频率分别达79.43%、79.43%和78.01%；秀水321和浙粳99聚合了Pi2/Pizt、Pikm、Pita等3个抗性基因，其中2个为纯合型，抗性频率达81.56%和79.43%。说明抗性频率高的品种基本都聚合了多个抗性位点的多个抗性基因。同时没有聚合Pi2/Pizt、Pikh、Pikm、Pita 其4个抗性位点中3个位点，抗性频率却低于70%的品种，说明Pi2/Pizt、Pikh、Pikm、Pita等4个抗病基因在浙江省栽培品种中起到了主要的抗性效用。
3. 讨论与结论
了解水稻品种稻瘟病抗病基因的数量和构成情况是利用抗病品种应对稻瘟病的基础。新团丽江黑谷单基因系的构建、稻瘟病抗性基因的克隆和特异性分子标记的开发为人们分析水稻品种中稻瘟病抗性基因提供了技术支持[13, 15]。本研究以浙江省水稻栽培品种和稻瘟病菌生理小种鉴别品种为主要检测对象，以期明确上述品种中Pi1、Pi9/Piz、Pi2/Pizt、Pikh、Pikm和Pita这6个基因位点的分布情况，为本地区广谱抗瘟品种的培育和各栽培品种的合理布局提供科学依据。
有学者研究发现，同时携带Pi1和Pi2两个抗性基因的水稻品种，对稻瘟病的抗性效果明显好于单独携带Pi1和Pi2基因的水稻品种，认为这两个基因存在互补关系[23-26]。于苗苗等[27]在2013年研究指出Pi1和Pi2聚合后不同遗传背景的材料抗性频率均达到90%以上。本研究中发现浙江省水稻栽培品种中有16个材料有 Pi2/Pizt基因，然而携带Pi1基因的材料基本没有，因此在今后的育种研究中可以考虑培育聚合Pi1和Pi2基因的品种，提高品种抗病性。
前人研究发现抗病鉴定结果与标记筛选出抗性基因数量多寡之间有一定的差异，分析可能原因认为目前已经定位的抗性基因达到100个以上，而实验中检测的基因数量非常有限，并不能代表品种中实际含有的抗性基因情况[28]。比如品种深两优5814仅含有Pita 1个抗性基因，为杂合型，抗性频率却达到了71.63%；品种中浙优8号没有检测到此6个抗性基因中的任何一个，抗病频率却达到73.05%。说明这2个品种中可能存在其他抗谱广的抗性基因，值得进一步研究利用。
本研究中使用的Pi9和Piz基因、Pi2和Pizt基因的抗感显性分子标记一致，然而分别携带Pi9和Piz基因的丽江新团黑谷单基因系材料抗谱并不一致，分别携带Pi2和Pizt基因的丽江新团黑谷单基因系材料抗谱也不一致，说明Pi9和Piz， Pi2和Pizt基因同源程度比较高，在进化过程中分化比较晚，但是它们对水稻稻瘟病抗性水平有明显不同。文中检测到10个品种携带Pi9/Piz基因，然而它们的抗性频率均不到60%(低于携带Pi9基因的丽江黑谷单基因系，其抗性频率为60.99%，携带Piz基因的丽江黑谷单基因系，其抗性频率为31.91%)，可以推测这10个品种携带了Piz基因而非Pi9基因。在今后的研究中可以进一步开发能区分Pi2和Pizt基因、Pi9和Piz基因的特异性分子标记，进一步明确品种基因型，更有针对性地聚合相应抗性基因的材料。
20世纪末有学者研究指出水稻稻瘟病防治面临的挑战在于稻瘟病菌的变异机制和品种抗性丧失机理并不明朗[29]。不同稻瘟菌在不同品种上寄生适合度存在差异，当一个品种推广种植数年后，常会引起病菌群体小种组成结构的变化，继而导致品种抗性丧失，培育稻瘟病抗性品种需要分析稻瘟病菌群体的地理分布和致病性分化[30-31]；因此田间水稻品种的推广应当注意合理布局，适时轮换，避免抗性品种的感病化，延长品种的使用年限。同时因品种中抗性基因分布情况是指导品种合理布局的基础，因此今后仍有必要拓展不同类型抗瘟基因研究分析的深度和广度，加大新的抗稻瘟病基因的利用，以及通过基因聚合等手段培育广谱抗病品种。
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图 1 铁皮石斛茎腐病的症状及病原菌的形态
注：A，自然发病症状叶片；B，菌落形态特征；C，分生孢子; D，致病性测定；E、F，接菌后茎秆症状。标尺=20 μm。
Figure 1. Symptom and morphology of stem rot on D. officinale
Note: A, typical symptoms on naturally infected leaf; B, colony of stem rot of Dendrobium officinale; C, conidia; D, pathogenicity identification; E-F, Symptom on inoculated leaves. Scales=20 μm.
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图 2 基于ITS/ACT/EF1-α/RPB2/LSU基因序列采用邻接法构建的系统发育树
Figure 2. Phylogenetic tree based on sequences of ITS/ACT/EF1-α/RPB2/LSU genes using neighbor-joining method
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图 3 不同温度对病原菌菌丝生长的影响
注：不同小写字母代表差异显著（P<0.05），下同。
Figure 3. Effect of temperatures on mycelial growth of F. oxysporum
Note: Different lowercase letters indicate significant difference (P<0.05), the same as below figures.
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图 5 不同光照条件对病原菌菌丝生长的影响
Figure 5. Effect of light conditions on mycelial growth of F. oxysporum
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图 6 不同碳源对病原菌菌丝生长的影响
Figure 6. Effect of carbon sources on mycelial growth of F. oxysporum
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图 7 不同氮源对病原菌菌丝生长的影响
Figure 7. Effect of nitrogen sources on mycelial growth of F. oxysporum
表 1 茎腐病菌鉴定所用 PCR引物
Table 1 PCR primers for pathogenic identification of stem rot disease
引物名称
Primer name引物序列
Primer sequence参考文献
ReferencesITS1 5′-TCCGTAGGTGAACCTGCGG-3′ White等[11] ITS4 5′-TCCTCCGCTTATTGATATGC-3′ ACT-512F 5′-ATGTGCAAGGCCGGTTTCGC-3′ Carbone等[12] ACT-783R 5′-TACGAGTCCTTCTGGCCCAT-3′ EF1 5′-ATGGGTAAGGA(A/G)GACAAGAC-3′ O'Donnell 等[13] EF2 5′-GGA(G/A)GTACCAGT (G/C) ATCATGTT-3′ frpb2-5f 5′-GAYGAYMGWGATCAYTTYGG-3′ Liu 等[14] frpb2-7R 5′-CCCATRGCTTGYTTRCCCAT-3′ NL1 5′-GCATATCAATAAGCGGAGGAAAAG-3′ Dagar等[15] NL4 5′-GGTCCGTGTTTCAAGACGG-3′ 
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表 2 基于ITS、ACT、EF1-α、RPB2和LSU基因系统发育树登录序列
Table 2 Sequences of ITS, ACT, EF1-α, RPB2, and LSU genes for construction of phylogenetic tree
序列编号
No.种名
Species基因库登录号
Genbank accession number真菌核糖体基因转录间隔区
Internal transcribed
spacer ITS真菌肌动蛋白
基因序列
ActinACT延伸因子基因
Elongation factor
1αEF1-αRNA聚合酶Ⅱ大亚基基因
The second lar-gest RNA
polymerase subunitRPB2中科灵芝核糖体
大亚基基因
Large subunitLSU1 尖孢镰刀菌FJDO-1
Fusarium oxysporum FJDO-1MK880499 MK895954 MW546934 MZ031970 MZ031390 2 尖孢镰刀菌
Fusarium oxysporumMG198889 LT841228 MH828025 MT305136 JN938909 3 亚粘团镰刀菌
Fusarium subglutinansKY318486 KU603821 KF467375 MT337642 KU604086 4 腐皮镰刀菌
Fusarium solaniKY318489 KM231194 KY123913 MT305182 JN939552 5 拟轮枝镰刀菌
Fusarium verticillioidesKX385055 KU603765 KF467376 KM396613 KU604047 6 藤仓镰孢菌
Fusarium fujikuroiKX385058 KU603840 KY123914 MW086869 KU604102 7 接骨木镰刀菌
Fusarium sambucinumDQ132833 KM231213 KM231941 JX171606 KM231682 8 镰刀菌属种
Fusarium verrucosumKM231812 KM231212 KM231940 JX171613 KM231681 9 层出镰刀菌
Fusarium proliferatumGU074010 KM231217 KF467371 MT305154 KU604106 10 松树脂溃疡病菌
Fusarium circinatumMH862654 KM231215 KM231943 JX171623 KX306907 11 镰刀菌属种
Fusarium illudensKM231806 KM231202 KM231934 JX171601 KM231673 12 赤壳菌
Neocosmospora rubicolaKU323637 KM231197 KM231928 KM232367 KM231667
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